UNIVERSIDADE FEDERAL DE PELOTAS Programa de Pós...

UNIVERSIDADE FEDERAL DE PELOTAS

Programa de Pós-Graduação em Agronomia

Área de Concentração em Fruticultura de Clima Temperado

Dissertação

CARACTERIZAÇÃO FÍSICO-QUÍMICA E FITOQUÍMICA DE

PÊSSEGOS DA CV. MACIEL SOBRE DIFERENTES PORTA-

ENXERTOS

Débora Leitzke Betemps

Pelotas, Março de 2010

DÉBORA LEITZKE BETEMPS

Engenheira Agrônoma

CARACTERIZAÇÃO FÍSICO-QUÍMICA E FITOQUÍMICA DE

PÊSSEGOS DA CV. MACIEL SOBRE DIFERENTES PORTA-

ENXERTOS

Dissertação apresentada ao Programa de

Pós-Graduação em Agronomia da

Universidade Federal de Pelotas, como

requisito parcial à obtenção do título de

Mestre em Ciências (Fruticultura de Clima

Temperado).

Orientador: Prof. Dr. José Carlos Fachinello

Pelotas, Março de 2010

Banca examinadora:

Prof. Dr. José Carlos Fachinello – Orientador

Dr. Jair Costa Nachtigal – CPACT

Prof. Dr. Rui Zambiasi – DCA/UFPEL

Prof. Dr. Geraldo Luiz Chavarria Lamas Junior – UPF

Dr. Luciano Picolotto – CPACT/PNPD (Suplente)

...Acorde de manhã e decida entre duas coisas, ficar de

mau humor e transmitir isso adiante ou sorrir...

Bom mesmo é ter problema na cabeça, sorriso na boca e paz no coração!

Aliás, entregue os problemas nas mãos de Deus e,

Que tal um cafezinho agora?

“A vida é uma peça de teatro, que não permite ensaios”.

“Por isto cante, chore, dance e viva a vida intensamente

antes que a cortina se feche.”

Arnaldo Jabor

Agradecimentos

À Universidade Federal de Pelotas e ao Programa de Pós-Graduação em

Agronomia pela oportunidade de realizar o curso.

À CAPES pela concessão de bolsa.

Ao Professor, orientador e amigo Dr. José Carlos Fachinello, pela orientação,

ensinamento e confiança transmitidos durante o período de execução do trabalho.

Aos Professores Andrea De Rossi Rufato e Jorge Adolfo Silva pela co-

orientação e amizade.

Ao Departamento de Ciência e Tecnologia dos Alimentos, pela disponibilidade

de utilizar seus laboratórios para a realização das análises.

Ao professor Rui Zambiasi e colegas Marla Sganzerla e Andressa Jacques

pela ajuda na realização das análises de cromatografia.

Às amigas Zeni Tomaz, Cláudia Lima e Simone Galarça, pelo

companheirismo e agradável convivência dentro e fora da faculdade.

Às estagiárias Cristiele e Amanda, pela ajuda na execução das análises e os

momentos de descontração.

À colega Roberta Manica-Berto, pelos ensinamentos passados, e pela

constante disposição em ajudar.

Aos demais professores e colegas do PPGA, assim como aos bolsistas e

estagiários da fruticultura, pela colaboração nos trabalhos realizados.

À minha família, em especial aos meus pais Arlindo e Regina e aos meus

sogros Vera e Francisco.

Ao meu marido, pelo incentivo e paciência e, às minhas filhas, minhas eternas

“bebês” e grandes amigas Nathalia e Mariana, agradeço pela compreensão nos

momentos de ausência.

Obrigado!

Resumo

BETEMPS, Débora L. Caracterização físico-química e fitoquímica de pêssegos

da cv. Maciel sobre diferentes porta-enxertos, 2010. 83f. Dissertação (Mestrado)

– Programa de Pós-Graduação em Agronomia. Universidade Federal de Pelotas,

Pelotas.

Embora existam pesquisas que relatem a influência do porta-enxerto sobre a cultivar copa, alterando o seu comportamento em relação ao desenvolvimento, produtividade, resistência, nutrição, época de maturação e qualidade dos frutos, os resultados ainda não são conclusivos. Objetivou-se com o trabalho avaliar o efeito dos porta-enxertos Aldrighi, Capdeboscq, Flordaguard, Nemaguard, Okinawa e umezeiro sobre a qualidade de pêssegos da cultivar Maciel. Os frutos foram provenientes da safra de 2008 de dois pomares, sendo um localizado no Centro Agropecuário da Palma – UFPel/Capão do Leão (CAP/UFPel) e outro na Estação Experimental da Universidade Federal do Rio Grande do Sul – UFRGS/Eldorado do Sul (EE/UFRGS). Após a colheita dos frutos procederam-se as seguintes análises físico-químicas: acidez (AT), coloração da epiderme, sólidos solúveis totais (SST), pH, relação SST/AT e firmeza de polpa. Para as análises fitoquímicas os frutos foram separados em casca e polpa e armazenados em ultra-freezer e posteriormente realizou-se a análise de fenóis totais e individuais, carotenóides totais e individuais e atividade antioxidante. Para os frutos provenientes do CAP/UFPel, os porta-enxertos avaliados influenciaram significativamente a acidez, firmeza, cor de recobrimento, pH e ratio. Estes efeitos não foram observados com os frutos provenientes da EE/ UFRGS com esta mesma cultivar onde somente a firmeza apresentou efeito significante dos porta-enxertos. Os valores de fenóis e carotenóides totais e individuais foram influenciados pelos porta-enxertos tanto na polpa quanto na casca, para as duas localidades.O „Okinawa‟ obteve as maiores médias de fenóis totais na casca para as duas localidades, na polpa „Flordaguard‟ apresentou as maiores médias para os frutos do CAP/UFPel e „Nemaguard‟ para os frutos da EE/UFPel. Na quantificação de compostos fenólicos, o ácido gálico foi o de maior expressão seguido dos ácidos hidroxibenzóico, cumárico e cafeíco. Para carotenóides totais, na polpa, „Okinawa‟ e „Aldrighi‟ apresentaram as maiores médias não diferindo entre si no CAP/UFPel enquanto que na EE/UFRGS os maiores resultados foram quantificados em „Capdeboscq‟, „Nemaguard‟ e „Umezeiro‟. Na

quantificação dos carotenóides individuais, o β-criptoxantina é o pigmento

majoritário apresentando ainda licopeno e β-caroteno em quantidades menores.

„Nemaguard, Aldrighi e Umezeiro‟ apresentaram maiores valores para capacidade antioxidante para a polpa dos frutos do CAP/UFPel sendo que „Nemaguard‟ e „Aldrighi‟ mantiveram este resultado para polpa da EE/UFRGS. Na análise de correlação entre os fitoquímicos, observou-se uma correlação fraca e positiva para a polpa dos frutos e para casca uma correlação fraca e negativa. Conclui-se que o porta-enxerto pode afetar de forma indireta alguns parâmetros físico-químicos e fitoquímicos, para as duas localidades na qual os frutos foram caracterizados.

Palavras-chave Pessegueiro, qualidade, fenóis, carotenóides, atividade

antioxidante.

Abstract

BETEMPS, Débora L. Physico-chemical and phytochemical characteristic in

peaches of cv. Maciel about different roostocks, 2010. 83f. Dissertação (Mestrado) –

Programa de Pós-Graduação em Agronomia. Universidade Federal de Pelotas,

Pelotas.

Althought there are researches that report the influence of rootstock about the scion

cultivar, changing their behavior in relation to development, productivity, resistance,

nutrition, maturation time and the quality of the fruits, these results are not

conclusive. Objective of the study was evaluate the effect of rootstock Aldrighi,

Capdeboscq, Flordaguard, Nemaguard, Okinawa and Umezeiro about quality of

peaches cultivar Maciel. The fruits of the cultivar Maciel are from two orchards

located in the Agricultural Center of Palma – UFPel/Capão do Leão and in the

experimental Estation of the Federal University of Rio Grande do Sul –

UFRGS/Eldorado do Sul. After the harvest, the fruits carried the following Physico-

chemical analysis: acidity, skin color, total soluble solids, pH, 'Ratio' and firmness.

For phytochemical analysis, fruits were separated into peel and flesh, stored in ultra-

freezer, and later held the analysis of individual and total phenols, total and individual

carotenoids and antioxidant activity. For Palma‟s fruits, the rootstock evaluated

influenced considerably the acidity parameters, firmness, color of coating, pH, and

ratio. These effects were not observed in the experimental Estation – UFRGS with

the same cultivar. The values of phenols and carotenoids total and individual were

influenced by the rootstocks both the flesh and the peel, for the two localities. The

„Okinawa‟ had the highest average of total phenols in the peel for both places,

„Flordaguard‟ the flesh showed the highest average for the CAP‟s fruit and

„Nemaguard‟ to the fruits EE/UFRGS. The quantification of phenolic compounds, the

gallic acid is the highest expression followed by p-hydroxybenzoic, p-coumaric and

caffeic. For carotenoids in the flesh „Okinawa‟ showed the highest average not

differing from „Aldrighi‟ while in the largest EE/UFRGS results were found in the

„Capdeboscq‟, „Nemaguard‟ and „Umezeiro‟. For carotenoids, β-cryptoxanthin, is the

majority pigment, still presenting licopen and β-caroten in minors amounts.

„Nemaguard, Aldrighi and Umezeiro‟ present a higher value for antioxidant capacity.

