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FACULTAD DE AGRONOMÍA

CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA

“INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD CHARLOTT EN AMBIENTES

CONTROLADOS”

Tesis de Grado Presentado como

requisito parcial para optar el Título de

Ingeniero Agrónomo.

PAOLA IVETTE VILLARROEL BEJARANO

Asesor:

Ing. M. Sc. Jorge Pascuali Cabrera ……………………………..

Tribunal Examinador:

Dr. Humberto Sainz M. ……………………………..

Ing. Roberto Miranda C. ……………………………..

Ing. Freddy Porco Chiri ……………………………..

Aprobada

Presidente Tribunal Examinador: ……………………………..

2012

DEDICATORIA

A mis padres: por su apoyo incondicional, sus grandes enseñanzas y sus maravillosos consejos. A mis docentes por transmitirme sus conocimientos y experiencias en cuanto a la vida profesional. Y a Dios por ayudarme en ese momento de mi vida en el que no sabía qué carrera universitaria quería seguir.

Paola Ivette Villarroel Bejarano

AGRADECIMIENTOS

Quiero agradecer al Ing. M. Sc. Jorge Pascuali Cabrera, por su valioso apoyo,

enseñanzas y el tiempo que se tomo conmigo, a la Ing. Carmen del Castillo por la

guía para la elaboración del perfil de tesis y a los ingenieros Ing. Roberto Miranda

C., Dr. Humberto Sainz M. y Ing. MSc. Yakov Arteaga García por su apoyo,

consejos, recomendaciones y guía para la elaboración de la tesis de grado.

Además también quiero agradecer a mis padres por su apoyo incondicional. Y a

mis tíos Fernando Bejarano y Jorge Bejarano por sus sugerencias y apoyo en la

elaboración de la presente tesis.

i

TABLA DE CONTENIDO

1. INTRODUCCIÓN _______________________________________________ 1

1.1 ANTECEDENTES ____________________________________________________ 2 1.2 JUSTIFICACIÓN ____________________________________________________ 3 1.3 PROBLEMA ________________________________________________________ 3 1.4 OBJETIVOS ________________________________________________________ 4 1.4.1 OBJETIVO GENERAL __________________________________________________ 4 1.4.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS ______________________________________________ 4 1.5 HIPÓTESIS _________________________________________________________ 4

2. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA ______________________________________ 5

2.1 INFORMACIÓN BOTÁNICA ___________________________________________ 5 2.2 TAXONOMÍA DE LA ROSA ____________________________________________ 6 2.3 PROPAGACIÓN _____________________________________________________ 6 2.4 FISIOLOGÍA DE LA PRODUCCIÓN _____________________________________ 7 2.5 CULTIVO EN INVERNADERO __________________________________________ 8 2.5.1 TEMPERATURA ______________________________________________________ 8 2.5.2 LUZ ______________________________________________________________ 9 2.5.3 SUELO ___________________________________________________________ 10 2.6 LABORES CULTURALES ____________________________________________ 11 2.6.1 PREPARACIÓN DEL TERRENO __________________________________________ 11 2.6.2 LABOR DE FONDO __________________________________________________ 11 2.6.3 APORTE DE MATERIA ORGÁNICA Y ABONADO DE FONDO ______________________ 11 2.6.4 MULLIDO _________________________________________________________ 12 2.6.5 PLANTACIÓN ______________________________________________________ 12 2.6.6 RIEGO ___________________________________________________________ 13 2.6.7 FERTILIZACIÓN _____________________________________________________ 13 2.6.7.1 El Uso de Fertilizantes Orgánicos y Minerales en Bolivia __________________ 15 2.6.7.2 Abonos Orgánicos ________________________________________________ 17 2.6.7.3 Influencia de la Materia Orgánica Sobre la Fertilidad de los Suelos de Cultivo _ 19 2.6.7.4 Producción de Biol y Biogás Mediante el Uso de Biodigestores _____________ 19 2.6.7.5 Tiempo y Proceso de Fermentación del Abono Líquido ___________________ 25 2.6.7.6 Elaboración del Biol _______________________________________________ 28 2.6.7.7 Análisis Físico Químico del Biol (Fertilizante Foliar Líquido) ________________ 31 2.6.8 VENTILACIÓN ______________________________________________________ 31 2.6.9 DESPUNTE ________________________________________________________ 32 2.6.10 DESBOTONADO ___________________________________________________ 33 2.6.11 PODA ___________________________________________________________ 33 2.6.12 LETARGO ________________________________________________________ 34 2.6.13 COSECHA _______________________________________________________ 35 2.6.14 POST - COSECHA __________________________________________________ 37 2.6.15 PLAGAS Y ENFERMEDADES ___________________________________________ 40 2.6.15.1 Plagas ________________________________________________________ 40

ii

2.6.15.2 Enfermedades __________________________________________________ 46 2.7 ECONOMÍA EN LA FLORICULTURA A NIVEL INTERNACIONAL ____________ 48 2.7.1 PRODUCCIÓN DE ORNAMENTALES A NIVEL INTERNACIONAL ____________________ 48 2.7.2 TIPOS DE FLORES EN EL MERCADO INTERNACIONAL _________________________ 49 2.7.3 PRINCIPALES PAÍSES PRODUCTORES DE ORNAMENTALES _____________________ 50 2.7.4 PAÍSES EXPORTADORES _____________________________________________ 52 2.7.5 PAÍSES IMPORTADORES ______________________________________________ 53 2.8 LA FLORICULTURA EN BOLIVIA ______________________________________ 54 2.8.1 PRINCIPALES DESTINOS DE LAS EXPORTACIONES BOLIVIANAS _________________ 55

3. MATERIALES Y MÉTODOS _____________________________________ 57

3.1 LOCALIZACIÓN ____________________________________________________ 57 3.2 CARACTERÍSTICAS DEL SUELO. _____________________________________ 57 3.3 CARACTERÍSTICAS DE LA ECOREGIÓN _______________________________ 57 3.4 MATERIALES______________________________________________________ 58 3.4.1 MATERIALES DE ESCRITORIO __________________________________________ 58 3.4.2 MATERIALES DE CAMPO ______________________________________________ 58 3.4.3 MATERIALES DE GAVINETE ____________________________________________ 58 3.5 METODOLOGÍA ____________________________________________________ 59 3.5.1 PROCEDIMIENTO EXPERIMENTAL _______________________________________ 59 3.5.1.1 Limpieza del terreno ______________________________________________ 59 3.5.1.2 Demarcación de las parcelas experimentales ___________________________ 59 3.5.1.3 Aplicación del Biol ________________________________________________ 59 3.5.1.4 Observación de resultados de la investigación. _________________________ 61 3.6 DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN ______________________________________ 61 3.7 MODELO LINEAL ADITIVO "DISEÑO BIFACTORIAL CON BLOQUES AL AZAR" 62 3.8 CROQUIS DEL EXPERIMENTO _______________________________________ 63 3.9 VARIABLES DE RESPUESTA_________________________________________ 63 3.9.1 INCIDENCIA DE PULGONES EN LAS PLANTAS DE ROSA (%). ____________________ 63 3.9.2 INCIDENCIA DE OÍDIO EN LAS PLANTAS DE ROSA (%). ________________________ 64 3.9.3 NÚMERO DE BOTONES POR PLANTA (UNIDADES). ___________________________ 64 3.9.4 LONGITUD DEL BOTÓN FLORAL (CM). ____________________________________ 64 3.9.5 DIÁMETRO DEL BOTÓN FLORAL (CM). ____________________________________ 65 3.9.6 DIÁMETRO DE LA FLOR (CM). __________________________________________ 65 3.9.7 LONGITUD DE LA FLOR (CM). __________________________________________ 66 3.9.8 CONSISTENCIA DEL TALLO (CM). ________________________________________ 67 3.9.9 ALTURA DEL TALLO DE CORTE (CM). _____________________________________ 67 3.10 ANÁLISIS ECONÓMICO ____________________________________________ 68

4. RESULTADOS Y DISCUSIONES _________________________________ 80

4.1 EVALUACIÓN DEL EFECTO DEL BIOL EN LA INCIDENCIA DE PLAGAS Y ENFERMEDADES EN EL CULTIVO DE LA ROSA. ____________________________ 80 4.1.1 INCIDENCIA DE PLAGAS ______________________________________________ 80 4.1.2 INCIDENCIA DE ENFERMEDADES ________________________________________ 82

iii

4.2 DETERMINACIÓN DEL EFECTO DEL BIOL EN EL NÚMERO DE BOTONES FLORALES OBTENIDOS POR PLANTA DE ROSAL. __________________________ 85 4.3 DETERMINACIÓN DEL EFECTO DEL BIOL EN CUANTO A LAS NORMAS DE CALIDAD DE LA ROSA PARA LA VENTA EN EL MERCADO. ___________________ 87 4.3.1 DIÁMETRO DE LA FLOR. ______________________________________________ 87 4.3.2 LONGITUD DE LA FLOR. ______________________________________________ 90 4.3.3 DIÁMETRO DEL TALLO. _______________________________________________ 92 4.3.4 ALTURA DE TALLO DE CORTE. _________________________________________ 94

5. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES _________________________ 96

5.1 CONCLUSIONES ___________________________________________________ 96 5.2 RECOMENDACIONES _______________________________________________ 97

6. BIBLIOGRAFÍA CONSULTADA __________________________________ 98

ANEXOS

iv

ÍNDICE DE TABLAS

TABLA 1. PRODUCCIÓN ANUAL DE ABONOS ORGÁNICOS A PARTIR DE ESTIÉRCOLES Y RESIDUOS AGROINDUSTRIALES EN BOLIVIA ______ 15

TABLA 2. PRODUCCIÓN Y COMPOSICIÓN DEL ESTIÉRCOL DE DIFERENTES ANIMALES ___________________________________________________ 17

TABLA 3. COMPOSICIÓN BIOQUÍMICA DEL BIOL ___________________________ 23

TABLA 4. PARÁMETROS ÚTILES PARA LA ELABORACIÓN DEL BIOL _________ 28

TABLA 5. COMPOSICIÓN QUÍMICA DEL BIOL ______________________________ 31

TABLA 6. CALIDAD DE ROSAS GRANDES POR LA MEDIDA DEL TALLO (SÁNCHEZ, 2005) _______________________________________________________ 38

TABLA 7. CLASIFICACIÓN DE MINI – ROSAS POR LA MEDIDA DEL TALLO (SÁNCHEZ, 2005) ________________________________________________________ 38

TABLA 8. REQUISITOS DE CALIDAD DE LA ROSA __________________________ 39

TABLA 9. PRINCIPALES PAÍSES EXPORTADORES DE FLORES EN EL MUNDO __ 48

TABLA 10. PRINCIPALES PAÍSES IMPORTADORES DE FLORES EN EL MUNDO __ 49

TABLA 11. PRINCIPALES PAÍSES IMPORTADORES DE FLORES DE CORTE EN EL MERCADO MUNDIAL __________________________________________ 54

TABLA 12. PRINCIPALES PAÍSES IMPORTADORES DE FLORES BOLIVIANAS EN EL AÑO 2010 EXPRESADOS EN DÓLARES Y KILOGRAMOS. ___________ 56

TABLA 13. ANÁLISIS QUÍMICO DE N, P, K EN LOS SUELOS DE ESTUDIO, REALIZADO POR EL LABORATORIO DEL IBTEN __________________ 57

TABLA 14. COSTOS DE PRODUCCIÓN DEL MÓDULO ROSAS EN LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA, FACULTAD AGRONOMÍA DE LA UMSA _______________________________________________________ 68


TABLA 16. COSTOS DE PRODUCCIÓN DEL MÓDULO ROSAS EN LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA, FACULTAD AGRONOMÍA DE LA UMSA (ÁREA DE ESTUDIO PARA LA TESIS) ______________________ 70


TABLA 18. FLUJO DE CAJA CARPA DE ROSAS PERTENECIENTE A LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA ________________________________ 78

TABLA 19. FLUJO DE CAJA ROSAS CHARLOTT PERTENECIENTE A LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA ________________________________ 79

v

TABLA 20. ANVA INCIDENCIA DE PULGONES EN EL ROSAL __________________ 81

TABLA 21. ANVA INCIDENCIA DE OÍDIO EN EL ROSAL _______________________ 84

TABLA 22. ANVA NÚMERO DE BOTONES FLORALES POR PLANTA ____________ 86

TABLA 23. ANVA DIÁMETRO DE LA FLOR __________________________________ 89

TABLA 24. ANVA LONGITUD DE LA FLOR __________________________________ 91

TABLA 25. ANVA DIÁMETRO DEL TALLO __________________________________ 93

TABLA 26. ANVA ALTURA DEL TALLO DE CORTE ___________________________ 95

vi

ÍNDICE DE FIGURAS FIGURA 1. CONSUMO DE FERTILIZANTES MINERALES EN BOLIVIA, ECUADOR,

PERÚ, VENEZUELA Y COLOMBIA _______________________________ 16

FIGURA 2. BACTERIAS DE LAS TRES FASES DE FERMENTACIÓN DEL BIOGÁS _ 27

FIGURA 3. SUPERFICIE MUNDIAL CULTIVADA POR LOS PRINCIPALES PAÍSES PRODUCTORES DE ORNAMENTALES, 2004. ______________________ 51

FIGURA 4. VALOR DE LA PRODUCCIÓN DE LOS PRINCIPALES PAÍSES PRODUCTORES DE FLORES DE CORTE, 2004 ____________________ 52

FIGURA 5. PRINCIPALES PRODUCTOS DE FLORES BOLIVIANAS EXPORTADAS EN EL AÑO 2010 EXPRESADAS EN DÓLARES ________________________ 56

FIGURA 6. COMPORTAMIENTO DE LA PRODUCCIÓN DE ROSA DURANTE LOS MESES DE ABRIL A AGOSTO, EN EL MÓDULO DE ROSAS DE LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA ______________________ 72

FIGURA 7. COMPORTAMIENTO DE LA PRODUCCIÓN DE ROSA DE LA VARIEDAD CHARLOTTE, DURANTE LOS MESES DE ABRIL A AGOSTO, EN EL MÓDULO DE ROSAS DE LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA ____________________________________________________________ 73

FIGURA 8. COMPORTAMIENTO ECONÓMICO DE LA PRODUCCIÓN DE ROSA DURANTE LOS MESES DE ABRIL A AGOSTO, EN EL MÓDULO DE ROSAS DE LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA _________ 75

FIGURA 9. COMPORTAMIENTO ECONÓMICO DE LA PRODUCCIÓN DE ROSA DE LA VARIEDAD CHARLOTTE, DURANTE LOS MESES DE ABRIL A AGOSTO, EN EL MÓDULO DE ROSAS DE LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA _______________________________________________________ 76

FIGURA 10.MEDIA DEL NÚMERO DE PLANTAS AFECTADAS POR PULGONES EN EL CULTIVO DE LA ROSA DE LA VARIEDAD CHARLOTT EN LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA ______________________ 80

FIGURA 11.MEDIAS DEL NÚMERO DE PLANTAS AFECTADAS POR OÍDIO EN EL CULTIVO DE LA ROSA DE LA VARIEDAD CHARLOTT EN LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA ________________________________ 83

FIGURA 12.MEDIAS DEL NÚMERO DE BOTONES FLORALES ENTRE TRATAMIENTOS AL FINALIZAR EL TRABAJO DE CAMPO ___________ 85

FIGURA 13.MEDIAS DEL DIÁMETRO DE LA FLOR ENTRE TRATAMIENTOS AL FINALIZAR EL TRABAJO DE CAMPO ____________________________ 88

FIGURA 14.MEDIAS DE LA LONGITUD DE LA FLOR ENTRE TRATAMIENTOS AL FINALIZAR EL TRABAJO DE CAMPO ____________________________ 90

FIGURA 15.MEDIAS DEL DIÁMETRO DEL TALLO ENTRE TRATAMIENTOS AL FINALIZAR EL TRABAJO DE CAMPO ____________________________ 92

FIGURA 16.MEDIAS DE LA ALTURA DE TALLO DE CORTE ENTRE TRATAMIENTOS AL FINALIZAR EL TRABAJO DE CAMPO _________________________ 94

vii

ÍNDICE DE FOTOS

FOTO 1. ROSA ROJA - VARIEDAD CHARLOTT. _____________________________ 6

FOTO 2. VÁLVULA DE SEGURIDAD DEL BIODIGESTOR. ____________________ 21

FOTO 3. BIODIGESTORES _______________________________________________ 29

FOTO 4. GASÓMETROS _________________________________________________ 30

FOTO 5. COSECHA DE ROSAS DE LA VARIEDAD CHARLOTT. ________________ 35

FOTO 6. ROSA DE CORTE DE LA VARIEDAD CHARLOTT. ____________________ 36

FOTO. 7 CARACTERÍSTICAS DE LA ROSA DE CORTE DE LA VARIEDAD CHARLOTT. __________________________________________________ 40

FOTO 8. ARAÑA ROJA Y SÍNTOMAS EN LA PLANTA POR SU ATAQUE. ________ 41

FOTO 9. DEPREDADOR DE ARAÑUELA AMBLYSEIUS CALIFORNICUS. _________ 42

FOTO 10. PULGÓN Y SÍNTOMAS EN LA PLANTA POR SU ATAQUE. ____________ 43

FOTO 11. DEPREDADORES NATURALES DEL PULGÓN. _____________________ 44

FOTO 12. SÍNTOMAS DEL ATAQUE DEL TRIPS EN LAS ROSAS. _______________ 45

FOTO 13. SÍNTOMATOLOGÍA DE LA PRESENCIA DEL HONGO DEL OIDIO EN EL ROSAL. _____________________________________________________ 46

FOTO 14. EFECTO DEL OIDIO EN ROSAS _________________________________ 47

FOTO 15. APLICACIÓN FOLIAR DEL BIOL __________________________________ 60

FOTO 16. MEDICIÓN DE LA LONGITUD DEL BOTÓN FLORAL CON EL USO DEL VERNIER. ____________________________________________________ 64

FOTO 17. MEDICIÓN DEL DIÁMETRO DEL BOTÓN FLORAL CON EL USO DEL VERNIER. ____________________________________________________ 65

FOTO 18. MEDICIÓN DEL DIÁMETRO DE LA FLOR CON EL USO DEL VERNIER. __ 66

FOTO 19. MEDICIÓN DE LA LONGITUD DE LA FLOR CON EL USO DEL VERNIER. 66

FOTO 20. MEDICIÓN DE LA ALTURA DE TALLO DE CORTE EN UNA ROSA DE LA VARIEDAD CHARLOTT ________________________________________ 67

FOTO 21. DESCARTE DE ROSAS AFECTADAS POR LA HELADA EN LA ESTACIÓN EXPERIMENTAL DE COTA COTA, FACULTAD DE AGRONOMÍA DE LA UMSA _______________________________________________________ 74

Resumen La producción de rosas en La Paz se ve afectada por problemas fitosanitarios

ataque de insectos y enfermedades. Ante estos problemas se hace el uso

frecuente de los plaguicidas que dañan nuestro medio ambiente y a la vez dañan

la salud del productor. Por tal motivo en este trabajo de investigación se propone

el uso de Biol en el cultivo de la rosa, ya que se indica que este tiene un efecto de

repelente contra insectos y que ayuda a mejorar la productividad de las cosechas.