In the analysis of correlation between phytochemical were watched a weak and

positive correlation for the flesh of the fruits and for the peel a correlation weak and

negative. It is conclude that the rootstock might affect in an undirected form some

phytochemical and physico-chemical, for both localities in which fruits were

characterized.

Keywords – Peach tree, quality, phenols, carotenoids, antioxidant activity

Lista de Tabelas

Tabela 1- Porcentagem de flores abertas na cultivar Maciel enxertada sobre

diferentes porta-enxertos no período de 2008. .......................................................... 32

Tabela 2- Programa do gradiente de eluição utilizado na separação de carotenóides

individuais em pêssegos cv. Maciel. ......................................................................... 36

Tabela 3 - Programa do gradiente de eluição utilizado na separação de compostos

fenólicos em pêssegos cv. Maciel. ............................................................................ 38

Tabela 5 - Acidez titulável, SST, SST/AT e pH de pêssegos da Cultivar Maciel

enxertada em diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário da Palma/UFPel –

Capão do Leão-2008. ................................................................................................ 42

Tabela 6 - Luminosidade, cor de superfície (a*), cor de fundo (b*) e ângulo hue em

pêssegos da Cultivar Maciel, enxertada sobre diferentes porta-enxertos. Centro

Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008............................................. 44

Tabela 7 - Acidez titulável, SST, SST/AT e pH de pêssegos da Cultivar Maciel

enxertada em diferentes porta-enxertos. Centro Estação Experimental da UFRGS –

Eldorado do Sul-2008 ................................................................................................ 44

Tabela 8- Fenóis totais, em casca e polpa de pêssegos da Cultivar Maciel enxertada

sobre diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do

Leão-2008. ................................................................................................................ 48

Tabela 9 - Fenóis totais, em casca e polpa de pêssegos da Cultivar Maciel

enxertada sobre diferentes porta-enxertos. Estação Experimental da UFRGS –

Eldorado do Sul -2008. .............................................................................................. 48

Tabela 10 - Valores quantificados de fenóis individuais (mg100g-1), em polpa de

pêssegos da cultivar Maciel enxertada em diferentes porta-enxertos. Centro


Tabela 11 - Valores quantificados de fenóis individuais (mg100g-1), em casca de

pêssegos da cultivar Maciel enxertada em diferentes porta-enxertos. Centro



pêssegos da cultivar Maciel enxertada em diferentes porta-enxertos. Estação

Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul-2008. ................................................... 51


pêssegos da cultivar Maciel enxertada em diferentes porta-enxertos. Estação

Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul-2008. ................................................... 52

Tabela 14 - Carotenóides individuais em polpa de pêssegos da cultivar Maciel


Capão do Leão-2008. ................................................................................................ 57

Tabela 15 - Carotenóides individuais em casca de pêssegos da cultivar Maciel


Capão do Leão-2008. ................................................................................................ 58


enxertada em diferentes porta-enxertos. Estação Experimental da UFRGS –

Eldorado do Sul – 2008. ............................................................................................ 59


enxertada em diferentes porta-enxertos. Estação Experimental da UFRGS –

Eldorado do Sul- 2008. .............................................................................................. 59

Tabela 18- Capacidade antioxidante com tempo de reação em 30 minutos, expressa

em equivalente Trolox (mg TEAC 100g-1), em polpa e casca de pêssegos cv. Maciel

enxertados em diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário da Palma/UFPel –

Capão do Leão-2008. ................................................................................................ 61

Tabela 19- Capacidade antioxidante com tempo de reação em 30 minutos, expressa

em equivalente Trolox (mg TEAC 100g-1), em polpa e casca de pêssegos cv. Maciel

enxertados em diferentes porta-enxertos. Estação Experimental da UFRGS - Porto

Alegre-2008. .............................................................................................................. 62

Tabela 20- Correlação de Pearson entre a capacidade antioxidante (g TEAC 100g-

1),conteúdo de fenóis totais (mg EAG 100g-1) e de carotenóides totais (μg.g-1) em

casca e polpa de frutos da cultivar Maciel, enxertadas em diferentes porta-enxertos.

Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008. ................................ 63


1), conteúdo de fenóis totais (mg EAG 100g-1) e de carotenóides totais (μg.g-1) em

casca e polpa de frutos da cultivar Maciel, enxertadas em diferentes porta-enxertos.

Estação Experimental da UFRGS - Porto Alegre-2008. ............................................ 64

Lista de Figura

Figura 1 - Estrutura básica dos flavonóides. ...................................................... 24

Figura 2 - Estrutura química do ácido gálico (a), ácido elágico (b) e ácido p-

hidróxibenzóico (c). ............................................................................................. 25

Figura 3 - Estrutura química do ácido caféico (a) e do ácido p-cumárico (b) ..... 25

Figura 4 – Curva padrão em ácido gálico. ......................................................... 37

Figura 5- Firmeza de polpa de pêssegos da cultivar Maciel enxertada sobre

diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do

Leão-2008. .......................................................................................................... 43

Figura 6 - Cromatograma de compostos fenólicos em pêssegos cv. Maciel. /

com coluna em fase reversa e detector UV (280 nm). 1: ácido gálico, 2: ácido

hidroxibenzóico, 3: ácido caféico, 4: ácido ferúlico. Fase móvel: gradiente de

ácido acético em água (1:99 v/v) e metanol com fluxo de 0,9mLmin-1 ............... 49

Figura 7 - Carotenóides totais (μg g-1) presentes na casca de pêssegos da

cultivar Maciel, enxertadas sobre diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário

da Palma/UFPel – Capão do Leão- 2008. .......................................................... 54

Figura 8- Carotenóides totais (μg g-1) presentes na polpa de pêssegos da

cultivar Maciel, enxertadas sobre diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário

da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008. ........................................................... 55

Figura 9 - Carotenóides totais (μg g-1) presentes na casca de pêssegos da

cultivar Maciel, enxertadas sobre diferentes porta-enxertos. Estação

Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul-2008. ............................................. 56

Figura 10 - Carotenóides totais (μg g-1) presentes na polpa de pêssegos da

cultivar Maciel, enxertadas sobre diferentes porta-enxertos. Estação

Experimental da UFRGS - Porto Alegre-2008. ................................................... 56

Figura 11 - Cromatograma típico da separação de carotenóides em pêssegos c.

Maciel via CLAE(Cromatografia Liquida de Alta Eficiência), com coluna de fase

reversa C18 e detector UV a 280nm, tendo como fase móvel um gradiente com

metanol, acetonitrila e acetato de etila................................................................ 60

Sumário

Resumo ....................................................................................................................... 6

Abstract ....................................................................................................................... 7

Lista de Tabelas .......................................................................................................... 8

Lista de Figura ........................................................................................................... 10

Sumário ..................................................................................................................... 11

1. Introdução ........................................................................................................... 12

2. Revisão de Literatura .......................................................................................... 14

2.1. A cultura do pessegueiro................................................................................ 14

2.1.1. Caracterização dos porta-enxertos de pessegueiro utilizados ..................... 15

2.1.2. Caracterização da cultivar copa de pessegueiro utilizada............................ 17

Maciel ..................................................................................................................... 17

2.2. Influência dos fatores ambientais na qualidade dos frutos ........................... 17

2.3 Influência do porta-enxerto na qualidade dos frutos ........................................ 19

2.4. Características físico-químicas de pêssegos .................................................. 20

2.5. Características fitoquímicas em frutos e plantas ............................................. 23

2.5.1. Compostos fenólicos .................................................................................... 23

2.5.2. Carotenóides ............................................................................................... 27

2.5.3. Capacidade Antioxidante ............................................................................. 29

3. Material e Métodos ............................................................................................. 31

4. Resultados e Discussão ..................................................................................... 40

4.1. Características físico-químicas da cultivar Maciel ........................................... 40

4.2. Fitoquímicos encontrados em pêssegos da cultivar Maciel ............................ 45

4.2.1 Compostos fenólicos totais ........................................................................... 45

4.2.1.1. Compostos Fenólicos Individuais .............................................................. 49

4.2.2. Carotenóides ................................................................................................ 53

4.2.2.1. Carotenóides Individuais .......................................................................... 56

4.2.3. Capacidade antioxidante .............................................................................. 60

4.2.4. Correlações entre os fitoquímicos ................................................................ 62

5. Conclusões ......................................................................................................... 65

6. Referências ......................................................................................................... 66

1. Introdução

Atualmente os consumidores de frutas estão buscando produtos de

melhor qualidade e demonstrando uma tendência a aliar sabor e valor funcional em

suas escolhas alimentares. Segundo Chitarra e Chitarra (2005), a qualidade não é

um atributo único bem definido e sim, um conjunto de propriedades sensoriais

(aparência, textura, sabor, aroma), valor nutritivo e multifuncional decorrentes dos

componentes químicos, propriedades mecânicas, bem como ausência ou presença

de defeitos dos produtos.

É largamente conhecido, por estudos epidemiológicos, que o consumo

de frutas e hortaliças conferem benefícios à saúde, pois tem se demonstrado uma

associação positiva entre o consumo destes alimentos e a redução do índice da

mortalidade por doenças crônicas (STEINMETZ, POTTER, 1996; GARCÍA-CLOSAS

et al., 1999).

O crescente interesse pelos antioxidantes naturais é devido à sua baixa

toxicidade em relação aos antioxidantes sintéticos. Extratos de frutas, vegetais,

cereais e seus subprodutos industriais são ricos em antioxidantes como: ácido

ascórbico, tocoferóis, carotenóides e compostos fenólicos e têm demonstrado eficaz

atividade antioxidante (WOLF et al., 2003; MANACH et al., 2004). Várias fontes de

antioxidantes naturais são conhecidas, e algumas são amplamente encontradas no

reino vegetal, sendo esta característica atribuída ao seu conteúdo de compostos

fenólicos (WETTASINGHE et al., 1999).

No entanto, o conteúdo desses compostos nos tecidos das frutas é

influenciado por inúmeros fatores na pré colheita, como genótipo, porta-enxerto,

condições climáticas, práticas agronômicas, ponto de colheita e, também, por fatores

pós-colheita, como condições de armazenamento e processamento (LEE e KADER,

2000; GIL et al., 2002; CEVALLOS-CASALS et al., 2006; TAVARINI et al., 2008).

Na fruticultura o uso da enxertia apresenta uma importância significativa, sua

utilização abre possibilidades ao cultivo de inúmeras cultivares em regiões e climas

diversos. A grande importância da enxertia deve-se ao fato de que, são conjugados

13

os aspectos favoráveis de duas ou mais plantas as quais podem ser de uma mesma

espécie ou de até mesmo gênero diferentes (TELLES, 2005).

Nas principais regiões produtoras de pêssego, são usados diferentes porta-

enxertos em razão de condições específicas de clima e solo (FINARDI, 2003). A

avaliação precisa das respostas dos porta-enxertos, e a identificação da melhor

combinação do enxerto com o porta-enxerto é importante para se obter produções

de qualidade (RATO et al., 2008).

Segundo Giorgi et al. (2005), a chave para a expansão comercial da produção

de pêssegos é a promoção e manutenção dos padrões de qualidade das frutas,

envolvendo a avaliação rigorosa do genótipo dos porta-enxertos, respostas para o

crescimento e identificação das melhores combinações.

A escolha do porta-enxerto oferece possibilidades de aumentar a

adaptabilidade das espécies frutícolas a diversas condições e sistemas de cultivo.

Isto implica a necessidade de aprofundar e conhecer as respostas agronômicas e

produtivas dos porta-enxertos disponíveis para as diversas espécies, levando em

conta também as características qualitativas e nutracêutica dos frutos (SCALZO et

al., 2005).

A partir do exposto acima, a hipótese a ser testada é que os diferentes porta-

enxertos interferem nas características físico-químicas e fitoquímicas dos frutos de

pessegueiro.

Considerando que, na Região Sul do estado do RS, o cultivo do pêssego se

destaca pela importância social como uma das principais frutíferas produzidas,

objetivou-se, com este trabalho, quantificar os componentes físico-químicos e

fitoquímicos de pêssegos da cultivar Maciel enxertada sobre diferentes porta-

enxertos.

14

2. Revisão de Literatura

2.1. A cultura do pessegueiro

O pessegueiro pertence à família Rosácea, subfamília Prunoidea, gênero

Prunus (L.). Dentro deste gênero e espécie Prunus persica (L) Batsch é a maior

espécie de interesse comercial e com o maior número de cultivares exploradas em

todo o mundo (SACHS e CAMPOS, 1998; RASEIRA e NAKASU, 2002). Segundo

dados da FAO, no Brasil no ano de 2008, foram produzidos em torno de 199.900

toneladas de pêssegos e nectarinas (FAO,2010).

O pêssego é uma das frutíferas que se difundiu mais rapidamente pelo

mundo, sendo que seu cultivo adaptou-se a uma grande diversidade de clima.

Barbosa et al., (1990) cita que a adaptabilidade ao clima deve-se basicamente a

seleção genética de cultivares tanto de baixa como de alta necessidade em frio.

Segundo Rocha (2006), no estado do Rio Grande do Sul, encontra-se as mais

diversificadas condições edafoclimáticas para o cultivo de boa parte das fruteiras

cultivadas no Brasil. Dentre as regiões produtoras de frutas do Estado destacam-se

as regiões de Pelotas, Serra Gaúcha e Porto Alegre. A região sul do Estado

apresenta como característica a produção do pêssego para a indústria, enquanto

que as da Serra Gaúcha e Porto Alegre destacam-se na produção de pêssego para

o consumo in natura.

Embora a cultura apresente grande importância no Rio Grande do Sul, a

produtividade média é de apenas 8.641 t ha-1 (IBGE, 2008) e está associada a

fatores como, por exemplo, a falta de porta-enxertos adaptados as diversas

condições edafoclimáticas das diferentes zonas de produção (CAMPOS, 2005).

Um dos principais problemas que a cultura do pessegueiro apresenta no

Brasil é a falta de homogeneidade das plantas, decorrente da propagação sexuada

dos porta-enxertos. Plantas provenientes de sementes apresentam grandes

variações no desenvolvimento, fato que dificulta a formação de um lote uniforme.

15

Essa situação é agravada na região Sul do País, onde são utilizados caroços

provenientes de diversas cultivares de maturação tardia, obtidas junto às indústrias

que processam pêssego, aumentando ainda mais a variabilidade genética e o vigor

dos porta-enxertos (PEREIRA e MAYER, 2005).

2.1.1. Caracterização dos porta-enxertos de pessegueiro utilizados

O porta-enxerto „Aldrighi‟ é uma planta selecionada por produtor na região de

Pelotas, RS, provavelmente oriunda de lote de sementes de pêssego para conserva

que havia sido introduzido da Argentina para ser industrializado naquela cidade. É

um fruto de polpa amarela, não fundente, adaptado a regiões com acúmulo de 250 a

350 horas de frio hibernal. É uma planta de floração precoce e maturação tardia

(ROCHA, 2006).

O porta-enxerto Aldrighi apresenta boa afinidade com a maioria das cultivares

empregadas no Sul do Brasil, induz médio vigor e média produção. Possui baixa

resistência à asfixia, parece ser tolerante a Criconemella xenoplax e é resistente a

M. incognita e M. javanica (FACHINELLO et al., 2000).

Segundo Rossi (2004), no Rio Grande do Sul, normalmente faz-se referência

ao emprego de cultivares como Aldrighi e Capdeboscq como porta-enxertos para

pessegueiros, porém os pomares dessas cultivares são cada vez mais raros, e o

que se tem utilizado na realidade são cultivares tardias, sem a possibilidade de

identificação genética das mesmas depois do processamento.

„Capdeboscq‟ é uma cultivar originária do Programa de Melhoramento de

Pessegueiro da Estação Experimental de Pelotas, atual Embrapa Clima Temperado,

tendo sido obtida por polinização livre de um cruzamento entre „Lake City‟ e uma

seleção local chamada `Intermediária`. A cultivar é altamente produtiva e seus frutos

são do tipo conserva. As sementes apresentam elevada porcentagem de

germinação (MEDEIROS e RASEIRA, 1998). Segundo Finardi (1998), „Capdeboscq‟

é um porta-enxerto de crescimento rápido, de pouco esladroamento antes da

enxertia e de pouca ramificação nos primeiros 20cm acima do colo da planta. É uma

cultivar adaptada a regiões com cerca de 300 horas de frio. Esta cultivar apresenta

baixo nível de resistência ao nematóide do gênero Meloidogyne spp, (FACHINELLO

et al., 2000).

16

O porta-enxerto „Okinawa‟ é derivado de sementes coletadas na Ilha de

Okinawa, Japão. A folha do „Okinawa‟ tem coloração verde, florescimento precoce e

necessita de pouco frio para superação da dormência. As plantas enxertadas sobre

este porta-enxerto são vigorosas. Recomendado para a parte Sul do Japão, porque

é pouco exigente em frio (100 horas de frio), a brotação ocorre no início da

primavera (ROCHA, 2006). A cultivar Okinawa apresenta frutas de tamanho médio,

oblongos com sutura bastante saliente, caroço solto, polpa branca de sabor ácido,

com cerca de 20% dos caroços contendo duas amêndoas, devido à ocorrência do

fenômeno chamado de falsa poliembrionia (ROCHA, 2006). Segundo Finardi (1998),

a maturação das frutas ocorre aproximadamente 120 dias após a floração.

Apresenta resistência aos nematóides Meloidogyne incognita, Meloidogyne javanica

e à podridão de raízes (FACHINELLO et al. 2000). O porta-enxerto „Okinawa‟ é

muito utilizado na região Sudeste do Brasil, apresentando elevada resistência a

nematóides, boa produtividade, boa capacidade de germinação e polivalência (pode

ser utilizado como porta-enxerto para pessegueiro, ameixeira e nectarineira)

(HOFFMANN et al., 2003).

O porta-enxerto „Nemaguard‟ selecionado da Califórnia (USA) é,

supostamente híbrido de um pessegueiro chinês silvestre (Prunus davidiana) e

alguma cultivar de pessegueiro cultivado. Como porta-enxerto, induz bom vigor à

cultivar copa, com entrada rápida em frutificação. Em regiões quentes, sai do

repouso antes do que outros francos, adiantando um pouco a maturação e

aumentando o calibre dos frutos de cultivares-copa precoces. A principal

característica é a tolerância aos nematóides Meloidogyne javanica, Meloidogyne

arenaria, como também a Agrobacterium. É sensível ao nematóide Pratylenchus e

aos fungos Armilari sp., Verticilium sp. e Phytophthora sp. A maior utilidade deste

porta-enxerto é para plantio em solos ácidos, com problemas de nematóide do

gênero Meloidogyne sp. É vigoroso, homogêneo e compatível com as cultivares de

pessegueiro (MEDEIROS e RASEIRA, 1998).