La investigación se realizó en el Centro Experimental de Cota Cota dependiente

de la Facultad de Agronomía de la UMSA, ubicado a una altitud de 3445 m.s.n.m.,

situado a 16º32’04’’ Latitud S. y 68º 03’44’’ Longitud W. El diseño del ensayo

pertenece a un Diseño de Bloques al Azar Bifactorial, con cuatro bloques y ocho

tratamientos. Para lo cual se utilizaron plantas de rosa de un año de edad, a las

que se les aplico diferentes niveles de Biol (1 litro de Biol, diluido en 20 litros de

agua; 1 ½ de Biol diluido en 20 litros de agua; 2 litros de Biol diluidos en 20 litros

de agua; y el testigo al cual no se le aplico Biol) con dos diferentes formas de

aplicación, una de las aplicaciones se realizo de forma foliar con la mochila

fumigadora y la otra forma de aplicación se hizo como riego por superficie

utilizando bidones de plástico. Posteriormente se realizo el seguimiento del efecto

del Biol en las rosas midiendo las diferentes variables de respuesta (incidencia de

pulgones y oídio en el rosal, diámetro del botón floral, flor y tallo, longitud del

botón floral y flor, número de botones florales por planta y finalmente altura de

tallo de corte) tres veces a la semana durante seis meses. Al finalizar el trabajo se

observo que el Biol no es efectivo contra el ataque de pulgones, sin embargo si

ayuda bastante para fortalecer a la planta contra el ataque de oídio, ya que en el

tratamiento ocho (2 litros de Biol diluidos en 20 litros de agua y aplicado como

riego por superficie) no se encontró plantas infectadas con oídio. En cuanto a las

demás variables de respuesta se observa que el Biol tuvo poca influencia en estas

ya que las medias no difieren mucho entre sí. Esto exceptuando la variable de

respuesta del diámetro del tallo de corte donde se observa una cierta diferencia

entre las medias obtenidas para esta variable.

UMSA FACULTAD DE AGRONOMÍA – CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA

TESIS DE GRADO Página 1

"INCORPORACIÓN DE BIOL POR NIVELES APLICADO EN ROSAS INJERTADAS DE LA VARIEDAD SCHARLOTT EN AMBIENTES CONTROLADOS"

1. INTRODUCCIÓN

Los rosales se han utilizado desde tiempos antiguos y han dado lugar a

numerosas variedades muy diferenciadas entre sí: los hay arbustivos,

semiarbustivos, trepadores, tapizantes y en arbolito; de floración primaveral,

estival, otoñal y permanente; de flores grandes, dobles, antiguas, pequeñas; de

color rosa, blanco, rojo, anaranjado, amarillo (Sánchez, 2005).

Actualmente, las variedades comerciales de rosa son híbridos de especies de rosa

desaparecidas. Prácticamente es la planta más utilizada en jardines particulares,

mansiones, patios pequeños y grandes jardines públicos, debido a su gran belleza

y a su gran diversidad de tipos, formas, colores y épocas de floración (Sánchez,

2005).

Una de las cualidades más apreciadas de la rosa es que, es capaz de producir flor

todo el año, aunque en pleno invierno requiere el auxilio del invernadero. La rosa

se cultiva al aire libre o en invernadero, con o sin calefacción (Guerrero, 1987).

La mayoría de las variedades son de follaje caduco, aunque unas pocas son

perennes. Tienen hojas compuestas y espinas en troncos y hojas. Según la

variedad pueden tener un crecimiento anual de pocos centímetros o de varios

metros (Sánchez, 2005).

Las rosas pertenecen a la familia Rosaceae, que a la vez se subdivide en cuatro

subfamilias las cuales son: Subfamilia Spiroideae, Subfamilia Rosoideae,

Subfamilia Maloideae y Subfamilia Prunoideae. Con motivo de la investigación se

hará más énfasis en la Subfamilia Rosoideae, ya que dentro de esta subfamilia se

encuentra el material en estudio.

La Subfamilia Rosoideae se caracteriza por tener plantas anuales o perennes, arbustos

rara vez árboles, inermes o armados. Hojas alternas, trifoliadas o pentafoliadas,




imparipinadas o simples. Flores con carpelos libres en el interior de un receptáculo

carnoso (cinorrodón) perígenas, con uno a dos óvulos por carpelo (la posición del

ovario tiende a ser ínfero a la madurez del fruto), fruto cinorrodón (Rojas, 2002).

Varios géneros de importancia económica, con muy pocas representantes nativas.

Rosa es el género más importante, con muchas especies: R. gallica (rosa

ornamental); R. moschata (Rosa mosqueta), cada una con muchas variedades,

entre estas están: R. canina (rosa canina) enredadera de flores pequeñas; R.

multiflora (chapi rosa) que se usa como pie de injerto (Rojas, 2002).

1.1 ANTECEDENTES Según (Guerrero,1987) menciona que hace miles de años que la rosa es cultivada

y se hibrida muy fácilmente, por lo que se han transformado mucho y alejado

radicalmente en su aspecto físico de los tipos silvestres.

Hasta finales del siglo XVII, todos los tipos de rosas cultivadas solo florecían una

vez en primavera, y todavía no presentaban la característica refloreciente. Las

razas de rosa refloreciente nacen en Europa en 1842 y se obtienen a partir de

hibridaciones de las rosas de Bengala y de la rosa de té, ambas de procedencia

oriental.

A continuación se enumeran las razas de rosas que dieron lugar, por sucesivas

hibridaciones, a los tipos cultivados actualmente:

- Rosa de té (Rosa indica fragans o Rosa odorata)

- Rosa de Bengala (Rosa bengalensis)

- Rosa híbrida refloreciente (Rosa híbrida bifera)

- Rosa híbrida de té (Rosa indica fragans híbrida)

- Rosa prenetiana (Rosa penetriana)

- Rosa polyantha (Rosa multiflora)




Los cultivares comerciales actuales de rosa son híbridos de las especies de rosa

desaparecidas hace varias generaciones. Dependiendo del sistema taxonómico

seguido, el híbrido de té de hoy día nos lleva a sus ancestros, la Rosa gigantea y

R. chinensis, que fueron híbridas en China antes de 1800 para producir la Té de

China o Rosa de China (Larson & Raymond, 1988).

1.2 JUSTIFICACIÓN El Biol es un abono liquido de bajo costo, ecológico compatible con el medio

ambiente y no contamina, ni daña los suelos por tanto; puede ser utilizado en los

cultivos por los agricultores para evitar el daño de la producción por efecto de los

cambios bruscos del clima, como ser las heladas que dañan gran parte de los

cultivos en el altiplano paceño. A si mismo este biofertilizante ayuda a mejorar la

producción y productividad de las cosechas.

1.3 PROBLEMA La producción de rosas en La Paz se ve afectada por problemas fitosanitarios

como es el caso del ataque de insectos como afidos o pulgones y enfermedades

como oídio. Para erradicar estos problemas se hace el uso frecuente de los

plaguicidas que dañan nuestro medio ambiente y a la vez dañan la salud del

productor. Por tal motivo el presente trabajo pretende encontrar la solución ante

estos dos problemas que aquejan tanto a los productores de rosas, ya que el Biol

es una sustancia orgánica que no daña al medio ambiente y tiene las siguientes

ventajas:

• Acelera el crecimiento y desarrollo de la plantas.

• Mejora la producción y productividad de las cosechas.

• Aumenta la resistencia a plagas y enfermedades (mejorando la actividad de los

microorganismos benéficos del suelo y ocasiona un mejor desarrollo de raíces,

en hojas y en los frutos.




• Aumenta la tolerancia a condiciones climáticas adversas (heladas, granizadas

y otros)

• Es ecológico, compatible con el medio ambiente y no contamina el suelo.

• Es económico.

• Acelera la floración

• Favorece en rebrote después del trasplante.

• El N que contiene se encuentra en forma amoniacal que es fácilmente

asimilable por la planta.

1.4 OBJETIVOS 1.4.1 Objetivo General - Incorporar el Biol por niveles aplicando en rosas de la variedad Charlott en

ambientes controlados

1.4.2 Objetivos Específicos - Evaluar el efecto del Biol en la incidencia de plagas y enfermedades en el

cultivo de la rosa.

- Determinar el efecto del Biol en el número de botones florales obtenidos por

planta de rosal.

- Determinar el efecto del Biol en cuanto a las normas de calidad de la rosa para

la venta en el mercado.

1.5 HIPÓTESIS - La aplicación de Biol como abono orgánico en el rosal, no afecta el desarrollo

de la planta como tampoco en la parte fitosanitaria.




2. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA 2.1 INFORMACIÓN BOTÁNICA

Los rosales son de porte frondoso, de tipo arbustivo o sarmentoso, con ramas

semileñosas y espinosas, raramente inermes. Las hojas caducas son estipuladas,

compuestas, imparipinadas con tres, cinco o siete foliolos, más o menos ovalados,

con la nervadura del envés sobresaliente. Las flores son terminales solitarias o,

más raramente, reunidas en una terminación en forma de corimbo (Guerrero,

1987).

Los sépalos, pétalos y estambres están insertados en el borde de un receptáculo

floral cóncavo, en el que se encuentran los ovarios. Los sépalos son lanceolados;

los pétalos son carnosos, con uña corta; los estambres son numerosos, así como

también los pistilos. El ovario está contenido en el receptáculo; los estilos son más

cortos que las anteras y presentan un estigma alargado (Guerrero, 1987).

El tipo silvestre de rosa generalmente es de color blanco, rosado o rojo y sólo

tiene cinco pétalos. En los tipos cultivados los estambres transformados aumentan

el número de pétalos, que pueden llegar a ser más de sesenta (Guerrero, 1987).

Aproximadamente 200 especies botánicas de rosas son nativas del Hemisferio

Norte. Debido a la ocurrencia de las poblaciones híbridas encontradas en estado

silvestre, la cantidad real de las verdaderas especies no se conoce. Las rosas

tienen una inflorescencia determinada que puede asumir las formas corimbiforme,

paniculada o solitaria. Cuando las flores nacen de una en una, como en muchos

cultivares híbridos de té todavía hay botones florales no desarrollados en las axilas

de las hojas inmediatamente debajo de la flor terminal (Larson & Raymond, 1988).

Estos botones pueden desarrollarse en brotes florales cortos bajo condiciones

ambientales favorables. Los colores de la flor varían del rojo, blanco, rosa,

amarillo, naranja a lavanda con muchos matices, sombras y tintes entre ellos. Las

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POR ESTACA: Las estacas se seleccionan a partir de vástagos florales. Pueden

utilizarse estacas con 1,2 ó 3 yemas.

La base se sumerge en un compuesto a base de hormonas enraizantes antes de

proceder a la colocación en un banco de propagación con sustrato de vermiculita

con una separación de 2.5 4 cm entre plantas y 7,5 cm entre hileras.

Debe mantenerse una humedad adecuada y una temperatura en el medio de 18 -

21°C. En estas condiciones el enraizamiento tiene lugar a las 5 – 6 semanas,

dependiendo de la época del año y de la naturaleza del vástago. Posteriormente

se procede al trasplante a macetas de 7,5 cm o directamente al invernadero.

El problema de este sistema es que las plantas con raíz propia son bastante

pequeñas y necesitan un tiempo considerable para que la planta crezca lo

suficiente para que se comiencen a recolectar las flores.

POR INJERTO DE VARETA: El injerto de vareta o injerto inglés, rara vez se

utiliza para la producción comercial de flor de corte, ya que también requiere

demasiado tiempo. POR INJERTO DE YEMA: Para el injerto de yema el patrón más común es Rosa

manetti y ocasionalmente Rosa odorata. El injerto normalmente se realiza a mitad

de junio, cuando ya hay suficiente enraizamiento y la corteza se puede pelar

fácilmente. 2.4 FISIOLOGÍA DE LA PRODUCCIÓN

La actividad vegetativa del rosal empieza, después de pasar por un periodo de

reposo, con la formación de las yemas, el desarrollo de las ramas y tallos, la

formación y crecimiento de los botones florales y finalmente la floración; mientras

esta dura, la actividad vegetativa se detiene y cuando termina la floración vuelve a

reemprenderse, vuelve a florecer y así sucesivamente, mientras las condiciones




ambientales sean favorables, de lo contrario, la planta pierde sus hojas y entra en

estado de reposo o letargo. Un rosal con vegetación rápida puede dar una

floración cada dos meses; en invernadero es posible obtener hasta seis

floraciones en un año (Guerrero, 1987).

2.5 CULTIVO EN INVERNADERO

Con este cultivo se consigue producir flor en épocas y lugares en los que de otra

forma no sería posible. Los invernaderos deben tener grandes dimensiones (50 x

20 y más), la luz debe ser adecuada, la altura tiene que ser considerable y la

ventilación en los meses calurosos debe ser buena. Es recomendable la

calefacción durante el invierno, y la instalación de mantas térmicas para la

conservación de calor durante la noche (Sánchez, 2005). La floración se halla estrechamente relacionada con la iluminación, resulta más

prolífica durante los meses estivales, cuando los precios son relativamente bajos.

Para conseguir los mejores resultados durante el invierno y comienzos de

primavera, cuando los precios son más altos, resulta esencial elegir un lugar con

buenas condiciones de luz (Harrison, 1985 et al.).

2.5.1 Temperatura Los rosales son muy rústicos y resisten la sequía; también soportan temperaturas

inferiores a los 0°C, pero los botones florales y las flores mueren. La temperatura

mínima es de 5 ó 6 °C; para formar el botón floral requieren de 12 a 14 °C. En el

invernadero, las temperaturas óptimas para el cultivo de la flor son una mínima

durante el día de 16 a 18 °C, y por la noche de 10 a 12 °C, debiéndose aumentar

en unos tres grados después del corte de la flor (Guerrero, 1987).

Los rosales prefieren exposición soleada, con mucha luz. En zonas poco

luminosas, con lluvias insistentes, las flores pierden la vivacidad de sus colores.

Necesita cierta humedad atmosférica (65 a 70%), aunque si esta es excesiva




proliferan las enfermedades producidas por hongos. En el invernadero, deben

mantenerse los niveles de humedad indicados, salvo cuando se quiera incidir

sobre el brote de las yemas, en el que se elevara a 80 a 90% (Guerrero, 1987).

La aireación de los invernaderos debe ser graduable, bien de manera natural -

mediante aberturas -, bien de manera artificial – a través de ventiladores o

extractores -, ya que de esta manera se evitan altos contenidos de humedad

(Guerrero, 1987).

Durante la temporada de crecimiento, una temperatura demasiado elevada,

determina la apertura de los capullos dando lugar a flores de tamaño pequeño y

colores más diluidos, exhibiendo unos vástagos tiernos y débiles. La baja

temperatura es causa de un lento desarrollo, así como de la formación de tallos

cortos, aunque el color de la flor se encuentra intensificado (Harrison, 1985 et al.).

La temperatura óptima de la noche es aproximadamente de unos 17 °C, pudiendo

elevar o disminuir para acelerar o retardar el desarrollo como un medio de regular

la época de producción. Se puede permitir que la temperatura durante el día se

eleve de 4 a 6° C por encima de la cifra utilizada durante la noche, pero será

preferible que no llegue a exceder de los 24 °C (Harrison, 1985 et al.).

2.5.2 Luz

Aparentemente no tiene acción alguna la duración del día sobre la iniciación de las

yemas, la cual se presenta a lo largo de todo el año. Sin embargo la producción

floral se encuentra estrechamente relacionada con el nivel de glúcidos existentes

en la planta y puesto que los mismos dependen de la Fotosíntesis, la cantidad

total de iluminación recibida tiene un efecto bien marcado sobre la producción

(Harrison, 1985 et al.).




2.5.3 Suelo Se consiguen a veces resultados satisfactorios sobre una amplia serie de suelos,

siempre que estos presenten un perfecto drenaje y una excelente estructura física.

Estas dos cuestiones son las más importantes durante toda la vida de la planta, ya

que en el periodo de producción, el suelo no puede ser objeto de mejoras

mediante labores de cultivo, por lo que si su estructura es ya de por si pobre, la

práctica de riego durante un largo periodo de tiempo, será motivo de una

compactación de la superficie y de una falta de aireación (Harrison, 1985 et al).

Resulta mucho mejor un suelo ligeramente ácido, con un pH de 6,0 a 6,5. Se

evitarán aquellos que tengan reacción alcalina, debido al riesgo de presentarse

una clorosis inducida por la cal y por la misma causa se evitará la utilización de

aguas que contengan carbonatos de calcio (Harrison, 1985 et al.).

Es conveniente controlar los parámetros de pH y conductividad eléctrica de la

solución del suelo. El pH puede regularse con la adición de ácido. Si el pH del

suelo tiende a aumentar, la aplicación de sulfato de hierro da buenos resultados

(Sánchez, 2005).

Puesto que los rosales permanecen en el mismo terreno muchos años, (seis o

más) éste debe ser profundo para permitir que las raíces se extiendan. El suelo

debe ser permeable y aireado, y si es necesario se construirán drenajes para

evitar posibles excesos de agua y poder efectuar lavados del suelo, si en él

aumenta la concentración de sales. El rosal prefiere suelos arcillosos, neutros y

moderadamente calcáreos (máxima cantidad de caliza activa, el 10%), con un pH

de 6 a 7. La concentración de sales del terreno no debe ser superior a 2%

(Guerrero, 1987).




2.5.4 Agua

Los suelos y las aguas que se suministran no deben contener cantidades

indebidas de sales solubles y deberán hallarse libres de metales tóxicos (por

ejemplo, las que proceden de las aguas residuales de las industrias o otros

orígenes), para los cuales, resultan los rosales sumamente susceptibles (Harrison,

1985 et al.).

2.6 LABORES CULTURALES

2.6.1 Preparación del Terreno

Para la preparación del terreno se quitara toda aquella planta que haga

competencia a nuestro cultivo principal. Por otra parte se procederá a quitar toda

la maleza que exista en el terreno donde se va a hacer la plantación de rosales, ya

que muchas veces estas son portadoras de plagas y enfermedades.

2.6.2 Labor de Fondo La profundidad de labor de fondo depende del tipo de portainjerto y de la duración

que vaya a dársele al cultivo. Normalmente, suele efectuarse a una profundidad de

60 a 80 cm (Guerrero, 1987).

2.6.3 Aporte de Materia Orgánica y Abonado de Fondo

Después de la desinfección del suelo y antes de la plantación, se aplicará la

materia orgánica, que debe estar bien descompuesta; la dosis puede variar entre

20 y 25 Kg/m2. Se recomienda añadir turba de 5 a 10 Kg/m2, seguidamente se

ajustarán los contenidos de ácido fosfórico y óxido potásico, según los resultados

de los análisis químicos del suelo (Guerrero, 1987).