„Flordaguard‟ é um porta-enxerto híbrido de P. persica x P. davidiana, obtido

na Flórida, em 1991. É propagado por semente, induz na cultivar copa médio vigor e

produção, apresenta boa afinidade de enxerto e é resistente a M. incognita e

javanica, raças 1 e 3 (ROSSI et al., 2004). A necessidade de frio é estimada em

torno de 300 horas. Tem folhas avermelhadas e ramos com hábito de crescimento

17

tipo chorão. Seedlings de „Flordaguard‟ mostraram-se uniformemente resistentes a

Meloidogyne javanica e Meloidogyne incógnita, raças 1 e 3. Apresenta

suscetibilidade à deficiência de ferro em solos alcalinos (MEDEIROS e RASEIRA,

1998).

O „umezeiro‟ (Prunus mume Sieb. et Zucc.) é uma frutífera de folhas caducas

da família Rosaceae e nativa da China, é típica de clima temperado. No Japão, as

primeiras cultivares foram introduzidas há 2.000 anos e adquiriram significativa

expressão na alimentação e nos costumes orientais. A introdução desta espécie no

Brasil deu-se, provavelmente, através dos imigrantes japoneses, que obtiveram

produções satisfatórias somente a partir de 1970, em Botucatu-SP, após inúmeros

fracassos em função da utilização de materiais que apresentam alto requerimento de

frio (MAYER et al., 2004). A propagação é realizada por meio de sementes, nem

sempre apresenta boa afinidade de enxerto e promove redução do vigor das plantas

(nanizantes). É considerado um porta-enxerto rústico, adaptado a invernos não-

rigorosos, porém é sensível à asfixia radicular. Trabalhos realizados por Campo

Dall‟Orto et al. (1992) e Pereira et al. (1998) relatam principalmente a redução do

vigor, das plantas sobre ele enxertadas.

2.1.2. Caracterização da cultivar copa de pessegueiro utilizada

Maciel

A cultivar Maciel apresenta planta com vigor médio e forma aberta, é

moderadamente suscetível à bacteriose. Adapta-se a regiões onde o acúmulo de frio

hibernal esteja entre 200 a 300 horas, podendo produzir até 50 kgplanta-1. Os frutos

são de forma redondo-cônica e de tamanho grande, com peso médio próximo a

120g. A película é amarelo-ouro, com até 20% de vermelho, a polpa é amarela,

firme, não-fundente e aderente ao caroço, o sabor é doce-ácido, com leve

adstringência, com teor de sólidos solúveis totais entre 11 e 16°Brix. Destaca-se

pela produtividade, tamanho, aparência e resistência ao transporte. Os frutos são de

ótima qualidade após a industrialização, e com boa aceitação no mercado de

consumo in natura (MEDEIROS e RASEIRA, 1998).

2.2. Influência dos fatores ambientais na qualidade dos frutos

18

Os fatores ambientais englobam temperatura, luz, umidade relativa do ar,

vento, altitude, pluviosidade e textura do solo e exercem papel fundamental na

qualidade dos frutos em termos de sabor, aroma, textura, espessura de casca ou

potencial de armazenamento (CHITARRA e CHITARRA, 2005). Segundo Herter et

al. (2003), a temperatura do ar apresenta diferentes efeitos sobre a cultura do

pessegueiro e ocorrem variações em função das diferentes fases do ciclo vegetativo.

As temperaturas de inverno são importantes para a fase de repouso do pessegueiro

conhecido como dormência. Na fase de pré-colheita, temperaturas relativamente

altas, sem serem excessivas, combinadas com temperaturas amenas no período da

noite conferem melhores padrões de qualidade dos pêssegos (concentração de

açúcar e coloração adequada).

A insolação e a radiação solar são importantes nos processos de

desenvolvimento e maturação dos frutos, ambos os fatores são maiores no período

de verão, pelo fato dos dias serem mais longos e pela menor frequência de chuvas e

menor número de dias encobertos. A insolação também está atrelada às

coordenadas geográficas, pois em latitudes maiores, os dias de verão são maiores

e, consequentemente, maior o período de radiação solar e maior o potencial de

insolação (HERTER et al., 2003).

O pessegueiro é uma frutífera de clima temperado, portanto os mais

importantes centros de produção comercial situam-se em latitudes de 25ºN e 45ºS.

Em latitudes maiores, a temperatura mínima de inverno e as geadas são

normalmente os fatores limitantes, portanto em altitudes elevadas, o cultivo pode

estender-se a regiões tropicais (SCALOPPI, 2006).

Dentre os índices de qualidade dos frutos influenciados por luz, destacam-se

o tamanho, a concentração de sólidos solúveis, a acidez e a cor da epiderme.

Normalmente a quantidade de luz interceptada pelo fruto está em função da posição

deste na copa. O tamanho das plantas, espaçamento, orientação da fila, forma da

copa e tipo de sistema adotado influencia na distribuição da luz no interior das

plantas. Aumentando a exposição do fruto ao sol, há um aumento da absorbância da

luz, podendo aumentar a coloração vermelha dos frutos (HERTER et al., 2003).

Outros fatores que afetam a qualidade dos frutos são os ventos, as

precipitações pluvias e a ocorrência de geadas. O nível de umidade é um fator

crítico, pois o estresse hídrico pode diminuir tanto o rendimento da produção como o

19

tamanho dos frutos, aumentando a perda de massa, e também deprecia a sua

aparência (CHITARRA e CHITARRA, 2005).

2.3 Influência do porta-enxerto na qualidade dos frutos

Entre as prioridades de pesquisa na área da fruticultura, uma atenção particular

está sendo dada ao melhoramento da qualidade dos frutos. Neste aspecto, o estudo

da interação porta-enxerto e copa é um importante instrumento para promover uma

renovação da produção frutícola, assegurando controle do tamanho das plantas,

possibilidades de antecipar a frutificação e ao melhoramento qualitativo da produção

(LORETI e MASSAI, 2005).

Segundo Simão (1992), o porta-enxerto influencia a cultivar copa, alterando o

seu comportamento em relação ao seu desenvolvimento, produtividade, época de

maturação, qualidade dos frutos, resistência às doenças e pragas de solo e à

nutrição da planta. A disponibilidade de água e de nutrientes do solo e a capacidade

de captação pelas raízes está estritamente relacionada ao porta-enxerto utilizado,

afetando o vigor da planta e como consequência, a qualidade dos frutos (GIORGI et

al., 2005).

Os aspectos que favorecem a melhoria da qualidade dos frutos, sem

comprometer a produtividade, são considerados de elevada importância, pois

permitem uma melhor perspectiva de valorização da produção.

Mignani e Bassi (2000) estudaram o efeito de dois diferentes porta-enxertos

sobre a evolução da maturação e parâmetros qualitativos de seis cultivares de

damasco. Os autores observaram que o porta-enxerto tem efeito sobre

características como resistência da polpa ao penetrômetro, coloração da epiderme,

sólidos solúveis e acidez total titulável, pórem tal efeito varia de acordo com a

cultivar-copa.

As características pós–colheita dos frutos estão intimamente ligadas à

escolha do porta–enxerto, da cultivar copa e do manejo adotado na implantação e

na condução do pomar. De acordo com pesquisas recentes, o porta–enxerto exerce

influência tanto sobre aspectos físicos quanto na composição química dos frutos

avaliados após a colheita, promovendo alterações no diâmetro, coloração, teores de

sólidos solúveis, acidez titulável dos frutos (FORNER–GINER et al., 2003; AL–

20

JALEEL et al., 2005) e conteúdo de fitoquímicos (TAVARINI et al., 2007; REMORINI

et al., 2008).

2.4. Características físico-químicas de pêssegos

O grau de excelência de um produto, bem como a sua aceitação pelo

consumidor, está relacionado aos seus atributos de qualidade que, em frutos e

hortaliças in natura, engloba a aparência, os atributos sensoriais, o valor nutritivo, os

constituintes químicos e as propriedades funcionais (KADER, 2002).

Os parâmetros que induzem o consumidor a comprar um determinado produto

são os aspectos externos do fruto, como tamanho, forma, coloração e sua

uniformidade (DAREZZO, 1998).

Os produtores de pêssegos baseiam-se no tamanho e na mudança de

coloração para efetuar a colheita, sem efetiva correlação com parâmetros físicos e

químicos dos frutos, levando muitas vezes o produtor à imprecisão, quanto ao

estádio de maturação ideal para a comercialização de pêssegos (CUNHA JUNIOR

et al., 2007).

Em pêssegos, com o início da maturação ocorre um aumento acentuado na

produção de etileno que leva a alteração na cor, textura, sabor e aroma dos frutos,

que contribuem para os níveis de qualidade (TRAINOTTI et al., 2006).

A coloração externa do fruto, que é dada pela casca, é um atributo de

qualidade que tem grande importância, por ser um dos poucos critérios disponíveis

para orientar o consumidor no momento da compra. Frutos fortemente coloridos são

preferidos, devido à associação da cor com a doçura, embora a coloração nem

sempre represente a “qualidade comestível” ou características intrínsecas

desejáveis. Embora a coloração desejável varie entre produtos, cultivares e mercado

consumidor, há casos em que o vermelho é preferido em alguns produtos, como

pêssegos e nectarinas, porém há mercados que prefere pêssegos com menor

pigmentação vermelha (ROBERTSON et al., 1992; KADER, 2002).

Existem vários métodos para se avaliar a coloração da casca de frutos, com o

emprego de escalas, de equipamentos e da percepção humana. Porém, o mais

utilizado é o CIE L* a* b*, que fornece maior uniformidade de cor em relação à

percepção humana (HUNTER e HAROLD, 1987; MINOLTA, 1994).

Os frutos do pessegueiro, em decorrência do amadurecimento, tendem a

perder a coloração verde da casca, devido à degradação da clorofila e, simultânea

21

ou posteriormente a este fenômeno, síntese e acréscimo na concentração de

carotenóides, que são os pigmentos predominantes nos pêssegos maduros de cor

amarela (EREZ e FLORE,1986).

O teor de sólidos solúveis totais (SST), que corresponde a uma estimativa

indireta do conteúdo de açúcares presentes nos frutos, embora, medido através de

refratômetro, inclui, além dos açúcares, pectinas, sais e ácidos. Os SST aumentam

nos frutos com o amadurecimento, sendo constituídos, principalmente, pelos

açúcares solúveis (LIMA, 1997).

O teor de sólidos totais (SST) é utilizado como uma medida indireta dos

açúcares, uma vez que aumenta de valor à medida que esses teores vão se

acumulando nos frutos. A sua medição não representa o teor exato de açúcares,

pois outras substâncias também se encontram dissolvidas na seiva vacuolar

(vitaminas, fenólicos, pectinas, ácidos orgânicos e outros), no entanto entre essas,

os açúcares são as mais representativas, chegando a constituir 85 a 90% dos SST

Os teores variam conforme a espécie, cultivares, estádios de maturação e o clima

(CHITARRA e CHITARRA, 2005).

A acidez titulável é atribuída, principalmente, aos ácidos orgânicos que se

encontram dissolvidos nos vacúolos das células. Estes ácidos são translocados das

folhas para os frutos, sendo que, durante o processo de maturação os teores

diminuem, em decorrência do seu uso como substrato no processo respiratório ou

de sua conversão de açúcares (CHITARRA e CHITARRA, 2005).

Os ácidos orgânicos são os componentes químicos de menor teor em

pêssegos, porém suas concentrações adequadas são imprescindíveis ao “flavor” e,

por conseguinte, à qualidade comestível dos frutos. Os principais ácidos orgânicos

encontrados nestes frutos são os ácidos cítrico e málico, que variam em

concentração de acordo com a base genética da cultivar. Para algumas cultivares, o

teor dos ácidos não oscila com o processo de amadurecimento, enquanto em outras,

foi observada a tendência de acréscimo no teor do ácido málico, acompanhada de

decréscimo no ácido cítrico, ao longo do processo de amadurecimento dos frutos

(WANG et al., 1993).

De acordo com Bleinroth (1992), os sólidos solúveis totais (SST) têm tendência

de aumento com o avanço da maturação, enquanto a acidez titulável (AT) diminui

22

com o amadurecimento. Portanto, a relação SST/AT é diretamente proporcional aos

sólidos solúveis e inversamente proporcional a acidez.

Os dois métodos mais comumente usados para medir a acidez dos frutos são a

acidez titulável (AT) e o potencial hidrogeniônico (pH), sendo que o primeiro

representa todos os grupamentos ácidos encontrados (ácidos orgânicos livres, na

forma de sais e compostos fenólicos), enquanto que o segundo determina a

concentração hidrogeniônica da solução (KRAMER, 1973).

A firmeza de polpa é uma consequência do amadurecimento, sendo uma

característica muito importante sob o ponto de vista econômico, porque está

diretamente relacionada à qualidade, resistência ao transporte, conservação e

resistência ao ataque de microrganismos. A perda da consistência resulta da perda

excessiva de água e da diminuição da pressão de turgescência nas células (AWAD,

1993).

O sabor e o aroma são apreciados em conjunto e designados como “flavor”

que, na realidade, é a percepção sutil e complexa da combinação entre sabor (doce,

ácido, adstringente, amargo), odor (substâncias voláteis) e textura (CHITARRA e

CHITARRA, 2005).

Vários estudos permitiram a caracterização da qualidade dos frutos em

diferentes seleções de pessegueiros, bem como suas relações com os porta-

enxertos. Rocha et al. (2007) avaliaram o comportamento da cultivar Chimarrita

sobre os porta-enxertos Aldrighi, Okinawa 1, Tsukuba, Capdeboscq e GF 305, na

região de Pelotas. Como resposta, os porta-enxertos Capdeboscq, Okinawa 1 e

Tsukuba induziram a um incremento na massa e no diâmetro dos frutos da cultivar

Chimarrita. Pórem, Picolloto et al. (2009) determinaram as características físico-

quimicas da cultivar Chimarrita sob a influência destes mesmos porta-enxertos e

concluíram que a qualidade dos frutos, quanto à relação sólidos solúveis

totais/acidez titulável, tonalidade de cor, firmeza de polpa e teor de fenóis totais, é

alterada pelos porta enxertos „Capdeboscq‟, „Tsukuba‟ e „Okinawa‟.

Montes et al. (2008), trabalhando na região de Presidente Prudente (SP),

analisaram o comportamento das cultivares Talismã, Aurora 1, Dourado 2, Doçura 2,

Aurora 2 e Tropical sobre os porta-enxertos „Okinawa‟ e „Umezeiro‟. O porta-enxerto

„Okinawa‟ proporcionou maiores valores de sólidos solúveis totais (SST) para as

cultivares Talismã e Tropical (14,55 e 13,13 ºBrix, respectivamente) e, para a acidez

23

titulável (AT), a cultivar Tropical apresentou frutos menos ácidos comparados com

os demais tratamentos. No porta-enxerto umezeiro as cultivares não diferiram nos

valores de sólidos solúveis totais, porém, a acidez foi menor nas cultivares Tropical,

Aurora 1 e Aurora 2. A cv. Tropical apresentou a melhor relação SST/AT, com frutos

de maior `ratio`, para os dois porta-enxertos.

Mathias et al. (2008) avaliaram a qualidade pós–colheita de pêssegos da

cultivar 'Aurora–1' enxertada sobre quatro porta–enxertos: 'Okinawa' propagado por

sementes e por estacas herbáceas, Clone 15 e cv. Rigitano de umezeiro

propagados por estacas herbáceas. O uso do Clone 15 de umezeiro como porta–

enxerto induziu à produção de frutos com maior teor de sólidos solúveis totais, em

relação ao 'Okinawa' propagado por estacas herbáceas. Os porta–enxertos

estudados não influenciaram na coloração externa, no ângulo de cor e na

luminosidade do mesocarpo, na firmeza e na acidez dos pêssegos 'Aurora–1'.

2.5. Características fitoquímicas em frutos e plantas

2.5.1. Compostos fenólicos

Os alimentos caracterizam-se como funcionais pela presença de uma ou mais

substâncias com ação antioxidante capazes de atuar no metabolismo ou na

fisiologia do organismo humano, retardando o envelhecimento e prevenindo certas

doenças, como câncer, obesidade e problemas cardíacos (DIPLOCK et al. 1999;

BRASIL, 2008).

Os compostos fenólicos são formados no metabolismo secundário dos

vegetais e possuem funções de defesa contra o ataque de pragas, estado de

estresse e outros. Já em animais e humanos têm-se observado que são capazes de

reagir com radicais livres, formando radicais estáveis. Esse poder de estabilização

das estruturas dos compostos fenólicos é devido à sua estrutura química formada

por, pelo menos, um anel aromático com grupamentos hidroxilas (GIADA e

MANCINI-FILHO, 2006).

Os fenólicos, em plantas, são essenciais no crescimento e na reprodução,

além de atuarem como agente antipatogênico e de contribuírem na pigmentação

(SHAHIDI e NACZK, 1995). Diversos autores têm estudado a presença dos

compostos fenólicos nas plantas, em razão de sua participação nos processos

24

responsáveis pela cor, adstringência e aroma de vários alimentos, da atividade

farmacológica e nutricional e da capacidade de inibir a oxidação lipídica e a

proliferação de fungos (PELEG et al., 1998).

Segundo Reynerston et al. (2008), os compostos fenólicos presentes nos

frutos são importantes constituintes antioxidantes da dieta. As frutas apresentam

variações quantitativas e qualitativas na composição desses constituintes em função

de fatores intrínsecos (cultivar, variedade, estádio de maturação) e extrínsecos

(condições climáticas e edáficas). Por sua vez, a eficácia da ação antioxidante

depende da concentração destes fitoquímicos no alimento (MELO et al., 2008).

Os compostos fenólicos presentes nas fontes vegetais são classificados como

flavonóides e não flavonóides, sendo que ambos são metabólitos secundários

presentes em frutas e hortaliças. Os flavonóides são os compostos que apresentam

a estrutura química descrita como C6-C3-C6 (Fig.1).

Figura 1 - Estrutura básica dos flavonóides.

Fonte: Skerget et al. (2005).

Para os autores Burns (2001) e Melo e Guerra (2002) os compostos não

flavonóides incluem:

a) os derivados das estruturas químicas C6-C1- compostos hidroxibenzóicos, como

os representados pelos ácidos p-hidroxibenzóico, gálico e elágico (Fig. 2).

25

(a) (b) (c)

Figura 2 - Estrutura química do ácido gálico (a), ácido elágico (b) e ácido p-

hidróxibenzóico (c).

Fonte: Malacrida e Motta (2006).

b) os derivados das estruturas químicas C6-C3 - compostos hidroxicinâmicos,

representados pelos ácidos caféico e p-cumárico (Fig. 3).