2.6.4 Mullido Los mullidos conservan también el agua y esto puede resultar beneficioso, aun en

los casos de terreno de un drenaje deficiente, debido a que en tales

circunstancias, las raíces de la planta se encuentran en su casi totalidad

confinadas a las capas superiores, por lo que secan rápidamente cuando el tiempo

es caluroso (Harrison, 1985 et al.).

Por otra parte, debido a su naturaleza esponjosa los mullidos absorben

rápidamente la humedad durante el humedecimiento y la evaporación de estos

durante el tiempo caluroso contribuye a mantener la humedad atmosférica.

Finalmente, cuando se utiliza estiércol, se proporciona a las plantas una fuente

sustancial de nutrientes en forma gradualmente asimilable (Harrison, 1985 et al.).

2.6.5 Plantación La época de plantación va de noviembre a marzo. Se realizará lo antes posible

para evitar el desecamiento de las plantas, que se recortan 20 cm; se darán riegos

abundantes (100 litros de agua/m2), manteniendo el punto de injerto a 5 cm por

encima del suelo (Sánchez, 2005).

Se suele plantar en líneas paralelas de dos o de cuatro filas. Cuando se planta en

dos líneas, se deja 60 cm entre líneas y dentro de una línea las plantas se colocan

distanciadas 20 cm. Cuando se planta en cuatro filas, entre cuatro líneas se deja

40 cm y entre plantas de una misma línea se dejan 20 cm; cada cuatro filas se

deja un pasillo más ancho de unos 80 cm. Esta disposición nos proporciona una

densidad de seis a ocho plantas por metro cuadrado (Guerrero, 1987).

Antes de plantar, debe rebajarse la planta, esto es, se reduce la parte aérea de las

ramas más robustas. Se suele menguar tres ramas, que se dejan con tres o cuatro

nudos. También conviene cortar las raíces, porque de esta manera se favorece el

enraizamiento (Guerrero, 1987).




La plantación se realiza con el terreno seco, ya que si se encuentra húmedo las

raíces pueden quedar afectadas. Una vez colocados los rosales, se procede a

regarlos ligeramente (Guerrero, 1987).

2.6.6 Riego Se aplicará al comienzo de cada temporada una suficiente cantidad de agua,

antes de iniciar el desarrollo de las plantas para conseguir que el terreno posea la

cantidad justa de su capacidad de saturación del suelo (Harrison, 1985 et al.).

Se incrementa el riego a medida que el tiempo se va haciendo más caluroso, pero

la práctica de humedecer intensamente por encima al cultivo en verano, hace que

sea innecesario aplicar frecuentemente grandes cantidades de agua. Al final de la

temporada, se reduce gradualmente el riego y por regla general se interrumpe en

el momento en que el cultivo entra en el periodo de letargo invernal (Harrison,

1985).

El rosal no necesita demasiada agua. Los aportes estarán en función del tipo de

suelo, de la época del año de la zona y de las técnicas de cultivo empleadas. En

principio, es suficiente aportar treinta litros por metro cuadrado una vez a la

semana en invierno y dos en verano. El sistema de riego más adecuado es el

localizado mediante microaspersores. (Guerrero, 1987).

2.6.7 Fertilización La permanente sustracción de nutrientes del suelo por parte de la planta, debe

reponerse a fin de mantener la fertilidad. Los abonos deben tener N/P/K, que

pueden ser de acción lenta o rápida, mineral u orgánica. El estiércol, tiene la

ventaja de ser rico en todos los elementos necesarios, pero su inconveniente

reside en el grado de impurezas que aporta (semillas de malezas) Su acción es

más lenta, por eso debe aplicarse con anticipación. Debe ser incorporado bien




descompuesto para que no fermente, ya que al alcanzar temperaturas muy

elevadas puede matar a la planta (Lake, 2010).

Es necesario que al iniciare la floración y durante la misma, los rosales

encuentren en el suelo los elementos que requieren en condiciones de ser

asimilables. Luego de formados los primeros pimpollos se deberá comenzar con

la aplicación de abonos líquidos, de acción rápida, el que se proporcionará en

forma semanal, mientras dure la floración o refloración (Lake, 2010).

Se hade tener en cuenta que el rosal es un arbusto vigoroso y frondoso al que se

le exige una producción constante, por lo que debe cuidarse el aporte de

nutrientes. Las necesidades son diferentes para cada variedad; por otro lado

también dependen de la edad del cultivo y del tipo de portainjertos (Guerrero,

1987).

Al iniciar el cultivo y según sean los contenidos de nutrientes en el suelo, datos

que nos proporcionará su análisis químico, se efectuarán los aportes de materia

orgánica y abonos minerales. Se considera que un suelo está equilibrado en

nutrientes cuando presenta de 1,3 a 1,5 % de nitrógeno total, un 0,3 a 0,5 % de

ácido fosfórico y un 0,5 y 0,7 de potasio intercambiable. (Guerrero, 1987).

Después a lo largo de todo el cultivo, se suministrará el abonado de

mantenimiento. Los rosales en los cultivos actuales – continuados, con altos

rendimientos que varían de catorce a veinte cinco flores por pie y por año -,

extraen del suelo cada año 100 g/m2 de nitrógeno, 25 g/m2 de ácido fosfórico, 100

g/m2 de óxido potásico y 20 g/m2 de óxido de magnesio (Guerrero, 1987).

Muchas veces, los rosales presentan carencias de hierro, sobre todo cuando los

suelos son húmedos y fríos. Esto se soluciona aplicando hierro en forma de

quelatos. También es sensible a las carencias de magnesio, que pueden

repararse aportando óxido de magnesio (Guerrero, 1987).




2.6.7.1 El Uso de Fertilizantes Orgánicos y Minerales en Bolivia El empleo de abonos orgánicos (estiércoles y residuos vegetales) es una práctica

corriente en el Altiplano y los Valles. Según datos disponibles, existe una

producción anual alrededor de 15 millones de toneladas de estiércol de diferentes

fuentes y 250.000 toneladas de residuos agroindustriales (Tabla 1) (FAO &

SNAG).

Tabla 1. Producción anual de abonos orgánicos a partir de estiércoles y residuos agroindustriales en Bolivia

Producción anual de abonos orgánicos a partir de estiércoles y residuos agro industriales en Bolivia

Periodo 1985

Estiércoles: Número de cabezas Producción en toneladas de materia seca

%

Bovinos

Ovinos

Porcinos

Caprinos

Camélidos

Caballos

Mulas / Asnos

Pollos Parrilleros

Aves de huevo

Otras Aves

5.851.100

7.803.600

1.724.600

2.190.700

1.982.831

310.600

677.400

8.480.400

1.476.200

523.600

8.542.000

1.993.000

283.300

559.700

1.350.400

456.300

995.200

40.700

21.500

7.600

59.94

13.99

1.99

3.94

9.48

3.20

6.98

0.29

0.16

0.06

Total producción potencial anual 14.251.100

Residuos agroindustriales Producción el toneladas de materia seca

Bagazo de Caña de Azúcar 227.000

Chala de Arroz 27.000

Total producción anual de residuos agroindustriales 254.000

La tasa de crecimiento de la producción pecuaria, arroz y de la caña de azúcar entre los años 1985 a 1994, es casi cero; consecuentemente los datos de la producción de abonos orgánicos se mantienen en el presente cuadro

Fuente: Villarroel – AGRUCO – Cochabamba (1985)

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2.6.7.2 Abonos Orgánicos Existen dos grandes tipos de abonos orgánicos: los abonos verdes y los abonos

orgánicos fermentados. Dentro de los abonos verdes están las leguminosas que

ayudan a producir los nutrientes necesarios a otras plantas más grandes. En los

abonos orgánicos fermentados existen dos categorías: los sólidos y los líquidos.

Dentro de los sólidos se encuentra el compost, bokashi, humus de lombriz y el

estiércol. En los líquidos están los biofertilizantes (Sánchez, 2003).

Como es sabido, el estiércol es el conjunto de deyecciones de distintos animales

agropecuarios, convenientemente fermentado en el establo o en el estiercolero, en

cuyo seno a menudo se encuentra parte del lecho o cama de los establos de la

ganadería (principalmente paja) (Lorente, 1997).

Según (Lorente, 1997) el estiércol como toda materia orgánica, aporta al suelo

estructura, capacidad de retención de agua y nutrientes y las unidades fertilizantes

liberadas cuando este se mineraliza. Además contribuye a que los

microorganismos del suelo mantengan una población aceptable (un suelo sin vida

microbiana es un suelo muerto). En la Tabla 2 se muestra la producción y

composición del estiércol de distintos animales del ganado.

Tabla 2. Producción y composición del estiércol de diferentes animales

Clase de Ganado

Kg por día por 1000 Kg de peso vivo

Solido %N Liquido Solido %P Liquido Solido %K Liquido

Vacas

70 -100

0,5

0,25

0,11

0,06

0,41

0,21

Cerdos 70 0,5 0,1 0,13 0,42 0,37 0,09

Gallinas 60 1,5 0,43 0,41

Cama 0,5 0,125 0,4

Fuente: Herrera (1997)




Abono líquido o biofertilizantes o biopreparados, se originan a partir de la

fermentación de materiales orgánicos, como los estiércoles de animales, restos

vegetales, frutos, etc. La fermentación puede ocurrir con la presencia de oxígeno o

sin la presencia de oxígeno. Originándose de la intensa actividad de los

microorganismos que transforman los materiales orgánicos (Restrepo, 1998)

La mezcla de estiércol y la orina de animales, es rico en nitrógeno y micro

elementos, cumple la misma función que el abono foliar, tiene un alto contenido en

aminoácidos e incrementa la actividad microbiana del suelo, llamado purín es una

mezcla líquida de un 20 a 25 %de estiércol y un 80 a 85 % de orinas (Gomero,

1999)

El bioabono aeróbico llamado también abono líquido, producto rico en nutrientes

esenciales para los cultivos, al mismo tiempo por el contenido de insecticida

natural sirve como repelente para controlar plagas que ocasionan perjuicios

(CIPCA, 2002)

Los biofertilizantes o biopreparados son abonos líquidos que se originan a partir

de la fermentación de materiales orgánicos. El Biol es un abono líquido que puede

ser empleado como inoculante para la semilla y como biofertilizante en viveros y

cultivos establecidos (Maldonado 2006 mencionado por Fischerswottin y

RoBkamp, 2001).

Los abonos líquidos contienen nitrógeno amoniacal, hormonas, vitaminas y

aminoácidos, estas sustancias regulan el metabolismo vegetal, siendo

complemento a la fertilidad del suelo mediante los deshechos de la materia

orgánica resultante de la fermentación anaeróbica y como reguladores de

crecimiento de las plantas que aplicados foliarmente de 20 a 50% estimula el

crecimiento y aplicados al cuello de la planta favorece el desarrollo radicular

(Guerrero, 1993)




2.6.7.3 Influencia de la Materia Orgánica Sobre la Fertilidad de los Suelos de Cultivo

Si la función de la materia orgánica fuese únicamente aportar nutrientes al suelo,

en especial nitrógeno, tendría poco interés, ya que la fertilización mineral actúa en

este sentido cuantitativamente con mayor rapidez. Sin embargo, el papel de la

materia orgánica en la complejidad del suelo es mucho más importante, y por ello

insustituible (Labrador, 1996).

Esta función viene relacionada con un nuevo concepto del suelo, más

agroecológico, que igual que en un pequeño "ecosistema" se nos presenta dotado

de gran complejidad, tanto estructural como funcional, consecuencia de las

relaciones mutuas entre los seres vivos que mantiene y el soporte - físico y

químico – en que estos se desenvuelven (Labrador, 1996).

Desde esta visión más global del suelo, la fertilidad del mismo se muestra, no solo

como la capacidad de ese medio para aportar nutrientes minerales esenciales a la

planta, sino que además, fertilidad del suelo será también, la capacidad de ese

recurso para mantener un nivel de producción alto, pero perdurable en el tiempo,

sin perder por ello su diversidad biótica ni su complejidad estructural y todo ello

dentro de un equilibrio dinámico (Labrador, 1996).

2.6.7.4 Producción de Biol y Biogás Mediante el Uso de Biodigestores Los residuos orgánicos, cuando no son tratados, se convierten en un foco de

infección y es un problema deshacerse de ellos. En la agricultura y ganadería a

pequeña escala se ha venido tratando los residuos para transformarlos en abonos

naturales, y en algunos casos como combustible (Martí, 2008).

Los biodigestores son sistemas naturales que aprovechan residuos orgánicos,

procedentes de actividades agropecuarias, principalmente estiércol, para producir

biogás (combustible) y Biol (fertilizante natural) mediante el proceso de digestión

anaerobia (Martí, 2008).




El biogás puede ser empleado como combustible en las cocinas, calefacción o

iluminación. En grandes instalaciones se puede utilizar el biogás para alimentar un

motor que genere electricidad (Martí, 2008).

El fertilizante, llamado Biol, inicialmente se ha considerado un producto

secundario, pero actualmente se está tratando con la misma importancia, o mayor,

que el biogás, ya que provee a las familias de un fertilizante natural que mejora

fuertemente el rendimiento de las cosechas (Martí, 2008).

EL BIODIGESTOR

Un biodigestor se construye con plástico (polietileno tubular, geomembrana de

PVC o de polietileno). Por lo demás se usan tuberías de 6” para la entrada de

estiércol y agua, y para la salida de Biol. La conducción de biogás se hace con

tubería de riego de ½” o ¾” y se hace uso de accesorios comunes como llaves de

esfera, codos, tees, etc. Todos estos materiales suelen estar disponibles en el

mercado interno de cada país (Martí, 2008).

El biodigestor, al ser de plástico flexible, debe estar semi-enterrado en una zanja

abierta en el suelo. Las medidas de un biodigestor familiar varían según las

regiones, pero en todos los casos para ubicarlo es necesario disponer de un

espacio de 1m de ancho x 8m de largo. En el altiplano, el biodigestor debe estar

bajo una carpa solar para protegerlo del frío, e instalarlo con orientación de este a

oeste (Martí, 2008).

La construcción e instalación de un biodigestor lleva una mañana (si la zanja ya

está construida), y terminar de acondicionar toda la conducción de biogás lleva

una tarde (Martí, 2008).

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CUIDADOS DE UN BIODIGESTOR

Los biodigestores familiares son económicos, pero son frágiles. Siendo de

polietileno, más gruesos que los plásticos de las carpas solares, si no se protegen

se agujerean. Los pequeños agujeros de hasta 5 cm se pueden arreglar, pero los

de mayor tamaño no.

Para evitar problemas, como que se entre accidentalmente un animal y pise el

tanque de plástico, es muy recomendable colocar una muralla o cerca entorno del

biodigestor. De igual forma, se deben cuidar los reservorios donde se almacena el

biogas. Es recomendable asignar un espacio cerrado y techado destinado sólo

para los reservorios (Martí, 2008).

DURACIÓN

Un biodigestor con un buen cuidado puede durar entre 5 a 6 años. Después de

ese tiempo es necesario cambiar el plástico por uno nuevo, mientras que los

demás materiales tienen una duración mayor. Se dieron casos de biodigestores

bien cuidados que duraron 11 años sin cambiar el plástico. En otros casos, por no

cuidar el ingreso accidental de un animal, un biodigestor se puede romper a los

pocos días de su instalación (Martí, 2008).

EL BIOL

El Biol se obtiene del proceso de descomposición anaeróbica de los desechos

orgánicos. La técnica empleada para lograr este propósito son los biodigestores.

Los biodigestores se desarrollan principalmente con la finalidad de producir

energía y abono para las plantas utilizando el estiércol de los animales (Sánchez,

2003).

El Biol es el líquido que se descarga de un digestor y es lo que se utiliza como

abono foliar. El Biol, puede ser utilizado en una gran variedad de plantas, sean de




ciclo corto, anuales, bianuales o perennes, gramíneas, forrajeras, leguminosas,

frutales, hortalizas, raíces, tubérculos y ornamentales, con aplicaciones dirigidas al

follaje, al suelo, a la semilla y/o a la raíz (Sánchez, 2003).

El Biol fuente orgánica de fitoreguladores promueve las actividades fisiológicas,

estimula el desarrollo de las plantas en las actividades agronómicas como:

enraizamiento (aumenta y favorece la base radicular), acción sobre el follaje

(amplía la base foliar), mejora la floración y activa el vigor y el poder germinativo

de las semillas, traduciendo todo esto en aumento significativo de las cosechas

(Suquilanda, 1996)

El uso del Biol es principalmente como promotor y fortalecedor del crecimiento de

la planta, raíces y frutos, gracias a la producción de hormonas vegetales (ver

Tabla 3 sobre la presencia de hormonas vegetales de crecimiento), las cuales

son deshechos del metabolismo de las bacterias típicas de este tipo de

fermentación anaeróbico (que no se presentan en el compost). Estos beneficios

hacen que se requiera menor cantidad de fertilizante mineral u otro empleado

(Aparcana, 2008).

Tabla 3. Composición bioquímica del Biol

Componentes Cantidad Componentes Cantidad Ácido indol acético (ng/g) 9.0 Triptófano (ng/g) 26.0 Giberelina (ng/g) 8.4 Inositol No detectadoPurinas (ng/g) 9.3 Biotina No detectadoCitoquininas No detectado Niacin No detectadoTiamina (vit B1) (ng/g) 259.0 Cianocobalamina

(Vit B12) (ng/g) 4.4

Riboflavina (Vit B2) (ng/g) 56.4 Piridoxina (Vit B6) (ng/g)

8.6

Adenina No detectado Ácido fólico (ng/g) 6.7 Ácido pantoténico (ng/g) 142.0

Fuente: Aparcana (2005), Siura (2008)




Las hormonas vegetales o fitohormonas se definen como fitoreguladores del

desarrollo producidas por plantas. A bajas concentraciones regulan los procesos

fisiológicos y promueven el desarrollo físico de las plantas (Aparcana, 2008).

Hay cinco grupos hormonales principales: Adeninas, Purinas, Auxinas, Giberelinas

y Citoquininas, todas estas estimulan la formación de nuevas raíces y su

fortalecimiento. También inducen la floración, tienen acción fructificante, estimulan

el crecimiento de tallos, hojas, etc. El Biol, cualquiera que sea su origen cuenta

con estas fitohormonas por lo que encuentra un lugar importante dentro de la

práctica de la Agricultura Orgánica, al tiempo que abarata costos y mejora la

productividad y calidad de los cultivos (Aparcana, 2008).

Según (Aparcana, 2008) entre las Ventajas del uso del Biol como fertilizante se

tienen:

• El uso del Biol permite un mejor intercambio catiónico en el suelo. Con ello se

amplía la disponibilidad de nutrientes del suelo. También ayuda a mantener la

humedad del suelo y a la creación de un microclima adecuado para las plantas.