(a) (b)

Figura 3 - Estrutura química do ácido caféico (a) e do ácido p-cumárico (b)

Fonte: Filho et al. (2005).

Os compostos fenólicos são biossintetizados por diferentes rotas, razão pela

qual constituem um grupo bastante heterogêneo do ponto de vista metabólico. Duas

rotas metabólicas básicas estão envolvidas na síntese dos compostos fenólicos: a

rota do ácido chiquimico e a rota do ácido malônico. A rota do ácido chiquimico

participa na biossíntese da maioria dos fenólicos vegetais, converte precursores de

carboidratos derivados da glicólise e é sintetizada por três aminoácidos aromáticos –

fenilalanina, tirosina e triptofano. A rota do ácido malônico é menos significativa nas

plantas superiores. (TAIZ e ZEIGER, 2006)

26

As classes mais abundantes de compostos fenólicos em plantas são

derivadas da fenilalanina, por meio da eliminação de uma molécula de amônia para

formar o acido cinâmico. Esta reação é catalisada pela fenilalanina amônia liase

(PAL- phenylalanine ammonia lyase), uma das enzimas mais estudadas no

metabolismo secundário vegetal. A PAL está situada em um ponto de ramificação

entre o metabolismo secundário e primário, de modo em que a reação na qual ela

catalisa é uma etapa reguladora importante na formação de muitos compostos

fenólicos. A quantidade da enzima PAL é aumentada por fatores ambientais, tais

como baixos níveis de nutrientes, luz (pelo seu efeito no fitocromo) e infecção por

fungos, o que estimula a síntese de compostos fenólicos (TAIZ e ZEIGER, 2006).

Gil et al. (2002) estudando a composição antioxidante em uma cultivar de

pêssegos, mostraram que os compostos fenólicos foram a principal fonte de

antioxidantes e atribuiu aos porta-enxertos o fator determinante na qualidade do

fruto. Os valores variaram provavelmente em função da capacidade de captação de

água e de nutrientes disponíveis no solo de cada porta-enxerto e à eficiência de

conversão dos assimilados aos frutos, como por exemplo, o uso de porta-enxerto

anão tem a capacidade de deslocar mais nutrientes para as frutas, pois é menor a

concorrência por nutriente fornecida pelo crescimento vegetativo (CHALMERS et al.,

1981).

Remorini et al. (2008) verificaram a influência de quatro porta-enxertos,

Ishtara, Mr. S 2/5, GF 677 e Barreira 1, sobre a qualidade e valor nutricional (casca e

polpa) de frutos de pessegueiros Flavorcrest, analisando também vitamina C (ácido

ascórbico), fenóis, carotenóides (β-caroteno) e atividade antioxidante, nos períodos

de início, meio e fim da colheita. Como resultado os frutos provenientes dos porta-

enxertos Mr. S 2/5 e Barrier 1 apresentaram maior atividade antioxidante e superior

conteúdo fitoquímico, apesar dos frutos Mr. S 2/5 apresentarem-se menos firmes

quando coletados no meio e no final da colheita. Na determinação dos fenóis, ácido

ascórbico e β-caroteno na casca e na polpa, observaram-se que a remoção da

casca do pêssego resulta em uma perda significativa da atividade antioxidante total.

O teor de fenóis na casca foi mais elevado em Mr. S 2/5 na fase final da colheita,

sendo superior ao encontrado na polpa dos frutos. O teor de ácido ascórbico foi

maior na fase final da colheita para o porta-enxerto Barrier 1, ao passo que com

Ishtara, Mr. S 2/5 e em Barrier 1, observaram-se os maiores teores de β-caroteno e

27

enquanto na casca dos frutos, o valor mais elevado foi observado no Mr. S 2/5 na

fase final da colheita.

2.5.2. Carotenóides

Dentre as substâncias que têm chamado atenção tanto na área científica

como dos consumidores, destacam-se os carotenóides como, por exemplo, o β-

caroteno, o licopeno, criptoxantina e outros, em razão de suas funções

antioxidantes. Estas substâncias não são sintetizadas pelos seres humanos,

devendo ser fornecidas pela alimentação (FENNEMA, 2000; SHI e MAGUER, 2000).

Os carotenóides são substâncias que pertencem ao grupo químico dos

terpenóides ou terpenos, amplamente distribuídas na natureza, principalmente em

plantas, as quais se encontram nos cloroplastos, sempre acompanhando as

clorofilas (RIBEIRO e SERAVALLI, 2004). São insolúveis em água e, usualmente,

encontram-se nos tecidos vegetais em pequenas proporções, resultando na gama

de coloração característica de cada espécie e ou cultivar. Com a degradação da

clorofila, os carotenóides previamente presentes nos tecidos, tornam-se visíveis, ou

também podem ser sintetizados com o avanço da maturação dos frutos.

Estes compostos são corantes naturais das frutas e vão do amarelo ao

vermelho despertando a atenção devido a sua relevante contribuição para a

capacidade antioxidante (LIMA et al., 2005). Porém, sua importância também está

relacionada a funções ou ações biológicas nos seres humanos, como pró-vitamina

A. Esta vitamina exerce inúmeras funções importantes no organismo, como ação

protetora na pele e nas mucosas e papel essencial na função da retina e da

capacidade funcional dos órgãos de reprodução (FRANCO, 2006).

O β-caroteno, α-caroteno e a β-criptoxantina são precursores da vitamina A,

sendo que o primeiro apresenta o dobro de atividade do que os demais. A luteína e

a zeaxantina são os carotenóides relacionados com a proteção à degeneração

macular e catarata (SNODDERLY, 1995).

Em relação ao efeito nutricional dos carotenóides, os relatos de estudos

epidemiológicos observacionais sugerem que a ingestão de cerca de 4 mg por dia

de carotenóides, quantidade presente em uma alimentação rica em frutas e

28

hortaliças, pode proteger contra doenças degenerativas como o câncer (ZIEGLER,

1991; NAVES,1998).

Ao contrário das frutas tropicais, muitas das quais ricas em carotenóides, as

frutas de clima temperado são normalmente ricas em antocianinas e pobres em

carotenóides, porém os pêssegos que apresentam polpa amarela são exceções,

pois apresentam quantidade satisfatória de carotenóides (SENTANIN e AMAYA,

2007).

Os carotenóides de pêssego foram investigados por vários pesquisadores,

porém, além dos teores baixos, há divergência até no carotenóide predominante,

alguns autores relatam violaxantina (CURL, 1959; GROSS,1979), β-caroteno

(BUREAU e BUSHWAY, 1986), β-criptoxantina (GEBHARDT et al., 1977) ou ambos

últimos como principais ( PHILIP e CHEN, 1988).

Tavares (1991) obteve por meio de cromatografia em coluna aberta (CCA)

para o pêssego cultivar Rei da Conserva, a seguinte composição em μg g -1: 0,2 ±

0,1 de 13-cis-β-caroteno; 1,1 ± 0,4 de β-caroteno; 0,1 ± 0,0 de 9-cis-β-caroteno; 0,4

± 0,2 de ζ-caroteno; 1,0 ± 0,5 de cis-β-criptoxantina; 6,4 ± 2,1 de β-criptoxantina; 3,8

± 1,1 de luteína; 1,5 ± 0,9 de zeaxantina; e 0,8 ± 0,6 de violaxantina. Já Godoy e

Rodriguez-Amaya (1994) avaliaram a composição dos carotenóides pró-vitamínicos

A de pêssegos cultivar Diamante por Cromatografia em Coluna Aberta. Esta

variedade apresentou maior quantidade dos carotenóides trans-β-caroteno (1,2 vs.

0,6 μg g -1) e β-criptoxantina (5,1 vs. 4,1 μg g -1).

A casca dos frutos, assim como dos vegetais, são comumente rejeitadas

devido à ideia de serem indigestas ou então pela possibilidade de contaminação

química ou microbiana. Porém muitos autores relatam a presença de um alto

conteúdo de compostos fenólicos e antioxidantes nas cascas dos frutos como maçãs

(WOLFE et al., 2003), assim como para tomates, nos quais os níveis de licopeno

são maiores na casca do que na polpa e sementes (TOOR e SAVAGE, 2005). Em

pêssegos, isto também é verdade, sendo a casca favorecida com quantidades

relevantes de antioxidantes, incluindo conteúdo de compostos fenólicos (TOMAS-

BARBERAM et al., 2001), carotenóides, ácido ascórbico, antocianinas (GIL et al.,

2002).

29

2.5.3. Capacidade Antioxidante

Atualmente, a atividade antioxidante de compostos bioativos, em geral, tem

recebido muita atenção dos pesquisadores. Espécies reativas de oxigênio (ROS)

são produzidas naturalmente no organismo de mamíferos, como resultado do

metabolismo oxidativo. Contudo, ROS podem causar danos celulares às membranas

e ao DNA, propiciando mutações que podem desencadear a carcinogênese. Além

disso, pode ocorrer a oxidação de lipoproteína de baixa densidade (LDL), e, assim,

pode ser considerada um dos principais fatores de promoção de doenças

coronarianas (RAHMAN e ADCOCK, 2006).

A maioria das espécies animais possui um sistema eficiente de proteção,

sendo assim capaz de neutralizar os efeitos prejudiciais decorrentes do metabolismo

do oxigênio e da oxidação de lipídios. A formação de radicais livres in vivo ocorre

pela ação de enzimas, durante os processos de transferência de elétrons que

ocorrem no metabolismo celular e pela exposição a fatores exógenos, tais como:

ozônio, radiações gama e ultravioleta, dieta, uso de medicamentos e tabagismo

(CERUTI, 1991). O desequilíbrio entre moléculas oxidantes e antioxidantes, que

resulta na indução de danos celulares pelos radicais livres, tem sido chamado de

estresse oxidativo (SIES, 1993).

Além das defesas antioxidantes enzimáticas, os antioxidantes não enzimáticos,

supridos pela dieta, também participam do sistema de defesa antioxidante do

organismo. Esses compostos são definidos como quaisquer substâncias que,

quando presentes em baixas concentrações, comparadas as de um agente oxidante,

são capazes de prevenir a oxidação do substrato (HALLIWELL; GUTTERIDGE,

2000).

Entre os compostos antioxidantes incluem os fenólicos, vitamina E,

carotenóides, ácido ascórbico, entre outros. Estes atuam protegendo as células

vivas e alimentos in natura bloqueando a ação de radicais livres, formados pela

oxidação química e, ou enzimática, envolvidas na oxidação de ácidos graxos

poliinsaturados e, consequentemente, na formação de peróxidos. As dietas

contendo substâncias que atuam como antioxidantes (frutas, vegetais, cereais, óleos

e grãos) são benéficas para o mecanismo de defesa celular, protegendo desta forma

as células das alterações oxidativas (ARAÚJO, 2004).

30

Uma das estratégias mais aplicadas nas medidas in vitro da capacidade

antioxidante total de compostos, pertencentes a um alimento, consiste em

determinar a atividade antioxidante frente a substâncias cromógenas de natureza

radicalar; onde o desaparecimento da cor ocorre de forma proporcional à

concentração de antioxidantes (ARENA et al., 2001). O método do DPPH (diphenyl-

2-pricrylhydrazyl) (BRAND-WILLIANS et al., 1995) é baseado na redução do radical

DPPH na presença de antioxidante doador de hidrogênio. Este método tem sido

considerado um dos mais representativos para o emprego em modelos de radicais

na avaliação da capacidade de remoção de radicais livres (GENOVESE et al., 2008).

Tavarini et al. (2008) observou que o genótipo também desempenha papel

importante na determinação da capacidade antioxidante em frutos de pêssegos.

Drogoudi e Tsipouridis (2007), determinando a variabilidade das características

física e da capacidade antioxidante em casca e polpa de frutos de cultivares de

pêssegos Andross, Catherina, Everts, Fortuna, Loade, Romea, seleções PI-A37, PI

E-45 e PI-IB 42, enxertados em três porta-enxertos sendo eles: GF 677, PT 204 e

KID1. Os autores observaram um pequeno efeito do porta-enxerto sobre o conteúdo

antioxidante, e um pronunciado efeito da cultivar sobre esta característica, sendo

mais atribuída à origem genética. A cultivar Everts e o genótipo PI-E45 podem ser

considerados uma boa fonte de antioxidantes, sendo os maiores valores

encontrados na casca. As cultivares PI-E45, PI-IB42 e PI-A37 apresentaram bom

tamanho e qualidade de frutos.

31

3. Material e Métodos

3.1 Material

Os pêssegos da cultivar Maciel foram obtidos de dois pomares, sendo o

primeiro localizado no Centro Agropecuário da Palma (UFPel) – Capão do Leão,

(CAP/UFPel) e o segundo na Estação Experimental da Universidade Federal do Rio

Grande do Sul (UFRGS) – Eldorado do Sul, EE/UFRGS.

A região Sul, local onde estão instalados os dois pomares que fazem parte

deste estudo, segundo a classificação de Köppen, da região do Brasil que é de clima

mesotérmico úmido (Cf). Esta classificação determina que a temperatura média do

mês mais frio situe-se entre 18 e –3°C (C), e no mês mais seco a precipitação seja

maior do que 60mm (Cf).

O Centro Agropecuário da Palma (UFPel), está situado na localidade do Capão

do Leão sendo a latitude de 31°52‟00‟‟S e longitude de 52°21‟24‟‟W, altitude de 46m e

o clima predominante segundo a classificação climática de Köeppen é Cfb (clima

temperado úmido com verão temperado).

Na Estação Experimental Agronômica da UFRGS, localizada na localidade de

Eldorado do Sul, a latitude é de 30°05‟52‟‟S e a longitude de 51°39‟08‟‟W sendo a

altitude de 13,24m. O clima é considerado Cfa ou seja, subtropical úmido com verão

quente, caracterizado por apresentar temperatura média do mês mais quente de 22ºC

e temperatura média do mês mais frio de 13ºC.

A área de ambos os pomares é de aproximadamente de 0,2ha. As mudas dos

porta-enxertos foram obtidas a partir de sementes no período 2005/2006 e

transplantadas em ambos os locais, em julho de 2006.

Foram utilizadas seis variedades de porta-enxerto, sendo eles: Aldrighi,

Capdeboscq, Flordaguard, Nemaguard, Okinawa e Umezeiro, com a cultivar copa

Maciel (safra 2008), nas localidades do Centro Agropecuário da Palma/UFPel

(CAP/UFPel) e na Estação Experimental da UFRGS (EE/UFRGS).

O plantio foi realizado no espaçamento de 5,0 x 1,5 metros. O solo antes do

plantio foi corrigido de acordo com a análise do solo e as mudas foram rebaixadas até

a altura de 50cm em relação ao nível do solo. As plantas foram conduzidas na forma

de “V”, sendo as práticas culturais e o manejo fitossanitário adotado de acordo com as

normas técnicas preconizadas pelo sistema de produção integrada de frutas (PIF).

32

O início da floração do pomar do CAP/UFPel iniciou na primeira quinzena de

julho, onde os porta-enxertos Capdeboscq e Umezeiro anteciparam o início da

floração, ocorrendo no dia nove de julho de 2008. Nemaguard registrou a floração no

dia 10 de julho, „Aldrighi e Okinawa no dia 11 de julho e Flordaguard retardou o início

da floração em três dias ocorrendo no dia 12 de julho (Tabela 1).

A plena floração da cv. Maciel, no ano de 2008, ocorreu na segunda quinzena

de julho e foi antecipada em Umezeiro (22/07), seguida de Capdeboscq, em 23/07.

„Aldrighi‟ e Nemaguard tiveram a plena floração em 25/07 e, Flordaguard e Okinawa

retardaram a plena floração, ocorrendo em 27 de julho, diferindo 5 dias dos

primeiros porta enxertos a induzir a plena floração sendo neste caso o Umezeiro

(tabela 1).

Tabela 1- Porcentagem de flores abertas na cultivar Maciel enxertada sobre

diferentes porta-enxertos no período de 2008.

Porta enxerto Início floração (10%) Plena floração (50%)

Aldrighi 11/7/2008 25/7/2008

Capdeboscq 9/7/2008 23/7/2008

Flordaguard 12/7/2008 27/7/2008

Nemaguard 10/7/2008 25/7/2008

Okinawa 11/7/2008 27/7/2008

Umezeiro 9/7/2008 22/7/2008

CV. (%) 30,66

Para os dados fenológicos da EE/UFRGS não foram feitos registros das datas

de inicio e plena floração.

O experimento no campo está instalado em um delineamento experimental de

blocos casualizados, no esquema fatorial de 6 X 3 (6 porta-enxertos, 3 blocos), com

três repetições de cinco plantas por tratamento.

33

3.2 Métodos

3.2.1. Avaliação da qualidade de pêssegos ‘Maciel’ para as duas localidades

Os frutos foram colhidos de forma aleatória de acordo com os tratamentos,

sendo selecionados frutos íntegros (ausência de lesões e ataque de insetos).

A colheita no pomar da Estação Experimental da UFRGS ocorreu no dia

11/12/2008, os frutos foram transportados até a Faculdade de Agronomia Eliseu

Maciel. Para o transporte, acondicionou os frutos em caixas de isopor. Os frutos

permaneceram em temperatura ambiente (cerca de 8 horas) dentro das dependências

do laboratório, para posteriormente proceder às análises.

A colheita dos frutos pertencentes ao pomar do Centro Agropecuário da Palma

foi realizada em 16/12/2008, sendo estes encaminhados diretamente para o

laboratório onde foram executados os mesmos procedimento realizado com os frutos

provenientes da Estação Experimental da UFRGS.

As análises foram realizadas no Departamento de Fitotecnia e nos Laboratórios

do Departamento de Ciência e Tecnologia Agroindustrial, Faculdade de Agronomia

Eliseu Maciel da UFPel, Município de Capão do Leão, sendo:

a) cor da epiderme: Mensurada com colorímetro eletrônico, marca Minolta

300, com iluminante D65, e abertura de 8mm, no sistema registrado pela

Commission Internationale de I‘Eclairage L*, a* e b* (CIE-Lab) utilizando-se as

coordenadas espaciais de cor. Neste sistema de representação de cor, os valores

L*, a* e b * descrevem a uniformidade da cor no espaço tridimensional, onde o valor

L* corresponde a escuro-brilhoso (0, preto; 100, branco) e representa a leveza

relativa da cor. Os valores de a* correspondem à escala do verde ao vermelho (a*

negativo = verde; a* positivo = vermelho) e os valores de b* correspondem à escala

do azul ao amarelo (b* negativo = azul; b* positivo = amarelo). A partir destes, foram

calculados os valores da tonalidade da cor (ângulo hº), expressos em graus, pela

fórmula hº = tan-1 b*/a*. Foram realizadas duas leituras em lados opostos, na região

equatorial dos frutos.

b) firmeza da polpa: Determinada com penetrômetro digital, marca TR

TURONI-Italy, modelo 53205 com ponteira de 8mm de diâmetro. Em cada pêssego,

foram realizadas duas leituras na seção equatorial após remoção da epiderme e em

34

lados diametralmente opostos, sendo calculada a média para cada fruto. Os valores

foram expressos em libras-força (lbf);

c) Teor de sólidos solúveis totais (SST): Diretamente no suco, usando-se um

refratômetro digital com compensação de temperatura automática. Os resultados

foram expressos em ºBrix;

d) Acidez titulável (AT): Avaliado através da diluição de 10ml de suco de 20

frutas homogeneizadas em 90mL de água destilada e posterior titulação com

solução de NaOH 0,1N. Utilizou-se pHmetro digital (modelo pH5), até pH 8,10 (ponto

de viragem), este método é baseado na neutralização dos ácidos presentes no suco

de fruta por uma solução básica. Os resultados foram expressos em meq

NaOH/100mL de suco.

e) pH: Avaliado com o uso de pHmetro digital modelo pH5 e compensação

automática de temperatura;

f) relação SST/AT: Obtida através do quociente entre as duas variáveis.