• El Biol se puede emplear como fertilizante líquido, es decir para aplicación por

rociado.

• También se puede aplicar con el agua de riego en sistemas automáticos de

irrigación.

• Siendo el Biol una fuente orgánica de fitoreguladores en pequeñas cantidades

es capaz de promover actividades fisiológicas y estimular el desarrollo de la

plantas, sirviendo para: enraizamiento (aumenta y fortalece la base radicular),

acción sobre el follaje (amplía la base foliar), mejora la floración y activa el

vigor y poder germinativo de las semillas, traduciéndose todo esto en un

aumento significativo de las cosechas.




• Pruebas realizadas con diferentes cultivos muestran que usar Biol sólo sería

suficiente para lograr la misma o mayor productividad del cultivo que

empleando fertilizantes químicos. EL BIOGÁS

Los biodigestores familiares producen unos 700 litros de gas al día, suficientes

para cocinar unas tres horas por jornada. Este gas, llamado biogas, se produce de

forma natural dentro del biodigestor al fermentar el estiércol mezclado con agua.

El biogás es muy parecido al gas que se encuentra en la garrafa y se puede

emplear para cocinar, iluminar con lámparas a gas, en campanas para calentar

lechones, etc. Al cocinar con biogas se evita el humo que desprende los fogones y

daña a la salud (Martí, 2008).

El biogás se almacena en unos reservorios hechos de plástico que tienen la

función de una garrafa (bombona). Estos reservorios tienen que ser colocados

cerca de la cocina y estar en un espacio protegido bajo techo. Gracias a estos

reservorios se da presión al biogás, garantizando aproximadamente una hora de

cocina por cada reservorio. Sin reservorios, solo se tendrá de 20- 30 minutos de

biogás (Martí, 2008).

2.6.7.5 Tiempo y Proceso de Fermentación del Abono Líquido El abono líquido, fuente de fitoreguladores producto de la descomposición

anaeróbica (sin la acción del aire), de los desechos orgánicos, para la obtención

adecuada del abono líquido la fermentación debe ser lenta, para dar tiempo a que

el amoniaco que se forme pueda ser absorbido, si la fermentación es rápida evita

el consumo excesivo de la materia orgánica. Durante este proceso de

fermentación, el estiércol alcanza temperaturas altas lo cual produce la muerte de

semillas de malezas y organismos dañinos (Suquilanda, 1995)




Según (Restrepo, 2001) y (Stehman, 2002) mencionan que el proceso de

fabricación del abono orgánico líquido fermentado se divide en tres fases:

MACERACIÓN

Es la acción del agua cuando comienza a extraer sustancias del material vegetal y

no existe desarrollo bacteriano, este proceso dura 12 horas y 3 días.

FERMENTACIÓN

Es la estabilización alcanzando a temperatura de 70 a 75 °C por acción de

hongos, levaduras y bacterias comienza la descomposición del material vegetal,

por este cambia la composición química y las sustancias iníciales se transforma

en enzimas, aminoácidos, hormonas y otros nutrientes. A medida que avanza la

fermentación disminuyen las sustancias originales, aumenta la población de

bacterias y se puede usar como abono líquido.

ABONO MADURO

Después de una semana o dos las bacterias han transformado todo el material

disponible. El cultivo de bacterias que se desarrolla depende del tipo de material

que se utilice inicialmente, habrá cambiado de color y tendrá olor a "podrido", que

se siente más al batir el líquido, se usa para inocular el suelo con las bacterias,

preparando diluido en 10 a 20 partes de agua.

El tiempo que demora la fermentación de los biofertilizantes es variado y depende

en cierta manera de la habilidad, inversión del producto, cantidad que necesita y

del tipo de biofertilizante que desea preparar para cada cultivo, el cual demora

para estar listo entre 20 y 30 días de fermentación y de 35 a 65 días para

biofertilizantes enriquecidos con sales minerales (Restrepo, 2002)




FERMENTACIÓN METANOGÉNICA

Según (Medina, 1992) son tres las etapas durante la fermentación del biogás: son

llevados a cabo por tres grupos de bacterias o microbios (Fig. 2)

Figura 2. Bacterias de las tres fases de fermentación del biogás

Cada vez que se carga el biodigestor con estiércol fresco y agua por la tubería de

entrada, por el otro extremo (tubería de salida) rebalsan 80 litros de Biol. Este Biol

es estiércol y agua que se fermentó dentro del biodigestor (Martí, 2008).

El Biol es un fertilizante líquido que sustituye completamente el fertilizante

químico. Filtrado, el Biol puede ser utilizado como fertilizante foliar en la mochila, o

puede ser vaciado directamente al suelo y a los canales de riego. Los productores

que lo emplean mencionan que su producción de cultivos aumenta entre 30% a

50%. Además, el Biol protege contra los insectos y permite recuperar las plantas

afectados por la helada (Martí, 2008).

POLISACÁRIDOS 1° Fase: Bacterias de fermentación

Ácido Propánico Ácido Butírico Ácido Láctico Ácido Acético

AZÚCAR

Ácido acético Hidrógeno Ácido formico C2O

2° Fase: Bacterias acetogénicas que producen hidrógeno

CH4+CO2+H2O 3° Fase: Bacterias metanogénicas




2.6.7.6 Elaboración del Biol El estiércol y el agua son la materia prima base para los biofertilizantes; no

obstante, éstos se pueden enriquecer con minerales y otros ingredientes

complementarios, que pueden adicionarse de forma opcional (Tabla 4).

Tabla 4. Parámetros útiles para la elaboración del Biol

Fuentes de estiércol

Cantidad utilizada

Estiércol % Agua %

Bovino 1 parte 50 1 parte 50

Porcino 1 parte 25 3 partes 75

Avícola 1 parte 25 3 partes 75 Fuente: Maldonado (2006) El proceso de fabricación del Biol es similar en todos los casos, ya sea empleando

uno u otro ingrediente. En un tanque de 200 litros se mezclan el estiércol (de

bovino = mitad del tanque; de cerdo o gallinaza= cuarta parte del tanque), alfa alfa

u otra leguminosa picada en proporción del 5% de la biomasa total a digestarse y

se agrega agua en medida necesaria, cuidando de que quede un espacio de 20

cm. entre el agua y el filo del tanque. Se cierra el tanque (manteniendo las

condiciones anaeróbicas) y pasados 90 días, el Biol está listo para extraerse

(Maldonado, 2006).

Para el caso de la elaboración del Biol utilizado en la tesis se siguió el siguiente

procedimiento:

- Inicialmente se colocó el aislante de paja brava, dentro del biodigestor.

- Luego se añadió al biodigestor 17 baldes de estiércol de vaca, cada balde tenía

la capacidad de 20 litros. Lo que por cálculos podemos indicar que en total se

añadió 340.000 cm3 de abono de vaca.

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2.6.7.7 Análisis Físico Químico del Biol (Fertilizante Foliar Líquido) Aproximadamente el 90% del material que ingresa al Biodigestor se transforma a

Biol. Esto depende naturalmente del tipo de material a fermentar y de las

condiciones de fermentación. A continuación se presenta la composición del Biol

(Tabla 5).

Tabla 5. Composición química del Biol

N° lab. Parámetro Resultado Unidades Método

202-01/2011 Nitrógeno 0,08 % N Kjeldahi

202-02/2011 Fósforo 0,01 % P EspectroFotometría UV – Visible

202-03/2011 Potasio 0,52 % K Emisión atómica

202-04/2011 Carbón orgánico 0,25 % Walkley – Black

202-05/2011 Calcio 0,033 % Ca Absorción atómica

202-06/2011 Magnesio 0,012 % Mg Absorción atómica

202-07/2011 Manganeso 0,99 mk/kg Mn Absorción atómica

202-08/2011 Cobre 0,35 mk/kg Cu Absorción atómica

202-09/2011 Zinc 7,68 mk/kg Zn Absorción atómica

202-10/2011 Hierro 6,11 mk/kg Fe Absorción atómica

202-11/2011 Materia Seca 2,30 % Gravimetría

202-12/2011 Humedad 97,70 % Gravimetría

202-13/2011 pH 7,75 - Potenciometría

202-14/2011 Conductividad eléctrica

18,57 mS/cm Potenciometría

Fuente: Biol de estiércol de vacuno. Centro Experimental de Choquenaira – Los resultados del

Análisis Físico Químico de Biol corresponde a los laboratorios de IBTEN.

2.6.8 Ventilación El intercambio de aire es de importancia máxima, especialmente durante las horas

del día. El cierre de los ventiladores a mayores temperaturas para conservar el

calor también puede llevar a problemas de enfermedades por hongos. El aire de




las temperaturas mayores puede retener más vapor de agua a una humedad

relativamente dada que a una temperatura menor (Larson & Raymond, 1988).

Al atrapar el aire caliente con el alto contenido de humedad cerrando temprano los

ventiladores, se puede favorecer la condensación en las plantas conforme la

temperatura disminuye y se aproxima al punto de rocío. Las enfermedades por

hongos medran bajo estas condiciones (Larson & Raymond, 1988).

Aspersiones para el control de enfermedades pueden ser útiles a menos que las

prácticas que proporcionan excelentes condiciones ambientales para el

crecimiento y la diseminación de enfermedades sean corregidas (Larson &

Raymond, 1988).

2.6.9 Despunte

El despuntado no es más que el retiro del botón floral en alguna etapa antes de la

floración. Tan pronto como el botón es visible se puede retirar junto con el tallo y

hojas hasta la segunda hoja de cinco foliolos. Esto se llama despuntado suave.

Los despuntes se consideran suaves hasta que el botón desarrolle el tamaño de

un chícharo o ligeramente mayor (Larson & Raymond, 1988).

Después de un despuntado duro. Generalmente hay poca diferencia en el tallo

floral en floración posterior a cualquiera de estos cortes; sin embargo, con un

despunte suave casi siempre se requiere más días para florear (Larson &

Raymond, 1988).

Sobre las plantas jóvenes se suelen aplicar uno a dos despuntes, para favorecer

la ramificación, lo que repercute positivamente sobre el número de flores; en

cambio, esta técnica presenta el inconveniente de retrasar la floración en casi un

mes (Guerrero, 1987).




2.6.10 Desbotonado Esta técnica consiste en eliminar todos los brotes florales que no interesan, ya que

perjudicarían el desarrollo de las flores que se encontrarán en estado avanzado de

floración. Debe efectuarse una vez al mes en los rosales de rosas grandes y dos

veces cada semana en los rosales Minis (Guerrero, 1987).

2.6.11 Poda La poda es la práctica de retirar las copas de las plantas hasta un punto donde

cortes y despuntes puedan otra vez manejar el crecimiento de la planta. La

mayoría de los rosales necesita alguna poda durante el segundo año y cada año

posterior. La primera poda después de la plantación se deberá realizar para retirar

las copas hasta un punto a 60 a 90 cm por encima de la línea del suelo (Larson &

Raymond, 1988).

Los arbustos de dos años ya tienen formada la estructura principal de las ramas.

Las ramas principales se acortan cuatro a seis yemas desde su base y se eliminan

por completo los vástagos débiles. Puede dejarse un vástago florecer para la

autenticidad de la variedad. Posteriormente la poda se lleva a cabo cada vez que

se cortan las flores, teniendo en cuenta los principios antes mencionados

(Sánchez, 2005).

El corte se deberá realizar por encima de una buena yema situada en madera con

corteza verde. Mediante cortes y despuntes apropiados la segunda poda se puede

realizar en un punto ligeramente más arriba que el del año anterior (Larson &

Raymond, 1988).




En el cultivo de rosales para flor cortada pueden emplearse diversas técnicas que

nos permitirán dirigir la floración. Nos interesa sobre todo obtener flores durante

los meses de invierno, que es cuando los precios en el mercado son más altos.

Esto lo podemos conseguir dirigiendo el reposo vegetativo y la poda (Guerrero,

1987).

Podemos optar por un cultivo que produzca flor continuamente durante todo el

año. Entonces no se podará, sino que a partir del mes de enero – cuando se corte

la flor – se hará una especie de poda en verde, cortando por debajo de la inserción

de la rama floral (Guerrero, 1987).

Cuando se quiera obtener flores a partir del mes de diciembre, se procederá a

efectuar una poda corta a las variedades que forman muchos chupones; a las

demás de les hará una poda larga. La poda se realizara durante el mes de

septiembre. Se obtendrá flores en los meses de diciembre, marzo, mayo y

mediados de junio (Guerrero, 1987).

En el tercer sistema se practica el reposo vegetativo a principios de enero y se

efectúa una poda corta. La primera floración se obtendrá en marzo. La segunda en

mayo, junio y la tercera en septiembre (Guerrero, 1987).

2.6.12 Letargo Cuando se tiene que dejar el cultivo en estado de letargo, se interrumpe la

calefacción, se abren los ventiladores y se corta el riego, por lo que las plantas

cesan en su intensa actividad vital. Por regla general el letargo dura de 4 – 6

semanas, después del cual se proporciona un intenso riego, restableciéndose la

calefacción para que la planta interrumpa su estado durmiente (Harrison, 1985 et

al).

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2.6.14 Post - Cosecha Una vez cortadas las flores, los tallos cortados se van colocando en bandejas o

baldes con solución nutritiva, sacándolos del invernadero tan pronto como sea

posible para evitar la marchitez por transpiración de las hojas. Se sumergen en

una solución nutritiva caliente y se enfrían rápidamente (Sánchez, 2005).

Antes de formar ramos se colocan las flores en agua o en una solución nutritiva

conteniendo 200 ppm de sulfato de aluminio o ácido nítrico y azúcar al 1,5 – 2%,

en una cámara frigorífica a 2 - 4°C para evitar la proliferación de bacterias. En el

caso de utilizar solo agua, debe cambiarse diariamente (Sánchez, 2005).

Una vez que las flores se sacan del almacén, se arrancan las hojas y espinas de la

parte inferior del tallo. Los tallos se clasifican según longitudes, desechando a aquellos

curvados o deformados y las flores dañadas. Esto se hace de forma manual o

mecanizada. La calidad de la flor solo se determina manualmente (Sánchez, 2005).

Finalmente se procede a la formación de ramos por decenas que son enfundados

en un film plástico y se devuelven a su almacén para un enfriamiento adicional (4-

5°C) antes de su empaquetado. La rosa cortada necesita unas horas de frío antes

de comercializarla (Sánchez, 2005).

Según (Sánchez, 2005) la clasificación de las rosas se realiza según la longitud

del tallo, existen pequeñas variaciones en los criterios de clasificación, pero

orientativamente se detallan así en las tablas 6 y 7:




Tabla 6. Calidad de rosas grandes por la medida del tallo (Sánchez, 2005)

Calidad Medida de Tallo

Extra 90 – 80 cm

Primera 80 – 70 cm

Segunda 70 – 60 cm

Tercera 60 – 50 cm

Corta 50 – 40 cm

Tabla 7. Clasificación de mini – rosas por la medida del tallo (Sánchez, 2005)

Calidad Medida de tallo

Extra 60 – 50 cm

Primera 50 – 40 cm

Segunda 70 – 60 cm

Tercera 40 – 30 cm

Corta menos de 30 cm

La calidad EXTRA, además debe tener un botón floral proporcionado y bien

formado y un buen estado sanitario (Sánchez, 2005).




En la Tabla 8 se pueden observar los requisitos de calidad de la rosa según

IBNORCA (Instituto Boliviano de Normalización y Calidad) extraído de (Diez, 2007) Tabla 8. Requisitos de calidad de la rosa

Categ.

Caract. 80 70 60 50 40

Apertura de la flor1 Intermedia Intermedia Intermedia Intermedia Intermedia

Longitud del tallo en cm. 80 70 60 50 40

Tamaño de la flor en cm2. 6,2 6,0 5,7 5,4 5,0

Rigidez del tallo Rígido Rígido Rígido Rígido Rígido

Plagas y Enfermedades Sin Presencia Sin Presencia Sin Presencia Sin Presencia Sin Presencia

Daños mecánicos Ninguno Ninguno Leve Leve Leve

Tolerancia de Calidad en % 0 0 5 10 10

Presentación Homogénea Homogénea Homogénea Homogénea Homogénea

Fuente: Diez de Medina (2007)

Según (Harrison, 1985 et al.) las características que deben cumplir los rosales y

las rosas para flor cortada son:

PLANTA: debe ser vigorosa, con ramas rectas y rígidas, sin muchas espinas;

adaptabilidad al corte de la flor y capacidad de reprender la vegetación después

del corte; buena capacidad para formar yemas basales; abundante floración y

buena capacidad para reflorecer (Foto 7).

1 En algunos casos la apertura de flor está sujeta a petición del cliente. 2 Se refiere a la longitud medida desde la base de los pétalos, hasta el borde superior de los mismos

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- Acaric

F


es, 2002) e

espolvoreo

erizaciones

debe aplic

10-12 días

C)

a roja y sínttp://www.info

Síntoma e

RIAS ACTIV

z, Bifentr

enotion, etc

(Morales, 2

materias a

e hay much

caricida, de

cida Araña

cida concen

FACULTAD DE

POR NIVELES

T EN AMBIEN

el tratamien

es bueno p

para llegar

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ntomas en ojardín.com

Síntom

en el haz

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rin, Abam

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2002) los p

activas en

hos otros):

e Krafft.

Roja, de C

ntrado, de F

E AGRONOMÍ

APLICADO EN

NTES CONTRO

nto es com

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la planta p

mas por áca

Sín

E PUEDE E

mectina, F

productos c

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Compo.

Flower.

ÍA – CARRERA

N ROSAS INJ

OLADOS"

plicado por

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os recovec

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EMPLEAR C

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A DE INGENIE

JERTADAS

rque se ref

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l envés

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RÍA AGRONÓ

TESIS DE G Págin

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btener un

aricidas co

ra muy ele

arañas

ARICIDAS

, Fenaza

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los siguie

ÓMICA

GRADO na 41

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UM

"INCDE

MSA


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(Morale

Foto 9 Disponib

Pulveriz

- Ortigas

araña

caldo c

ramas

- Infusióprimav

- Infusioen prim

- Jabón soleada

- Pieles (Morale

F


DIOS ECO

sus depred

seius califo

n a la venta

ernaderos.

es, 2002).

. Depredadble en http://w

zar con:

s secas enroja. La ún

consiste en

en árboles

ón de helera (Morale

ones de Ajmavera y oto

neutro, qu

as (Morales

de cebollaes, 2002).

FACULTAD DE

POR NIVELES

T EN AMBIEN

LÓGICOS

dadores na

rnicus com

a preparado

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dor de arañwww.infojardí

n infusiónnica condic

n pulverizar

y arbustos

lechos dilu

es, 2002).

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ue se debe

s, 2002).

a repartidas

E AGRONOMÍ

APLICADO EN

NTES CONTRO

CONTRA Á

aturales per

me huevos,

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ñuela Ambín.com

es un bue

ción a tene

r las planta

s de hoja ca

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es, 2002).

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s por el sue

ÍA – CARRERA

N ROSAS INJ

OLADOS"

ÁCARO

ro no cont

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os depredad

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A DE INGENIE

JERTADAS

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alifornicus.

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ales, 2002)

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RÍA AGRONÓ

TESIS DE G Págin

aga totalm

Ácaros (Fot

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.

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ra de aplic

ción de hoj

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ÓMICA

GRADO na 42

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"INCDE

El

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MSA


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ncipalmente

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to 10. Pulgponible en ht

Pulgon

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F


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gón y síntotp://www.infoj

es

les, 2002)

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tivas que

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FACULTAD DE

POR NIVELES

T EN AMBIEN

Macrosiphu

más frecu

tiernos pr

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e. Otro sín

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en esta me

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10).

omas en lajardín.com

Sí

menciona

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n en la ep

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efato, Mala

E AGRONOMÍ

APLICADO EN

NTES CONTRO

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Negrilla que

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tion, etc.

ÍA – CARRERA

N ROSAS INJ

OLADOS"

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el típico en

e abren. Vie

la melaza

e se asienta

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r su ataqu

brote

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los primero

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A DE INGENIE

JERTADAS

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nrollamient

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(un líquid

a sobre ella

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a los vástag

e.

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y el pulgón

os síntoma

Pirimicarb

RÍA AGRONÓ

TESIS DE G Págin

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o de las h

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o azucara

a y la prese

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n negrilla

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sistémicos

n, al chupa

as. Hay mu

b, Etiofen

ÓMICA

GRADO na 43

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UM

"INCDE

MSA


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− Una

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F


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trola comp

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0 pulgones.

1. Depredable en http://w

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ctadas con

02).

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verizadores

o remedio

piente 500

FACULTAD DE

POR NIVELES

T EN AMBIEN

ÓGICOS

os enemigo

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letamente y

les, 2002)

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ndiscriminad

en estado

La larva de

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ariquita

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gua 2 cuch

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de agua,

s no se obs

consiste en

0 gramos d

E AGRONOMÍ

APLICADO EN

NTES CONTRO

os naturale

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y hay que r

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ÍA – CARRERA

N ROSAS INJ

OLADOS"

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el pulgón

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rales, 2002

sión a base

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A DE INGENIE

JERTADAS

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atamientos

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o su destru

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rante 20 dí

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es pulveri

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uy sencilla:

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de cigarros

que las bo

2).

e de ortiga

5 litros de

RÍA AGRONÓ

TESIS DE G Págin

o lo para

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químicos.

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ÓMICA

GRADO na 44

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"INCDE

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F


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les, 2002)

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s decolorac

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a en el haz

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e Invierno, d

FACULTAD DE

POR NIVELES

T EN AMBIEN

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E AGRONOMÍ

APLICADO EN

NTES CONTRO

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ÍA – CARRERA

N ROSAS INJ

OLADOS"

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A DE INGENIE

JERTADAS

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RÍA AGRONÓ

TESIS DE G Págin

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ÓMICA

GRADO na 45

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"INCDE

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FACULTAD DE

POR NIVELES

T EN AMBIEN

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E AGRONOMÍ

APLICADO EN

NTES CONTRO

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l. Su síntom

o flores (F

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ÍA – CARRERA

N ROSAS INJ

OLADOS"

y protegido

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A DE INGENIE

JERTADAS

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rales, 2002)

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RÍA AGRONÓ

TESIS DE G Págin

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ÓMICA

GRADO na 46

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FACULTAD DE

POR NIVELES

T EN AMBIEN

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E AGRONOMÍ

APLICADO EN

NTES CONTRO

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ÍA – CARRERA

N ROSAS INJ

OLADOS"

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A DE INGENIE

JERTADAS

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RÍA AGRONÓ

TESIS DE G Págin

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ÓMICA

GRADO na 47

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02).

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l tallo.

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2.7 ECONOMÍA EN LA FLORICULTURA A NIVEL INTERNACIONAL 2.7.1 Producción de Ornamentales a Nivel Internacional

La producción de ornamentales en el mundo se ha incrementado notablemente en

volumen y valor de producción; así como en la especialización y comercialización.

Para lograr tener éxito en la producción de ornamentales es necesario: producir

con calidad, tener productos homogéneos y estandarizados, cumplir con

volúmenes de producción y tener canales de distribución y comercialización

(FUNPROVER, 2008).

Los países líderes en la producción de flores se caracterizan por tener tecnología

para producir, buena organización de productores, realizan un manejo adecuado

en cosecha y pos cosecha, altos estándares de calidad y buenos canales de

comercialización. A nivel mundial, Holanda es el principal productor y comercializador

de flores, seguido de Colombia, La Unión Europea, Ecuador y Kenia (Tabla 9). Otros

países como Israel, Italia y Tailandia están tomando importancia (FUNPROVER, 2008).

Tabla 9. Principales países exportadores de flores en el Mundo

(en Millones de dólares) País/ Año 2000 2001 2002 2003 2004

Holanda 2 056.54 1 938.14 2 123.35 2 778.94 3 009.49 Colombia 583.02 609.50 665.68 679.40 699.43 Unión Europea 347.53 342.27 394.24 438.87 340.81 Ecuador 154.53 228.09 288.45 293.33 231.37 Kenia 90.57 134.29 99.38 175.45 83.62 Otros 361.00 349.76 217.70 300.99 693.55 Total 3 593.41 3 602.05 3 788.80 4 666.98 5 058.27

Fuente: ASERCA, 2006




La demanda de ornamentales en el mercado internacional se ha incrementado en

los últimos años, principalmente en los países con alto poder adquisitivo; entre los

cuales sobresalen Alemania, Reino Unido, Estados Unidos, Holanda y Francia

(Tabla 10) (FUNPROVER, 2008).

Tabla 10. Principales países importadores de flores en el mundo (en millones de dólares)

País / Año 2000 2001 2002 2003 2004 Alemania 703.73 766.73 792.03 825.75 1 048.61 Reino Unido 530.55 568.67 785.87 896.59 1 005.04 Estados Unidos 753.96 700.47 671.11 758.12 880.40 Holanda 421.99 412.06 437.88 472.51 493.46 Francia 350.04 335.35 372.15 452.27 487.58 Otros 1 069.63 1 091.21 1 115.95 1 294.21 1 531.92 Total 3 829.90 3 874.24 4 174.99 4 699.45 5 447.01

Fuente: ASERCA, 2006

2.7.2 Tipos de Flores en el Mercado Internacional Las flores más vendidas en el mundo son las rosas, crisantemos, tulipanes,

claveles y lilium (lirios). A continuación se realizará una breve reseña de la

situación productiva de los países de mayor relevancia en el mercado mundial

para el cultivo de la rosa, que es el cultivo de interés por haberse hecho en esta el

estudio de tesis.

ROSAS

Ninguna flor ornamental es tan valorada como la rosa. A partir de la década

de los 90 su liderazgo se consideró, debido principalmente a una mejora de

las variedades, la ampliación de la oferta a todo el año y una creciente

demanda. Sus principales mercados de consumo son Alemania, Estados

Unidos y Japón (FUNPROVER, 2008).




Se trata de un cultivo muy especializado, que ocupa aproximadamente 1

000 ha de invernadero en Italia, 920 en Holanda, 540 en Francia, 250 en

España, 220 en Israel y 200 en Alemania. En países sudamericanos se ha

incrementado en los últimos años la producción, sobre todo en Colombia

(cerca de 1 000 ha) y Ecuador (FUNPROVER, 2008).

Otros países productores son Zimbabwe, con 200 ha y Kenia con 175 ha,

en África del Este. Japón es el primer mercado de consumo en Asia y su

superficie destinada al cultivo de rosas va en aumento; en la India se

cultivan en la actualidad alrededor de 100 ha (FUNPROVER, 2008).

2.7.3 Principales Países Productores de Ornamentales La superficie cultivada con flores de corte en el año 2004 fue de 354.451 hectáreas

(Figura 3), de los cuales India y China ocupan el 52%. La superficie cultivada no es un

indicador que muestre la importancia productiva, pues los sistemas intensivos como

invernaderos utilizan muy poca superficie; pero si muestra la importancia social y

económica que tienen estos productos en los países productores, aunque su

productividad no sea la mejor (FUNPROVER, 2008).




Figura 3. Superficie mundial cultivada por los principales países

productores de ornamentales, 2004.

Fuente: AIPH/Union Fleurs: International Statistics Flowers and Plants 2004.

El valor de la producción de flores es un indicador que muestra con mayor

efectividad la situación de esta actividad. Debido a la diversidad en precios, tipos,

calidades y cantidades de los productos en el mercado es difícil cuantificar su

valor con respecto a la superficie. Sin embargo, es necesario aclarar que existen

muy pocas fuentes de información estadística para el producto flores o plantas de

ornato, lo cual dificulta el análisis y proyección fidedignos; además existe

discrepancia entre las fuentes encontradas (FUNPROVER, 2008).

El valor de producción de flores de corte en el mundo fue de 68 160.3 millones de

dólares en el año 2004; y sobresalen Estados Unidos y Holanda con los mayores

valores producidos, 6.362 y 4.293 millones de dólares, respectivamente; y otros

países con menor importancia son Japón e Italia. En conjunto estos países

producen el 63% del valor total de la producción mundial (Figura 4)

(FUNPROVER, 2008).

UM

"INCDE

Fig

Fue

2.7 Ho

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las

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575

"bo

Ale

(FU

MSA


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s Exportado

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as rosas y

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R, 2008).

FACULTAD DE

POR NIVELES

T EN AMBIEN

produccióorte, 2004

nternational S

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al exportad

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$ 3 100 mil

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do, Francia

E AGRONOMÍ

APLICADO EN

NTES CONTRO

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ÍA – CARRERA

N ROSAS INJ

OLADOS"

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A DE INGENIE

JERTADAS

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Italia 8,3

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Francia

Canadá

Repúbli

Colomb

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RÍA AGRONÓ

TESIS DE G Págin

productore

e y sus ve

o 2000 – 2

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do, y repres

ersos arreg

s exportad

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s Unidos 24,0%

a 16,2%

4,5%

3%

ia 5,4%

4,4%

2,8%

ca de Corea 2,

ia 2,5%

Unido 2,2%

ÓMICA

GRADO na 52

es de

entas

2005,

a la

sentó

los y

os a

mente

%

6%




Colombia con $ 906 millones de dólares es el segundo exportador mundial de

flores, seguida por Ecuador ($ 370 millones de dólares), Kenia ($ 146 millones de

dólares), Italia, Tailandia, Bélgica e Israel (FUNPROVER, 2008).

Las exportaciones de Ecuador representaron cerca del 6% del total mundial en el

año 2005, sus principales mercados son Estados Unidos, Holanda y Rusia; y las

rosas representan 75% de las ventas al exterior (FUNPROVER, 2008).

2.7.5 Países Importadores En el año 2005, Alemania y el Reino Unido, con una participación del 18% cada

uno; Estados Unidos (17%), Holanda (11%), Francia (10%), Japón (4%) e Italia

(4%) fueron los principales países importadores de flores. Es conveniente

mencionar que el mercado de Alemania y Reino Unido, pese a ser los más

importantes en términos de valor, mostraron una saturación de sus mercados al

disminuir sus compras en 8 y 4%, respectivamente en el año 2005; mientras que

se observa una tendencia de incremento en el Reino Unido (Tabla 11)

(FUNPROVER, 2008).

Estados Unidos es el principal mercado para las flores de corte en América, sin

embargo su consumo per cápita ($ 37 dólares) está por debajo del consumo

promedio de algunos de los principales países europeos. Las importaciones

representan una producción para satisfacer la demanda, principalmente de

Colombia y Ecuador (FUNPROVER, 2008).




Tabla 11. Principales países importadores de flores de corte en el mercado mundial

Importadores

Valor importado en 2005 (miles de dólares)

Cantidad Importada en

2005 (ton)

Crecimiento anual de valor en 2003 –

2005 (%)

Crecimiento anual en

cantidad en 2003 – 2005 (%)

Alemania 970.928 178.651 3 -1

Reino Unido 947.928 158.101 5 -27

Estados Unidos 905.951 181.877 8 s.i.

Holanda 576.567 335.645 14 183

Francia 517.196 78.771 5 -18

Japón * 229.713 31.308 12 12

Italia 208.727 32.713 14 12

Federación Rusa* 169.664 28.284 40 17

Suiza* 161.317 14.660 6 0

Bélgica 133.964 26.482 15 10

Austria 108.429 19.858 17 32

Dinamarca 100.083 13.461 25 10

Canadá 96.129 19.389 8 s.i.

Suecia 72.860 9.618 17 11

Fuente: EUROSTAT (para países de la EU) y UNCTAD_ITC*Trademap (para el resto)

* Las tasas de crecimiento en valor y cantidad corresponden al periodo 2001 – 2005 para los países no

pertenecientes a la Unión Europea. 2.8 LA FLORICULTURA EN BOLIVIA La producción comercial de flores de corte ha sido y es una actividad económica y

social importante en los valles templados, fríos y mesotérmicos de Bolivia.

Especialmente en la zona subtropical y en los valles de Cochabamba, las flores de

corte son parte del paisaje y de la cultura; las condiciones agroecológicas de la

región permiten el cultivo de una amplia variedad de especies.

La floricultura boliviana genera fuentes de empleo directo e indirecto, se estima

que sólo en los valles de Cochabamba más de 8.000 personas dependen de esta

industria y, aproximadamente, 15.000 personas a nivel nacional; cifra que incluye




a todos los actores de la cadena: proveedores de servicios, comerciantes

mayoristas y minoristas. Buena parte de la floricultura nacional es llevada adelante

por medianos y pequeños floricultores, cuya producción está destinada al mercado

nacional (FDTA- Valles, 2012).

El Programa Flores de Corte, de Fundación Valles, impulsa el desarrollo integral

de la cadena flores de corte. Fomenta la implementación de proyectos de

innovación tecnológica y apoya la identificación y desarrollo de potenciales

mercados regionales. La meta es formar productores líderes con capacidades

empresariales y fomentar la creación de microempresas sostenibles (FDTA-

Valles, 2012).

2.8.1 Principales Destinos de las Exportaciones Bolivianas Las exportaciones de rosas que contienen diversos usos y beneficios, con una

demanda cada vez mayor en el mundo entero, tuvo su auge en Bolivia a finales de

los años 90, cuando se exporto un valor de USD 3 millones. Sin embargo,

entrando a la nueva década empezó a decaer por diversas razones, llegando el

año 2005 a exportar un USD 43.7 mil y para el año 2009 aproximadamente USD

10 mil. Sin embargo, durante el año 2010, las exportaciones alcanzaron

aproximadamente USD 30 mil (IBCE, 2011).

Además, las exportaciones totales de los productos de flores, especificados

anteriormente, representaron durante el año 2010 un total aproximado de USD 32

mil en valor y 11 toneladas en volumen. No obstante, a pesar del crecimiento de

varios productos durante los tres años anteriores, en general se tuvo una

disminución del 10% en la tasa de crecimiento (IBCE, 2011).

Según el IBCE, 2011 las exportaciones registradas para el año 2010, de las

distintas clases de flores bolivianas muestran los siguientes destinos (Tabla 12):




Tabla 12. Principales países importadores de flores bolivianas en el año 2010 expresados en dólares y kilogramos.

Países de destino Valor (USD) Volumen (Kg) Tasa de crecimiento

Total flores 32.437 10.834 -10%

Rosas frescas

Paraguay 30.253 9.666 707%

Claveles

Paraguay 2.100 1.130 133%

Las demás flores y capullos, cortados para ramos o adornos frescos

E. U. de América 84 38 -508%

Fuente: Instituto Nacional de Estadística – INE

Elaboración: Instituto Boliviano de Comercio Exterior – IBCE (enero 2011)

Cabe hacer notar, que las exportaciones de "rosas frescas" y "los demás claveles"

han alcanzado buenas cifras el año pasado, llegando a crecer en 707% y 1335

respectivamente (Figura 5). Sin embargo, se han reducido las exportaciones de

"las demás flores y capullos, cortados para ramos o adornos, secos, blanqueados,

tejidos, impregnados o preparados de otra forma" (IBCE, 2011).

Figura 5. Principales productos de flores bolivianas exportadas en el año

2010 expresadas en dólares

Fuente: Instituto Nacional de Estadística – INE

Elaboración: Instituto Boliviano de Comercio Exterior – IBCE (enero 2011).




3. MATERIALES Y MÉTODOS

3.1 LOCALIZACIÓN El presente trabajo de investigación se realizó en el Centro Experimental de Cota

Cota dependiente de la Facultad de Agronomía, ubicado en la zona sur de la

ciudad de La Paz, a una altitud de 3445 m.s.n.m., situado a 16º32’04’’ Latitud S. y

68º 03’44’’ Longitud W

3.2 CARACTERÍSTICAS DEL SUELO. El suelo se caracteriza por tener una textura predominantemente arcillosa. En

cuanto al análisis químico de Nitrógeno, Fósforo y Potasio realizado por el IBTEN

se obtuvieron los siguientes resultados (Tabla 13):

Tabla 13. Análisis químico de N, P, K en los suelos de estudio, realizado por

el laboratorio del IBTEN

N Lab Código Nitrógeno % N

Fósforo asimilable

ppm P

Potasio intercambiable

meq/100g 750/2011 Muestra de suelo,

testigo 0,30 30,33 0,58

751/2011 Muestra de suelo con BIOL

0,24 31,31 0,51

3.3 CARACTERÍSTICAS DE LA ECOREGIÓN Al estar a una altitud de 3445 m.s.n.m el Centro Experimental de Cota Cota, tiene

las características climáticas de una cabecera de valle. Presentando así una

Temperatura máxima media anual de 21.5oC, temperatura mínima media anual de

-0.6ºC, temperatura media anual de 11.5ºC y una precipitación pluvial anual de

488.53 mm.




3.4 MATERIALES 3.4.1 Materiales de Escritorio

- Cuaderno de apuntes

- Computadora

- Impresora

- Tinta para impresión

- Papel para impresión

3.4.2 Materiales de Campo - Cordel de algodón

- Carteles de cartón (Forrados con cinta adhesiva)

- 1 Tijera

- Mochila Fumigadora

- Chuntilla

- Tijeras de podar

- Guantes de cuero

- Botas de goma

- 1 Vernier o calibrador

- 2 Jarras graduadas

- 1 Cinta métrica

- 1 Flexómetro

- 1 Termómetro digital

- 1 Cuaderno de datos

- 1 bolígrafo

3.4.3 Materiales de Gabinete

- Fichas bibliográficas - Libros de consulta




3.5 METODOLOGÍA 3.5.1 Procedimiento Experimental Para el presente trabajo se realizó el siguiente procedimiento experimental:

3.5.1.1 Limpieza del terreno Para esto se procedió al desmalezado en cada uno de los bloques y pasillos.

3.5.1.2 Demarcación de las parcelas experimentales Para esto se utilizaron cordones, con el objetivo de diferenciar las unidades

experimentales de cada tratamiento. Luego se colocaron los diferentes carteles

para saber la ubicación de los distintos tratamientos. Y finalmente se utilizaron

marbetes para diferenciar las muestras por cada tratamiento.

3.5.1.3 Aplicación del Biol El Biol se aplicó de dos maneras la primera es la aplicación foliar aplicándolo al

follaje con ayuda de una mochila (Foto 15) y la segunda manera de aplicación se

aplicó como riego por superficie aplicándolo en el suelo con ayuda de bidones. En

ambos casos se utilizaron las jarras graduadas para medir la cantidad de Biol y de

agua que se utilizó para los diferentes tratamientos. Para el caso de los

tratamientos uno y dos no hay dosis de aplicación del Biol por ser estos dos

tratamientos nuestros testigos, pero para el caso de los siguientes tratamientos se

tiene:

− Tratamiento 1: 0 litros de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar

(testigo)

− Tratamiento 2: 0 litros de Biol en 20 litros de agua con aplicación de riego

por superficie (testigo).

− Tratamiento 3: 1 litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar

UM

"INCDE

La

de

bot

cua

Fot

MSA


− Tratam

superfi

− Tratam

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miento 4: 1 l

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miento 6: 1 ½

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miento 7: 2 l

miento 8: 2

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fecha 11 de

flor.

RÍA AGRONÓ

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e junio del

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riego

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antes

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2011




3.5.1.4 Observación de resultados de la investigación. La observación de los resultados de la investigación se realizó con ayuda de la

medición de las variables de respuesta. Para esto se contó con un vernier que

tomo los datos del diámetro del tallo, diámetro del botón floral y flor, longitud del

botón floral y flor. Los cuales se midieron en la semana y se apuntaron en un

cuaderno. Así mismo se anotó en el cuaderno los datos de la temperatura, el

número de flores por planta, la altura del tallo de corte y diámetro del tallo al

momento de la cosecha, presencia de oídio, pulgones u otros que puedan dañar la

producción como por ejemplo la helada que se presentó durante los meses de

junio a julio que influyo significativamente en la producción de la parcela

experimental mandando al descarte una parte de la producción.

3.6 DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN

El diseño que se utilizó para la investigación corresponde a un "DISEÑO

BIFACTORIAL CON BLOQUES AL AZAR" en el cual se ha utilizado dos factores

(Factor A: Niveles de Biol y Factor B: Formas de aplicación).

El objetivo del diseño bloques al azar es reunir las unidades experimentales a las

cuales se aplicarán tratamientos, en bloques de cierto tamaño, de tal modo que los

tratamientos se efectúen dentro de cada bloque (Padrón, 1996).

Según (IIMA & UNAM, 2000) indican que el término “experimento factorial” o

“arreglo factorial” se refiere a la constitución de los tratamientos que se quieren

comparar. Diseño de tratamientos es la selección de los factores a estudiar, sus

niveles y la combinación de ellos.




3.7 MODELO LINEAL ADITIVO "DISEÑO BIFACTORIAL CON BLOQUES AL

AZAR" Según Ruesga, Peña, Exposito y Gardon (2005)

Yijk = µ + αi + βj + γk + δjk + εijk

Yijk = Es la observación perteneciente al k ésimo nivel del factor B, al j ésimo del

factor A, en réplica i.

µ = Es la media general

αi = Es el efecto del i ésimo bloque

βl = Es el efecto debido al j ésimo nivel del factor A

γk = Es el efecto debido al k ésimo nivel del factor B

δjk= Efecto de la interacción entre el k ésimo nivel del factor B y el j ésimo nivel del

factor A

εijk= Es el error experimental

A = Niveles de Biol B= Forma de aplicación

a1= 0 litros de Biol diluidos en 20 litros de agua b1= Aplicación foliar

a2= 1 litro de Biol diluido en 20 litros de agua b2= Aplicación por riego (suelo)

a3= 1 ½ litros de Biol diluido en 20 litros de agua

a4= 2 litros de Biol diluido en 20 litros de agua




3.8 CROQUIS DEL EXPERIMENTO

3.9 VARIABLES DE RESPUESTA

La investigación inicio antes de la salida de los botones florales, donde se hizo la

aplicación de Biol por vez primera en fecha 5 de abril del 2011. Luego de la aplicación

del Biol los primeros botones florales aparecieron a las tres semanas de la aplicación,

pero la toma de datos de los mismos no se hizo sino hasta que estos tuvieron un

diámetro aproximado al de una semilla de arveja y una longitud de un centímetro.

Posteriormente una vez que los botones florales tomaron el tamaño de una semilla de

arveja y la longitud de un centímetro la toma de datos de las diferentes variables de

respuesta se hizo tres veces a la semana, durante seis meses en los cuales concluyo

la floración y se obtuvieron las flores de corte para la venta.

3.9.1 Incidencia de Pulgones en las Plantas de Rosa (%).

Para medir la incidencia de pulgones en las plantas de rosa se observó si estas

presentaban pulgones en tallos, hojas, flores o botones florales. Luego de esto se

procedió a revisar cuantas plantas fueron atacadas por los pulgones sobre el total

a1b1 a2b1 a1b1 a3b1

a1b2 a2b2 a1b2 a3b2

a3b1 a3b1 a4b1 a1b1

pasillo a3b2 pasillo a3b2 pasillo a4b2 pasillo a1b2 pasillo

a4b1 a1b1 a3b1 a2b1

18.77 m a4b2 a1b2 a3b2 a2b2

a2b1 a4b1 a2b1 a4b1

a2b2 2.35 m a4b2 a2b2 a4b2

0.42 m pasillo

0.57 m

3.52 m




de cada unidad experimental, cada unidad experimental contaba con 15 plantas

de estudio y cuatro repeticiones por tratamiento.

3.9.2 Incidencia de Oídio en las Plantas de Rosa (%).

Al igual que para el caso de la incidencia de pulgones en las rosas, se procedió a

observar si las plantas del rosal presentaban el hongo en tallos, hojas, flores y

botones florales. Luego de esto se siguió con la observación de cuantas plantas

fueron atacadas por el oído sobre el total de cada unidad experimental, cada

unidad experimental contaba con 15 plantas de estudio y cuatro repeticiones por

tratamiento.

3.9.3 Número de Botones Por Planta (Unidades).

Para esto se mantuvo un registro del número de botones florales que se produjo

en la planta durante el tiempo que duro la investigación de campo.

3.9.4 Longitud del Botón Floral (cm).

Se midió con ayuda del calibrador desde la base de la del botón floral hasta el

borde superior del mismo (Foto 16).

Foto 16. Medición de la longitud del botón floral con el uso del vernier. Estación Experimental de Cota Cota, Facultad de Agronomía de la UMSA




3.9.5 Diámetro del Botón Floral (cm).

Tanto el diámetro del botón floral como la longitud de este se tomó cuando el

mismo tenía el diámetro del tamaño de una semilla de arveja aproximadamente

con ayuda de un calibrador (Foto 17).

Foto 17. Medición del diámetro del botón floral con el uso del vernier. Estación Experimental de Cota Cota, Facultad de Agronomía de la UMSA

3.9.6 Diámetro de la Flor (cm).

El diámetro de la flor se registró desde el momento en el que la flor estaba lista

para su cosecha hasta el momento de apertura máxima de la flor. Esto se realizó

con la ayuda de un calibrador con el cual se midió la cabeza floral (Foto 18).




Foto 18. Medición del diámetro de la flor con el uso del vernier. Estación Experimental de Cota Cota, Facultad de Agronomía de la UMSA

3.9.7 Longitud de la Flor (cm).

La longitud de la flor se registró desde el momento en el que la flor estaba lista

para su cosecha hasta el momento de apertura máxima de la flor. Esto se realizó

con la ayuda de un calibrador con el cual se midió desde la base de la flor hasta

el borde de los pétalos de la corola (Foto 19). Foto 19. Medición de la longitud de la flor con el uso del vernier. Estación Experimental de Cota Cota, Facultad de Agronomía de la UMSA




3.9.8 Consistencia del Tallo (cm).

Se evaluó con la siguiente categoría: Consistente que corresponde a los tallos con

diámetros de 0.80 a 1 cm, Medianamente Consistente aquellos tallos que tienen

un diámetro de tallo que corresponden al rango de 0.70 a 0.60 cm y no consistente

son aquellos diámetros menores a 0.60 cm. Para esto se utilizó el vernier o

calibrador con el que se midió el diámetro del tallo en el momento de cosecha de

la flor.

3.9.9 Altura del Tallo de Corte (cm).

Para la altura de tallo de corte se utilizó una cinta métrica, midiendo el tallo desde

la base de la flor hasta el final del tallo de la flor ya cosechada (Foto 20).

Foto 20. Medición de la altura de tallo de corte en una rosa de la variedad Charlott




3.10 ANÁLISIS ECONÓMICO

Tabla 14. Costos de producción del módulo rosas en la Estación

Experimental de Cota Cota, Facultad Agronomía de la UMSA

Superficie (m2) 424,88 m2

Costo de la rosa = 3 Bs/ unidad

N° de trabajadores Bs/ciclo Bs/m2

Trabajadores preparación del sustrato

8 141,63 0,33

Turba 24,00 Tierra negra 18,00 Estiércol de oveja 18,00 Biol - Abono orgánico líquido

84,80 0,92

Plantas de rosal 78,13 Alquiler 360,47 0,85 Agua 229,43 1,35 Electricidad 150 0,35 Sueldo trabajadores 1 trabajador 1 2039,42 4,80 1 técnico 1 3840 9,04 Carpa con callapos 63,63 Sistema de riego 0,70 Plaguicidas 8554,63 6,71 Capuchón para rosa y cinta de agua

989,44 0,59

Herramientas 10,00 Pasajes 288 0,97 Costo total (Bs/m2) 238,36

Ingresos (Bs/m2) 62

Costo total Bs/ año 95105,34Ingresos Bs/año 110640,24B/C 1,16




Tabla 15. Costos de producción del módulo rosas en la Estación Experimental de Cota Cota, Facultad Agronomía de la UMSA

ITEM Unidad Cantidad Costo Unitario

Costo total Bs

Cinta de riego metro 424,58 2,2 934,076 Acoples pieza 6 2 12 Politubo metro 40 12 480 Filtro pieza 1 199 199 Regulador de presión pieza 1 240 240 válvula de aire pieza 1 200 200 Tees pieza 6 3 18 Llaves de paso pieza 4 12 48 Codos pieza 4 2 8 Accesorios pieza 1 240 240 TOTAL 2379,08

En la Tabla 14 se observa que el beneficio/costo es de 1.16 % para la carpa de

rosas de 424,88 m2, es decir con un pequeño ingresos para el productor. Esto se

debe a que gran parte del gasto es debido a la adquisición de plantas de rosal, la

construcción de la infraestructura y la instalación del sistema de riego. Ya para

cuando empiece a haber producción este beneficio / costo se irá incrementando

poco a poco con la venta de las rosas. Porque ya no se harán gastos referidos a la

infraestructura y adquisición de plantas de rosal.

En cuanto a la Tabla 15 se tiene el costo del sistema de riego para la carpa de

424,88 m2, que comparado con la compra de plantas de rosal es mucho menor.





Experimental de Cota Cota, Facultad Agronomía de la UMSA (área de estudio para la tesis)

Superficie (m2) 66.07 m2

Costo de la rosa = 3 Bs/ unidad N° de trabajadores Bs/ciclo Bs/m2

Trabajadores preparación del sustrato

1 22,02 0,33

Turba 24,00 Tierra negra 18,00 Biol - Abono orgánico líquido 84,80 0,92 Alquiler 56,05 0,85Agua 624,38 23,63Electricidad 139,95 2,12Plantas de rosal 78,13Carpa con callapos 63,63Sistema de riego 0,68Capuchón para rosa y cinta de agua

204,53 0,74

Fungicida orgánico para oidio 159,00 1,15 Herramientas 10,00Pasajes 288 6,23 Costo total (Bs/m2) 230,39

Ingresos (Bs/m2) 62

Costo total Bs/ año 13908,47Ingresos Bs/año 15007,20B/C 1,08





Experimental de Cota Cota, Facultad Agronomía de la UMSA

ITEM Unidad Cantidad Costo Unitario Costo total BsCinta de riego metro 18,08 2,2 39,776 Acoples pieza 6 2 12 Politubo metro 10 12 120 Filtro pieza 1 199 199 Regulador de presión pieza 1 240 240 válvula de aire pieza 1 200 200 Tees pieza 2 3 6 Llaves de paso pieza 1 12 12 Codos pieza 4 2 8 Accesorios pieza 1 240 240 TOTAL 1076,78

En la Tabla 16 se observa que el beneficio/costo en el primer año es de 1.08 %

para el área de estudio de 66,07 m2, es decir con pocos ingresos para el

productor. Esto se debe como el caso anterior a que gran parte del gasto es

debido a la adquisición de plantas de rosal, la construcción de la carpa y la

instalación del sistema de riego. Por otra parte se observa que el beneficio / costo

es un poco más que en el caso anterior, por lo que nos conviene invertir en un

área de producción grande, para obtener mayores ingresos.

En cuanto a la Tabla 17 se tiene el costo del sistema de riego para de 66,07 m2,

que pertenece al área de estudio es mucho menor comparado con el gasto que se

hace en la compra de las plantas de rosal.




Figura 6. Comportamiento de la producción de rosa durante los meses de

abril a agosto, en el módulo de rosas de la estación experimental de Cota Cota

Abril Mayo Junio Julio Agosto

U. Cosechadas Totales 92 1501 1208 98 24 U. Cosechadas 92 1445 1071 98 98

U. Descarte 0 56 137 0 0




Figura 7. Comportamiento de la producción de rosa de la variedad

Charlotte, durante los meses de abril a agosto, en el módulo de rosas de la estación experimental de Cota Cota

Abril Mayo Junio Julio Agosto U. Cosechadas Totales 15 220 147 21 6

U. Cosechadas 15 215 124 21 6 U. Descarte 0 5 23 0 0

De acuerdo a la Figura 6 y Figura 7 se observa que en los meses de mayo y junio

se obtuvieron los mejores rendimientos esto debido la poda de descanso realizada

durante los meses de finales de enero y principios de febrero. Juntamente con los

cuidados que se le dieron al cultivo como son riego, control de plagas y

enfermedades, fertilización, desbotonado y otros. Sin embargo también se observa

que en el mes de junio se tuvo más casos de descarte de la producción esto

debido principalmente a las condiciones climáticas como es el caso de la baja de

temperaturas que provocaron la quemadura por frio de botones que no llegaron a

desarrollarse y flores que al sufrir la quemadura por el frio ya no tienen valor

económico y se van directamente al descarte (Foto 21).




Foto 21. Descarte de rosas afectadas por la helada en la Estación Experimental de Cota Cota, Facultad de Agronomía de la UMSA




Figura 8. Comportamiento económico de la producción de rosa durante los

meses de abril a agosto, en el módulo de rosas de la estación experimental de Cota Cota

Rend y Des. Abril Mayo Junio Julio Agosto U. vendidas 92 1445 1071 98 24

U. sin vender 0 56 137 0 0




Figura 9. Comportamiento económico de la producción de rosa de la

variedad Charlotte, durante los meses de abril a agosto, en el módulo de rosas de la estación experimental de Cota Cota

Economía de la producción Abril Mayo Junio Julio Agosto

U. vendidas 15 215 124 21 6 U. sin vender 0 5 23 0 0

De acuerdo a las Figuras 8 y 9 se puede observar que se obtuvo mejores

ganancias durante los meses de mayo y junio. Esto debido a que en mayo una

gran parte de la población lleva rosas para las imágenes de la virgen por ser su

mes de festejo en la religión católica. Por otra parte el 27 de mayo no puede pasar

desapercibido ya que es el día de mayor venta durante el mes de mayo.




Con respecto al mes de junio, no hay muchos lugares donde se puedan adquirir

rosas y si los hay son sumamente caras debido justamente a que no se encuentra

fácilmente rosas para la compra y venta. Es por eso que este es el mes en

segundo lugar después de mayo en el que se obtuvo mayor venta de rosas hasta

antes de que bajaran las temperaturas ya que eso afecto a las ventas, porque se

tuvo que descartar varias rosas por efectos de la helada.

En cuanto a los meses de abril y julio, no hubo mucha venta porque en el mes de

abril los rosales recién empezaban a despertar de la poda de descanso y para el

mes de julio no hubo venta porque los rosales aún seguían luchando contra el frio.

En caso contrario se habría tenido una buena venta especialmente para el 23 de

julio.




Tabla 18. Flujo de caja carpa de rosas perteneciente a la Estación Experimental de Cota Cota

Inversión Gastos

año Sist. de riego Plantas Carpa Trab. Alquiler Agua Electricidad plaguicida Biol Turba Estiercol

de oveja Tierra negra

Bolsas para las

rosas Herramientas Gastos

Totales Ingresos totales

Utilidad acumulada

1 2.379,08 23.235,94 27.035,11 2464,30 720,94 6.959,63 300,00 189,92 84,80 7.138,08 5.353,56 5.353,56 989,44 2.974,20 85.178,56 115.636,90 30.458,34

2 2464,30 720,94 6.959,63 300,00 189,92 84,80 7.138,08 5.353,56 5.353,56 989,44 29.554,23 115.636,90 116.541,01

3 2464,30 720,94 6.959,63 300,00 189,92 84,80 7.138,08 5.353,56 5.353,56 989,44 29.554,23 115.636,90 202.623,68

4 2464,30 720,94 6.959,63 300,00 189,92 84,80 7.138,08 5.353,56 5.353,56 989,44 29.554,23 115.636,90 288.706,35

5 2464,30 720,94 6.959,63 300,00 189,92 84,80 7.138,08 5.353,56 5.353,56 989,44 29.554,23 115.636,90 374.789,02

6 500,00 2464,30 720,94 6.959,63 300,00 189,92 84,80 7.138,08 5.353,56 5.353,56 989,44 30.054,23 115.636,90 460.371,68

7 2464,30 720,94 6.959,63 300,00 189,92 84,80 7.138,08 5.353,56 5.353,56 989,44 29.554,23 115.636,90 546.454,35

8 2464,30 720,94 6.959,63 300,00 189,92 84,80 7.138,08 5.353,56 5.353,56 989,44 29.554,23 115.636,90 632.537,02

9 200,00 2464,30 720,94 6.959,63 300,00 189,92 84,80 7.138,08 5.353,56 5.353,56 989,44 29.754,23 115.636,90 718.419,69

10 2464,30 720,94 6.959,63 300,00 189,92 84,80 7.138,08 5.353,56 5.353,56 989,44 29.554,23 115.636,90 804.502,36

11 2464,30 720,94 6.959,63 300,00 189,92 84,80 7.138,08 5.353,56 5.353,56 989,44 29.554,23 115.636,90 890.585,03

12 2464,30 720,94 6.959,63 300,00 189,92 84,80 7.138,08 5.353,56 5.353,56 989,44 29.554,23 115.636,90 976.667,70

13 2464,30 720,94 6.959,63 300,00 189,92 84,80 7.138,08 5.353,56 5.353,56 989,44 29.554,23 115.636,90 1.062.750,37

14 2464,30 720,94 6.959,63 300,00 189,92 84,80 7.138,08 5.353,56 5.353,56 989,44 29.554,23 115.636,90 1.148.833,03

15 2464,30 720,94 6.959,63 300,00 189,92 84,80 7.138,08 5.353,56 5.353,56 989,44 29.554,23 115.636,90 1.234.915,70

2.579,08 23.235,94 27.535,11 36964,6 10814 104394,4 4500,00 2848,8204 1272 107071 80.303,40 80303,4 14841,56 2974,2 499637,7 1734553,44

De acuerdo a la caja de flujo para un área de cultivo de 424,88 m2 correspondiente a la carpa de rosas perteneciente a la Estación Experimental de Cota Cota, se observa que a partir del primer año de producción se tiene ganancia.




Tabla 19. Flujo de caja rosas Charlott perteneciente a la Estación Experimental de Cota Cota

Inversión Gastos

año Sist. de riego Plantas Carpa

Trab. Prep.

del sust. Alquiler Agua Electricidad

Fungicida orgánico

para oídio Biol Turba Tierra negra

Bolsas para las

rosas Herramientas

Gastos Totales

Ingresos totales

Utilidad acumulada

1 1.076,78 3.613,28 2.802,69 44,05 112,11 1.248,75 279,90 159,00 84,80 1.585,68 1.189,26 409,06 462,50 13.067,86 3.746,25 -9.321,61

2 44,05 112,11 1.248,75 279,90 159,00 84,80 409,06 2.337,67 5.735,00 -5.880,24

3 44,05 112,11 1.248,75 279,90 159,00 84,80 1.585,68 1.189,26 409,06 5.112,61 7.492,50 -3.456,30

4 44,05 112,11 1.248,75 279,90 159,00 84,80 409,06 2.337,67 7.492,50 1.742,57

5 44,05 112,11 1.248,75 279,90 159,00 84,80 1.585,68 1.189,26 409,06 5.112,61 7.492,50 4.166,51

6 500,00 44,05 112,11 1.248,75 279,90 159,00 84,80 409,06 2.837,67 7.492,50 8.865,38

7 44,05 112,11 1.248,75 279,90 159,00 84,80 1.585,68 1.189,26 409,06 5.112,61 7.492,50 11.289,32

8 44,05 112,11 1.248,75 279,90 159,00 84,80 409,06 2.337,67 7.492,50 16.488,19

9 200,00 44,05 112,11 1.248,75 279,90 159,00 84,80 1.585,68 1.189,26 409,06 5.312,61 7.492,50 18.712,13

10 44,05 112,11 1.248,75 279,90 159,00 84,80 409,06 2.337,67 7.492,50 23.911,00

11 44,05 112,11 1.248,75 279,90 159,00 84,80 1.585,68 1.189,26 409,06 5.112,61 7.492,50 26.334,94

12 44,05 112,11 1.248,75 279,90 159,00 84,80 409,06 2.337,67 7.492,50 31.533,81

13 44,05 112,11 1.248,75 279,90 159,00 84,80 1.585,68 1.189,26 409,06 5.112,61 7.492,50 33.957,75

14 44,05 112,11 1.248,75 279,90 159,00 84,80 409,06 2.337,67 7.492,50 39.156,62

15 44,05 112,11 1.248,75 279,90 159,00 84,80 1.585,68 1.189,26 409,06 5.112,61 7.492,50 41.580,56

1.276,78 3.613,28 3.302,69 660,7 1681,61 18731,25 4198,57 2385 1272 12685,4 9514,08 6135,94 462,5 65919,85 106883,75

De acuerdo a la caja de flujo para el área de estudio 66.07 m2 que corresponde a las rosas Charlott, se observa que a partir del sexto año se tiene ganancia. Por lo que la inversión es recuperada a largo plazo comparada con área de cultivo de 424,88 m2. Por lo que es mejor invertir en un área de producción mayor




4. RESULTADOS Y DISCUSIONES 4.1 EVALUACIÓN DEL EFECTO DEL BIOL EN LA INCIDENCIA DE PLAGAS

Y ENFERMEDADES EN EL CULTIVO DE LA ROSA. 4.1.1 Incidencia de Plagas El bioabono aeróbico llamado también abono líquido, producto rico en nutrientes

esenciales para los cultivos, al mismo tiempo por el contenido de insecticida

natural sirve como repelente para controlar plagas que ocasionan perjuicios

(CIPCA, 2002). La plaga que se presentó en los rosales de estudio fue el pulgón verde

(Macrosiphum rosae. Como se observa en la Figura 10 la acción de repelente

contra insectos indicada por CIPCA, 2002 no es lo suficientemente efectivo para

luchar contra los pulgones. Ya que se observa que la diferencia entre la media del

número de plantas afectadas por pulgones es mínima.

Figura 10. Media del número de plantas afectadas por pulgones en el cultivo

de la rosa de la variedad Charlott en la Estación Experimental de Cota Cota

Tratamientos T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8Plantas pulg. 2.88 2 2.75 2.56 2.13 1.75 1.38 1.75




Nota: T 1: Testigo; T 2: Testigo; T 3: 1 litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar; T 4: 1

litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación de riego por superficie; T 5: 1 ½ litros de Biol en 20

litros de agua con aplicación foliar; T 6: 1 ½ litros de Biol en 20 litros de agua con aplicación de

riego por superficie; T 7: 2 litros de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar; T 8: 2 litros de

Biol en 20 litros de agua con aplicación de riego por superficie.

ANVA INCIDENCIA DE PULGONES

De acuerdo a la tabla del ANVA se puede observar que se tuvo un valor

altamente significativo para el Factor A (Niveles de aplicación del Biol) y un

valor significativo para el Factor B (Formas de aplicación del Biol).

Mostrando entonces que tanto la dosis de aplicación del Biol como la forma

de aplicación del mismo influye en la incidencia de pulgones en las plantas

de rosal. Por tanto la forma de aplicación y la dosis de Biol empleada nos

ayudaran a que la planta sea más o menos susceptible al ataque de

pulgones.

Tabla 20. ANVA Incidencia de pulgones en el rosal

F.V. g.l. S.S. C.M. F.c. F.t.Bloque 3 1.59375 0.53125 2.40 0.0969 * A 3 11.34375 3.78125 17.05 <.0001 ** B 1 2.53125 2.53125 11.42 0.0028 * AB 3 2.34375 0.78125 3.52 0.0327 * Error 21 4.65625 0.22172619 total 31 22.46875

CV= 20.64123

PRUEBA DE DUNCAN De acuerdo a la prueba de Duncan se observa que los tratamientos con

más alta incidencia de pulgones son los tratamientos uno (testigo) y tres (1

litro de Biol en 20 litros de agua, con aplicación foliar). Y el tratamiento con

menor incidencia de pulgones pertenece al tratamiento siete (2 litros de Biol

en 20 litros de agua, aplicado de forma foliar). Por tanto este tratamiento es




el que tuvo mejor resultado frente a los otros, al presentar menor cantidad

de plantas atacadas por pulgones. Esto se debe a la acción de repelente

contra insectos que posee el Biol. Sin embargo si se comparan las medias

entre los diferentes tratamientos esta acción de repelente no es de gran

efectividad.

Media A Tratamiento A 2.8750 1 T1 A 2.7500 2 T3 B 2.1250 3 T5 C 1.3750 4 T7

Media B Tratamiento

A 2.5625 2 T4 B 2.0000 1 T2






4.1.2 Incidencia de enfermedades El Biol es un abono orgánico líquido, resultado de la descomposición de los

residuos animales y vegetales, en ausencia de oxígeno contiene nutrientes que

son asimilados fácilmente por plantas haciéndolas más vigorosas y resistentes

(INIA, 2008).

La enfermedad que se presentó en los rosales de estudio fue el oídio

(Sphaerotheca pannosa), en la Figura 11 se muestra la incidencia de oídio para

los diferentes tratamientos, siendo los más afectados los tratamientos uno (testigo)

y tres (1 litro de Biol en 20 litros de agua, con aplicación foliar). Por otra parte se

observa que el oídio no llego a afectar al tratamiento ocho (2 litros de Biol en 20

litros de agua, aplicado como riego por superficie). Por lo que de acuerdo a la

dosis de Biol utilizada y la forma de aplicación se obtuvo mayor resistencia al




ataque de oídio en aquellos tratamientos donde la dosis de Biol fue mayor y la

aplicación del Biol se hizo por riego por superficie. Debido a que las plantas

aprovechan mejor los nutrientes que les proporciona el Biol al absorberlos por la

raíz.

Figura 11. Medias del número de plantas afectadas por oídio en el cultivo de

la rosa de la variedad Charlott en la Estación Experimental de Cota Cota

Tratamientos T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8Plantas enf. 8.63 4.5 5.13 4.06 2.88 2.25 0.5 0






ANVA. INCIDENCIA DE OÍDIO De acuerdo a nuestra tabla del ANVA, se observa que se tiene un valor

altamente significativo para el Factor A (Niveles de Biol), por lo cual la dosis

aplicada en el rosal influye en la incidencia de oídio en los rosales. Por otra

parte se obtuvo un resultado significativo para el Factor B (Formas de

aplicación del Biol) por lo que la forma de aplicación del Biol también influye




en la incidencia de oídio en las rosas. Es decir ambos factores intervienen

para hacer una planta resistente o susceptible al oídio.

Tabla 21. ANVA Incidencia de oídio en el rosal

F.V. g.l. S.S. C.M. F.c. F.t.Bloque 3 2.84375 0.94791667 2.12 0.1286 NS A 3 286.84375 95.6145833 213.47 <.0001 ** B 1 1.53125 1.53125 3.42 0.0786 * AB 3 1.84375 0.61458333 1.37 0.2787 NS Error 21 9.40625 0.44791667 total 31 302.46875

CV= 15.63249

PRUEBA DE DUNCAN De acuerdo a la prueba de Duncan se observa que los tratamientos con

mayor incidencia de oídio pertenecen a los tratamientos uno (testigo) y tres

(1 litro de Biol en 20 litros de agua, con aplicación foliar). Y el tratamiento

con menor incidencia de oidio según indica la prueba de Duncan es el

tratamiento siete (2 litros de Biol en 20 litros de agua, aplicado de forma

foliar). Por otro lado si se exceptúa el tratamiento siete y se observa la

comparación de las medias entre los diferentes tratamientos, se puede ver

que aquellos tratamientos que recibieron los nutrientes que el Biol aporta a

la planta por medio del riego por superficie tuvieron mejores resultados que

aquellas plantas que fueron regadas de forma foliar con Biol. Esto debido a

que las plantas absorben mejor los nutrientes cuando estos son absorbidos

por la raíz.

Media A Tratamientos A 8.6250 1 T1 B 5.1250 2 T3 C 2.8750 3 T5 D 0.5000 4 T7

Media B Tratamientos

A 4.5000 1 T2 B 4.0625 2 T4









4.2 DETERMINACIÓN DEL EFECTO DEL BIOL EN EL NÚMERO DE BOTONES FLORALES OBTENIDOS POR PLANTA DE ROSAL.

El Biol inducen la floración, tienen acción fructificante, estimulan el crecimiento de

tallos, hojas, etc. (Aparcana, 2008).

En la Figura 12 se observa que no existe mucha diferencia entre el número de

botones florales obtenidos por mata ya que al comparar las medias entre los

distintos tratamientos estas no varían demasiado. Por tanto el Biol no influye en el

número de botones florales que se obtengan por planta de rosal.

Figura 12. Medias del número de botones florales entre tratamientos al

finalizar el trabajo de campo

Tratamientos T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8N° botones f. 2.63 3.5 4.13 3.69 3.63 3 4 3.9 Nota: T 1: Testigo; T 2: Testigo; T 3: 1 litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar; T 4: 1








ANVA NÚMERO DE BOTONES FLORALES POR PLANTA

Para el ANVA de la variable de respuesta que corresponde al número de

botones florales por planta se obtuvieron resultados significativos para el

Factor A (Niveles de Biol) y no significativos para el Factor B (Formas de

aplicación del Biol). Por tanto la cantidad de Biol que se utilice influye en

cierta medida en el número de botones florales que se obtiene en las

plantas de los rosales. Pero la forma de aplicación es indistinta.

Tabla 22. ANVA Número de botones florales por planta

F.V. g.l. S.S. C.M. F.c. F.t.Bloque 3 3.84375 1.28125 2.36 0.1006 NS

A 3 11.09375 3.69791667 6.81 0.0022 * B 1 0.28125 0.28125 0.52 0.4797 NS

AB 3 3.09375 1.03125 1.90 0.1608 NS Error 21 11.40625 0.54315476 total 31 29.71875

CV= 20.50756

PRUEBA DE DUNCAN De acuerdo a la prueba Duncan para el número de botones florales por

planta se obtuvieron resultados significativos para el Factor A (Niveles de

Biol), en el que los tratamientos que han obtenido mayor número de

botones florales corresponden a los tratamientos tres (1 litro de Biol en 20

litros de agua, con aplicación foliar) y siete (2 litros de Biol en 20 litros de

agua, con aplicación foliar). Sin embargo si se comparan estos tratamientos

con los otros no se observa gran diferencia entre tratamientos. Esto debido

a que las medias no varían mucho entre sí. Por tanto el Biol no influye de

gran manera en el número de botones florales que se obtienen por planta




Media A Tratamientos A 4.1250 2 T3 A 4.0000 4 T7 A 3.6250 3 T5 B 2.6250 1 T1


A 3.6875 2 T4 A 3.5000 1 T2






4.3 DETERMINACIÓN DEL EFECTO DEL BIOL EN CUANTO A LAS

NORMAS DE CALIDAD DE LA ROSA PARA LA VENTA EN EL MERCADO.

El Biol es un fertilizante líquido que sustituye completamente el fertilizante

químico. Filtrado, el Biol puede ser utilizado como fertilizante foliar en la mochila, o

puede ser vaciado directamente al suelo y a los canales de riego. Los productores

que lo emplean mencionan que su producción de cultivos aumenta entre 30% a

50% (Martí, 2008).

4.3.1 Diámetro de la Flor. De acuerdo a la media del diámetro de la flor que se muestra en la Figura 13 se

observa que no hay mucha diferencia entre tratamientos ya que sus medias no

varían demasiado entre sí. Por tanto el Biol no influyo significativamente en el

tamaño del diámetro de la flor alcanzado en los diferentes tratamientos.




Figura 13. Medias del diámetro de la flor entre tratamientos al finalizar el

trabajo de campo

Tratamientos T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8D. de la flor 5.49 5.60 5.10 4.96 5.58 5.65 4.95 4.51






ANVA DIÁMETRO DE LA FLOR De acuerdo al ANVA para el caso del Factor A (Niveles de Biol), las

distintas dosis de Biol aplicadas en los diferentes tratamientos no muestran

diferencias entre el tamaño del diámetro de la flor, por tanto nuestro

resultado es no significativo. Mientras que para el Factor B (Formas de

aplicación del Biol) nos da un resultado significativo, por lo que la forma de

aplicación influyo en el tamaño del diámetro de la rosa.




Tabla 23. ANVA Diámetro de la flor

F.V. g.l. S.S. C.M. F.c. F.t.Bloque 3 1,76383437 0,58794479 0,87 0.4725 NSA 3 2,18830937 0,72943646 1,08 0.3796 NS B 1 3,19412812 3,19412812 4,72 0.0413 * AB 3 1,67003438 0,55667813 0,82 0.4957 NS Error 21 14,2021906 0,67629479 total 31 23,0184969

CV= 15.57429

PRUEBA DE DUNCAN

De acuerdo a la prueba de Duncan para la variable de diámetro de la flor se

obtuvieron resultados no significativos para el Factor A (Niveles de Biol).

Por lo que la dosis aplicada de Biol no influye en el diámetro de la flor.

Mientras que para el caso del Factor B (Formas de aplicación del Biol) se

observan resultados significativos, por lo que la forma de aplicación del Biol

influye en el tamaño del diámetro de la flor en pequeña medida. Ya que al

comparar las medias de los tratamientos se observa que la diferencia entre

estas no difiere mucho entre sí.

Media A TratamientosA 5.5775 3 T5 A 5.4913 1 T1 A 5.1025 2 T3 A 4.9500 4 T7


A 5.5963 1 T2 B 4.9644 2 T4

Nota: T 1: Testigo; T 2: Testigo; T 3: 1 litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación

foliar; T 4: 1 litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación de riego por superficie; T 5: 1 ½

litros de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar; T 6: 1 ½ litros de Biol en 20 litros de

agua con aplicación de riego por superficie; T 7: 2 litros de Biol en 20 litros de agua con

aplicación foliar; T 8: 2 litros de Biol en 20 litros de agua con aplicación de riego por

superficie.




4.3.2 Longitud de la Flor.

En la Figura 14 se muestra la media de los tratamientos, donde se observa que no

existe una variación grande entre estos y más bien la variación entre las medias

de los distintos tratamientos es muy reducida. Por lo que el Biol no influye en la

longitud de la flor.

Figura 14. Medias de la longitud de la flor entre tratamientos al finalizar el

trabajo de campo

Tratamientos T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8L. de la flor 5,84 6,13 6,21 6,10 6,30 6,42 6,12 6,01






ANVA LONGITUD DE LA FLOR

De acuerdo a la tabla del ANVA para la longitud de la flor, se puede

observar que se obtuvieron resultados no significativos, es decir el Biol no

influyo en el tamaño de la longitud de la flor alcanzada ya que la variabilidad

entre la longitud de la flor alcanzada entre tratamientos es muy poca. Por




tanto el Factor A (Niveles de Biol) y el Factor B (Formas de aplicación del

Biol) no influyeron el tamaño de la longitud de la flor alcanzada al finalizar el

trabajo.

Tabla 24. ANVA Longitud de la flor

F.V. g.l. S.S. C.M. F.c. F.t.Bloque 3 2,15828437 0,71942812 2,82 0.0637 *A 3 0,94938437 0,31646146 1,24 0.3200 NS B 1 0,00525313 0,00525313 0,02 0.8873 NS AB 3 0,15155937 0,05051979 0,20 0.8965 NS Error 21 5,35644063 0,2550686 total 31 8,62092187

CV= 8.256977

PRUEBA DE DUNCAN

De acuerdo a la prueba de Duncan para la variable de longitud de la flor no

se encontraron resultados significativos para ninguno de los Factores. Por

tanto el Biol no muestra influencia sobre el crecimiento longitudinal de la flor

de corte.



A 6.1294 1 T2 A 6.1038 2 T4






superficie.




4.3.3 Diámetro del tallo.

De acuerdo a las medias de los tratamientos en la Figura 15 se observa que la

consistencia en los tallos varía de acuerdo a la cantidad de Biol aplicada en la

planta, teniendo tallos más consistentes con los mayores niveles de Biol. Por tanto

el Biol influyo en cierta medida en tamaño del diámetro del tallo alcanzando al

finalizar el trabajo.

Figura 15. Medias del diámetro del tallo entre tratamientos al finalizar el

trabajo de campo

Tratamientos T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8D. del tallo 0.57 0.62 0.55 0.66 0.69 0.62 0.74 0.73






ANVA DIÁMETRO DEL TALLO

De acuerdo al ANVA para la variable de diámetro del tallo se tienen

resultados significativos en el Factor A (Niveles de Biol), por lo que la

cantidad de Biol aplicada al rosal influye en la consistencia del tallo. Por otra




parte para el Factor B (Formas de aplicación del Biol) se obtuvo un

resultado no significativo, por lo que la forma de aplicación se muestra

indistinta a la hora de obtener tallos más gruesos o más delgados.

Tabla 25. ANVA Diámetro del tallo

F.V. g.l. S.S. C.M. F.c. F.t.Bloque 3 0.03245937 0.01081979 0.51 0.6815 NSA 3 0.20325937 0.06775312 3.18 0.0453 * B 1 0.01320312 0.01320312 0.62 0.4402 NS AB 3 0.20048438 0.06682813 3.13 0.0472 * Error 21 0.44791563 0.02132932 total 31 0.89732187

CV= 22.94285

PRUEBA DE DUNCAN

De acuerdo a la prueba de Duncan se observa que para el diámetro del

tallo se obtuvieron resultados significativos en el Factor A (Niveles de Biol).

Por tanto la cantidad de Biol aplicada en las rosas influye para la obtención

de tallos consistentes, teniendo mejores resultados en aquellos tratamientos

donde la cantidad de Biol aplicada fue mayor.

Media A TratamientosA 0.74125 4 T7 A 0.68500 3 T5 B 0.57375 1 T1 B 0.54625 2 T3

Media A Tratamientos

A 0.65688 2 T4 A 0.61625 1 T2









4.3.4 Altura de Tallo de Corte.

En la Figura 16 se observa las medias de los tratamientos donde el tratamiento

que obtuvo mejores resultados fue el tratamiento cinco (1 ½ de Biol en 20 litros de

agua, con aplicación foliar) alcanzando 50 cm de altura de tallo de corte. Sin

embargo si se observa la diferencia de medias entre tratamientos no existe mucha

variación entre estas. Por lo que el Biol no influyo significativamente el tallo de

corte alcanzado.

Figura 16. Medias de la altura de tallo de corte entre tratamientos al finalizar

el trabajo de campo

Tratamientos T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8

A. del tallo 47 46.63 48.5 49.06 50 46.75 45.88 46.25 Nota: T 1: Testigo; T 2: Testigo; T 3: 1 litro de Biol en 20 litros de agua con aplicación foliar; T 4: 1





ANVA ALTURA DE TALLO DE CORTE De acuerdo al ANVA para la variable de tallo de corte se obtuvieron

resultados no significativos para ambos factores, ya que la altura de tallo de

corte no tiene mucha variación entre los tratamientos, por consiguiente el

Biol no tuvo influyo en la altura de tallo de corte alcanzado.




Tabla 26. ANVA Altura del tallo de corte

F.V. g.l. S.S. C.M. F.c. F.t.Bloque 3 232.09375 77.3645833 0.97 0.4233 NSA 3 77.34375 25.78125 0.32 0.8074 NS B 1 47.53125 47.53125 0.60 0.4476 NS AB 3 248.59375 82.8645833 1.04 0.3936 NS Error 21 1666.65625 79.3645833 total 31 2272.21875

CV= 18.62036

PRUEBA DE DUNCAN

De acuerdo a la prueba de Duncan, los resultados en los Factores A

(Niveles de Biol) y B (Formas de aplicación del Biol) son no significativos.

Es decir el Biol no tuvo influencia sobre la altura del tallo de corte en las

rosas.


Media A Tratamientos

A 49.063 2 T4 A 46.625 1 T2






superficie.




5. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES 5.1 CONCLUSIONES

En cuanto a la evaluación del efecto del Biol en la incidencia de plagas y

enfermedades en el cultivo de la rosa se tiene:

- En cuanto a la incidencia de pulgones, se obtuvo mejores resultados con la

aplicación de riego foliar y con la mayor dosis de aplicación. No obstante

no se encontró rosal que no presentara pulgones, por tanto el efecto de

repelente contra plagas que se le atribuye al Biol es de baja eficacia.

- Para la incidencia de oídio, se observó que los tratamientos que obtuvieron

mejores resultados y se mostraron más resistentes al oídio frente a los

otros, fueron aquellos que recibieron las mayores dosis de Biol y que este

se aplicó como riego por superficie. Tal es el caso del tratamiento ocho (2

litros de Biol en 20 litros de agua, aplicado como riego por superficie) donde

no se presentó el hongo en ninguno de los rosales.

- El Biol no influye en el número de botones florales obtenidos, ya que al

observar las medias los valores entre estas no difieren por mucho.

- En cuanto a lo referido a las normas de calidad de la rosa para la venta en

el mercado se observó que el Biol tuvo poca influencia en el tamaño de

diámetro de la flor, longitud de la flor y altura del tallo de corte. Las medias

no muestran mucha variación entre los resultados de los tratamientos de

estas variables de respuesta. Sin embargo en Biol influyó en el tamaño del

diámetro del tallo de corte ya que los tallos que recibieron mayor cantidad

de Biol tuvieron más consistencia con relación a los que recibieron menor

dosis de Biol.




5.2 RECOMENDACIONES

- Si es que se realizara una próxima tesis en la Estación Experimental de

Cota Cota en el módulo de rosas, sugeriría que se abra una ventana más

en la parte lateral de la carpa ya que la humedad elevada favorece a la

proliferación de hongos como es el oídio y otros hongos como son los

hongos de sombrero que son portadores de plagas

- Evitar el riego de los rosales con agua de ríos contaminados, ya que esto

provoca daños fisiológicos en la planta como el amarillamiento de hojas.




6. BIBLIOGRAFÍA CONSULTADA

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on%20Anaerobica%20para%20Produccion%20de%20Biogas_ntz.pdf

Chalate Molina Héctor (Responsable de la cadena)

San Juan Hernández Rosendo, Diego Lazcano Guadalupe (Corresponsables de la

cadena)

Ponciano Pérez Hernández (Coordinador general del proyecto)




Colaboradores:

Dr. Juan A. Villanueva Jiménez, Dr. Catarino Ávila Reséndiz, Dr. Pablo Díaz

Rivera, Dra. Alejandra Soto Estrada, M.C. María del Carmen Álvarez Ávila, Dr.

Eliseo García Pérez, M.C. Rosa Isela García Zamudio, M.C. José Juan García

Días

Personal para la obtención de la información de campo:

Lic. María Antonia Morales Gutiérrez, Coordinadora del Concejo Veracruzano de

la Flor

M.C. José Romero Mora, Jefe del DDR 05 de Fortín

M.C. Emilio Jesús Rodríguez Escalante, Jefe de CADER de Aculzingo

M.C. José Juan García Díaz, Colegio de Postgraduados, Campus Veracruz

Biól. Marizol Martinéz Torres

Biól. Ángela Hernández Hernández

Biól. Norma Edith Falcón García, Coordinador técnico de desarrollo agropecuario y

fomento forestal de H. Ayuntamiento de Córdoba.

Ing. José Hugo Rodríguez, Fomento Agropecuario de Fortín

Ing. Gilberto Sánchez Arellano, DDRM H. Ayuntamiento de Chocaman

Jaime Gamboa García, Pasante en Ingeniero agrónomo – UV

Víctor Parra Morales, Pasante en Ingeniero agrónomo – UV

PROGRAMA ESTRATÉGICO DE NECESIDADES DE INVESTIGACIÓN Y

TRANSFERENCIA DE TECNOLOGÍA DE LA CADENA PRODUCTIVA

HORTICULTURA ORNAMENTAL EN EL ESTADO DE VERACRUZ – CADENA

PRODUCTIVA DE HORTICULTURA ORNAMENTAL EN EL ESTADO DE

VERACRUZ- FUNPROVER Fundación Produce Veracruz; COLEGIO DE

POSTGRADUADOS MARZO, 2008

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ANEXOS

ANEXOS

ANEXO 1. TABLA DE DATOS DE LA TEMPERATURA Y HUMEDAD RELATIVA

Fecha Temperatura

Máxima Temperatura

Mínima Humedad

Relativa Max. Humedad

Relativa Min. 30/04/2011 26,6 5,1 73 14 03/05/2011 25,1 4,9 72 12 05/05/2011 23,6 4,7 72 10 07/05/2011 21,7 4,2 70 13 09/05/2011 19,2 5,1 73 15 11/05/2011 29,6 4,5 75 18 14/05/2011 14,8 4 92 24 16/05/2011 17,2 4,2 93 24 18/05/2011 19,4 0,9 97 27 23/05/2011 21,7 1 68 28 25/05/2011 20,1 2,9 53 32 27/05/2011 29,6 4,9 94 37 29/05/2011 27,2 2,7 93 24 01/06/2011 27,5 1,5 95 20 04/06/2011 26,6 1,9 89 22 06/06/2011 26,4 1,4 95 26 09/06/2011 26,2 -2,8 48 23 11/06/2011 25,4 0,3 28 27 13/06/2011 23 -0,9 93 24 15/06/2011 26,6 0,72 83 29 17/06/2011 27,6 1,8 91 28 20/06/2011 27,9 1,7 94 28 21/06/2011 28,3 4,2 96 36 23/06/2011 27,5 2,5 94 24 27/06/2011 26,8 1,3 94 30 29/06/2011 27,8 1,2 92 25 02/07/2011 26,8 1,4 94 30 04/07/2011 25,8 -0,2 96 23 06/07/2011 24,7 1,6 49 32 09/07/2011 29,5 1,7 96 33 11/07/2011 25,4 -0,7 55 30 14/07/2011 23,8 0,1 67 30

ANEXO 2. GRÁFICO TEMPERATURA MÁXIMA Y TEMPERATURA MÍNIMA

ANEXO 3. GRÁFICO HUMEDAD RELATIVA MÁXIMA Y HUMEDAD RELATIVA MÍNIMA

Cálculo del SAS Clase Niveles Valores bloque 4 1 2 3 4 A 4 1 2 3 4 B 2 1 2 Número de observaciones leídas 32 Número de observaciones usadas 32

Procedimiento ANOVA

Variable dependiente: DF Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F‐Valor Pr > F Modelo 10 8.81630625 0.88163062 1.30 0.2906 Error 21 14.20219063 0.67629479 Total corregido 31 23.01849687

R‐cuadrado Coef Var Raíz MSE DF Media

0.383010 15.57429 0.822371 5.280313

Cuadrado de Fuente DF Anova SS la media F‐Valor Pr > F Bloque 3 1.76383437 0.58794479 0.87 0.4725 A 3 2.18830938 0.72943646 1.08 0.3796 B 1 3.19412813 3.19412813 4.72 0.0413 A*B 3 1.67003437 0.55667812 0.82 0.4957

Procedimiento ANOVA

Prueba del rango múltiple de Duncan para DF

NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.676295 Número de medias 2 3 4 Rango crítico .8551 .8977 .9249 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N A A 5.5775 8 3 A A 5.4913 8 1 A A 5.1025 8 2 A A 4.9500 8 4

Procedimiento ANOVA

Prueba del rango múltiple de Duncan para DF

NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate.

Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.676295 Número de medias 2 Rango crítico .6047 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N B A 5.5963 16 1 B 4.9644 16 2 Procedimiento ANOVA Variable dependiente: LF Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F‐Valor Pr > F Modelo 10 3.26448125 0.32644812 1.28 0.3025 Error 21 5.35644063 0.25506860 Total corregido 31 8.62092187 R‐cuadrado Coef Var Raíz MSE LF Media 0.378670 8.256977 0.505043 6.116563 Cuadrado de Fuente DF Anova SS la media F‐Valor Pr > F bloque 3 2.15828437 0.71942812 2.82 0.0637 A 3 0.94938437 0.31646146 1.24 0.3200 B 1 0.00525312 0.00525312 0.02 0.8873 A*B 3 0.15155938 0.05051979 0.20 0.8965

Procedimiento ANOVA

Prueba del rango múltiple de Duncan para LF

NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.255069 Número de medias 2 3 4 Rango crítico .5251 .5513 .5680 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N A A 6.2975 8 3 A A 6.2138 8 2 A A 6.1150 8 4 A A 5.8400 8 1 Procedimiento ANOVA Prueba del rango múltiple de Duncan para LF NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.255069 Número de medias 2 Rango crítico .3713 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N B A 6.1294 16 1 A A 6.1038 16 2

Procedimiento ANOVA Variable dependiente: DT Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F‐Valor Pr > F Modelo 10 0.44940625 0.04494062 2.11 0.0722 Error 21 0.44791563 0.02132932 Total corregido 31 0.89732187 R‐cuadrado Coef Var Raíz MSE DT Media 0.500831 22.94285 0.146046 0.636563 Cuadrado de Fuente DF Anova SS la media F‐Valor Pr > F bloque 3 0.03245937 0.01081979 0.51 0.6815 A 3 0.20325938 0.06775313 3.18 0.0453 B 1 0.01320312 0.01320312 0.62 0.4402 A*B 3 0.20048437 0.06682812 3.13 0.0472

Procedimiento ANOVA

Prueba del rango múltiple de Duncan para DT

NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.021329 Número de medias 2 3 4 Rango crítico .1519 .1594 .1643 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N A A 0.74125 8 4 A B A 0.68500 8 3 B B 0.57375 8 1 B B 0.54625 8 2

Procedimiento ANOVA Prueba del rango múltiple de Duncan para DT NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.021329 Número de medias 2 Rango crítico .1074

Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N B A 0.65688 16 2 A A 0.61625 16 1 Procedimiento ANOVA Variable dependiente: NF Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F‐Valor Pr > F Modelo 10 18.31250000 1.83125000 3.37 0.0091 Error 21 11.40625000 0.54315476 Total corregido 31 29.71875000 R‐cuadrado Coef Var Raíz MSE NF Media 0.616193 20.50756 0.736990 3.593750 Cuadrado de Fuente DF Anova SS la media F‐Valor Pr > F bloque 3 3.84375000 1.28125000 2.36 0.1006 A 3 11.09375000 3.69791667 6.81 0.0022 B 1 0.28125000 0.28125000 0.52 0.4797 A*B 3 3.09375000 1.03125000 1.90 0.1608

Procedimiento ANOVA

Prueba del rango múltiple de Duncan para NF


Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.543155 Número de medias 2 3 4 Rango crítico .7663 .8045 .8289 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N A A 4.1250 8 2 A A 4.0000 8 4 A A 3.6250 8 3 B 2.6250 8 1

Procedimiento ANOVA

Prueba del rango múltiple de Duncan para NF

NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.543155 Número de medias 2 Rango crítico .5419 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N B A 3.6875 16 2 A A 3.5000 16 1

Procedimiento ANOVA Variable dependiente: HTC Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F‐Valor Pr > F Modelo 10 605.562500 60.556250 0.76 0.6614 Error 21 1666.656250 79.364583 Total corregido 31 2272.218750 R‐cuadrado Coef Var Raíz MSE HTC Media 0.266507 18.62036 8.908680 47.84375 Cuadrado de Fuente DF Anova SS la media F‐Valor Pr > F bloque 3 232.0937500 77.3645833 0.97 0.4233 A 3 77.3437500 25.7812500 0.32 0.8074 B 1 47.5312500 47.5312500 0.60 0.4476 A*B 3 248.5937500 82.8645833 1.04 0.3936

Procedimiento ANOVA

Prueba del rango múltiple de Duncan para HTC

NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 79.36458 Número de medias 2 3 4 Rango crítico 9.26 9.73 10.02 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N A A 50.000 8 3 A A 48.500 8 2 A A 47.000 8 1 A A 45.875 8 4

Procedimiento ANOVA

Prueba del rango múltiple de Duncan para HTC

NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 79.36458 Número de medias 2 Rango crítico 6.550 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N B A 49.063 16 2 A A 46.625 16 1

Procedimiento ANOVA Variable dependiente: PUL Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F‐Valor Pr > F Modelo 10 17.81250000 1.78125000 8.03 <.0001 Error 21 4.65625000 0.22172619 Total corregido 31 22.46875000 R‐cuadrado Coef Var Raíz MSE PUL Media 0.792768 20.64123 0.470878 2.281250 Cuadrado de Fuente DF Anova SS la media F‐Valor Pr > F bloque 3 1.59375000 0.53125000 2.40 0.0969 A 3 11.34375000 3.78125000 17.05 <.0001 B 1 2.53125000 2.53125000 11.42 0.0028 A*B 3 2.34375000 0.78125000 3.52 0.0327

Procedimiento ANOVA

Prueba del rango múltiple de Duncan para PUL

NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.221726 Número de medias 2 3 4 Rango crítico .4896 .5140 .5296 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N A A 2.8750 8 1 A A 2.7500 8 2 B 2.1250 8 3 C 1.3750 8 4

Procedimiento ANOVA

Prueba del rango múltiple de Duncan para PUL


Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.221726 Número de medias 2 Rango crítico .3462 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N B A 2.5625 16 2 B 2.0000 16 1

Procedimiento ANOVA

Variable dependiente: OID Suma de Cuadrado de Fuente DF cuadrados la media F‐Valor Pr > F Modelo 10 293.0625000 29.3062500 65.43 <.0001 Error 21 9.4062500 0.4479167 Total corregido 31 302.4687500 R‐cuadrado Coef Var Raíz MSE OID Media 0.968902 15.63249 0.669266 4.281250 Cuadrado de Fuente DF Anova SS la media F‐Valor Pr > F bloque 3 2.8437500 0.9479167 2.12 0.1286 A 3 286.8437500 95.6145833 213.47 <.0001 B 1 1.5312500 1.5312500 3.42 0.0786 A*B 3 1.8437500 0.6145833 1.37 0.2787

Procedimiento ANOVA

Prueba del rango múltiple de Duncan para OID

NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.447917 Número de medias 2 3 4 Rango crítico .6959 .7306 .7527 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N A A 8.6250 8 1 B 5.1250 8 2 C 2.8750 8 3 D 0.5000 8 4

Procedimiento ANOVA Prueba del rango múltiple de Duncan para OID NOTA: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha 0.05 Error Degrees of Freedom 21 Error de cuadrado medio 0.447917 Número de medias 2 Rango crítico .4921 Medias con la misma letra no son significativamente diferentes. Duncan Agrupamiento Media N B A 4.5000 16 1 A A 4.0625 16 2

CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA

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