Para as análises dos fitoquímicos os frutos foram separados em casca e

polpa. Utilizou-se para o procedimento o uso de facas domésticas, onde se procurou

retirar somente a casca, evitando ao máximo a presença de polpa. Para a polpa foi

retirada amostras dos 15 frutos preferencialmente da região equatorial.

Após, tanto as cascas quanto as polpas foram triturados com auxílio de um

processador, acondicionados em potes de plásticos de 100g e congelados com

auxílio de nitrogênio líquido. As amostras foram armazenadas em Ultra-freezer (-

80°C). As análises fitoquímicas de cada repetição foram executadas em triplicata,

sendo:

a) capacidade antioxidante: A capacidade antioxidante foi determinada

através da capacidade dos compostos presentes nas amostras em sequestrar o

radical estável DPPH· (2,2difenil-1-picrilhidrazila), segundo método descrito por

Brand-Williams, Cuvelier e Berser (1995). Para a extração dos compostos com

atividade antioxidante, pesou-se Cinco gramas da amostra macerada acondicionou-

se em frasco de Falcon de 50mL, e diluiu-se com 20mL de metanol. A solução foi

homogeneizada com auxílio de um vortex até consistência uniforme. Após

35

armazenou-se por 24 horas em temperaturas de 3 a 4°C, seguido de centrifugação

por 15 minutos (5000 a 6000 rpm).

A determinação foi realizada em tubos revestidos com papel alumínio,

contendo 10µL do extrato da fruta, 90µL de metanol e 3,9mL de solução-uso de

DPPH, com a finalidade de completar o volume final de 4,0mL.

Deixou-se a mistura no escuro por 30 minutos e após foi realizada a leitura a

517nm em espectrofotômetro Ultrospec 2.000 UV/Visível (Pharmacia Biotech). A

atividade sequestrante de radicais livres foi determinada no estabelecimento de uma

curva padrão de Trolox, obtendo-se uma equação da reta expressa por y=0,5085x.

Os resultados foram expressos por capacidade antioxidante equivalente a Trolox

relativa (mg TEAC 100g-1).

b) carotenóides totais: A extração foi efetuada pelo método descrito por

Rodriguez-Amaya (1999), com modificações. O método consiste em pesar 5g de

amostra (macerada) e misturar com 2g de celite, adicionando-se 20mL de acetona

gelada com agitação por 10min. Após, a filtragem é feita através do funil de

Buchener que deve ser forrado com papel filtro e deve-ser lavar o resíduo até a total

transferência da amostra utilizando acetona. Transfere-se o filtrado para um funil de

separação, acrescenta-se éter de petróleo (em torno de 50 a 70mL) e água

destilada. Quando ocorre a separação das fases, descarta-se a fase inferior

acrescentando água destilada até a completa remoção da acetona da amostra. O

pigmento (extrato) foi transferido para um balão volumétrico, completando-se com

éter de petróleo até o aferimento do balão. A leitura foi feita em espectrofotômetro a

450nm.

Cálculo:

Carotenóides totais ( g/g) = Absorbância x vol do extrato (mL) x 106

2500 x 100 x g da amostra

Expresso em β-caroteno

c) quantificação de carotenóides individuais: O processo de extração dos

carotenóides foi realizado utilizando a mesma metodologia de extração de amostra

para a determinação de carotenóides totais. Após a etapa de extração foi realizada a

36

saponificação da amostra, adicionando 25mL de solução de KOH 1,5N em etanol

em 25mL de amostra, deixando em repouso na ausência de luz por 18 h.

Após a separação das fases, o extrato foi concentrado em rotaevaporador à

35ºC e dissolvido na fase móvel inicial (metanol: acetonitrila, 30:70 v/v). O extrato

diluído foi transferido para tubos de eppendorf e centrifugado nas condições de 9000

rpm por seis minutos. O sobrenadante (30μL) foi injetado no cromatógrafo líquido de

alta eficiência (CLAE).

A análise por cromatografia líquida de alta eficiência consistiu no sistema

HPLC-Shimadzu com injetor automático, detector UV-visível a 280nm, coluna de

fase reversa RP-18 CLC-ODS (5μm, 4,6mm x 150mm) com fase estacionária

octadecil e uma coluna de guarda CLC-GODS (4) com fase estacionária de

superfície octadecil, ambas localizadas em forno a 25oC, equipado com detector UV,

utilizando o comprimento de onda de 450nm. A separação foi efetuada utilizando um

sistema de eluição por gradiente de metanol, acetonitrila e acetato de etila (tabela 2),

com um fluxo de 1mL min-1.

Tabela 2- Programa do gradiente de eluição utilizado na separação de carotenóides

individuais em pêssegos cv. Maciel.

Tempo

(minutos) Solvente A (%) Solvente B (%) Solvente C (%) Solvente D (%)

0 30 0 70 0

10 10 40 80 10

35 -5 40 80 15

40 30 5 70 0

Solvente A: metanol, Solvente B: acetonitrila, Solvente C: acetato de etila

Para a identificação e quantificação de β-caroteno, β-criptoxantina, luteína,

zeaxantina e licopeno utilizou-se uma curva de padrão, preparada com os padrões

cromatográficos correspondentes. O conteúdo total de carotenóides individuais foi

expresso em mg 100g-1 de amostra.

d) quantificação de compostos fenólicos totais: Os compostos fenólicos totais,

foram quantificados utilizando-se uma adaptação do método de Folin-Ciocalteau

37

(SINGLETON e ROSSI, 1965). Foi pesado 1g da amostra, macerada e adiciona-se

60mL de água ultra-pura, transferiu-se para um balão volumétrico de 100mL,

acrescentou-se 5mL de reagente de Folin, aguardando a reação por 8 minutos e

posteriormente adicionou carbonato de sódio na concentração de 20%. Completou-

se o volume do balão para 100mL. A amostra permaneceu no escuro por duas

horas, onde após foi feita a filtragem e leitura no espectrofotômetro a 725nm. Foi

realizada a prova em branco utilizando 1mL de água ultra-pura em substituição a 1 g

de fruta. Foi utilizando-se ácido gálico para a elaboração da curva padrão (Fig.4) e

os resultados foram expressos em miligramas de equivalente de ácido gálico (mg

GAE 100g-1) na amostra.

Figura 4 – Curva padrão em ácido gálico.

e) quantificação de compostos fenólicos individuais: Os compostos fenólicos

foram extraídos usando o método descrito por Häkkinen et al. (1998). Cinco gramas

da amostra macerada foram dissolvidas em 30mL de metanol e após foi adicionado

4,9mL de ácido clorídrico p.a. (concentração final de HCl 1,2M) para a estabilização

dos composto fenólicos, sendo completado o volume em balão volumétrico de 50mL

com metanol. O extrato foi homogeneizado em banho de água à 35ºC, na ausência

de luz por 24 horas. Após este período, a mistura foi filtrada e o sobrenadante foi

concentrado em rotaevaporador a 40ºC por cerca de 30 minutos. O resíduo

38

concentrado foi redissolvido em metanol até o volume final de 20mL, o qual foi

centrifugado (7.000 rpm por 10 minutos). Retirou-se uma alíquota do sobrenadante

(30μL) para injetar no cromatógrafo.

O cromatógrafo consistiu no sistema HPLC-Shimadzu, (idem ao descrito para

a análise de carotenóides individuais). A fase móvel consistiu no gradiente de

eluição utilizando solução aquosa de ácido acético (99:1, v/v) e metanol (tabela 3),

com fluxo de 0,8mL minuto-1, com um tempo total de corrida de 45 minutos, segundo

metodologia descrita por Zambiazi (1997).

Tabela 3 - Programa do gradiente de eluição utilizado na separação de compostos

fenólicos em pêssegos cv. Maciel.

Tempo (minutos) Solvente A (%) Solvente B (%)

0 100 0

25 60 40

27 60 40

37 95 5

42 95 5

45 100 0

Solvente A: solução aquosa de ácido acético (99:1v/v), solvente B: metanol.

Os compostos fenólicos individuais foram identificados e quantificados com

base da curva de calibração de padrões, cujos padrões foram dissolvidos em

metanol, incluindo o ácido p-cumárico, ácido cafeico, quercetina, ácido ferúlico,

epicatequina, ácido p-hidroxibenzóico, ácido gálico, ácido elágico, catequina,

miricetina e kaempferol. Os valores dos pontos de calibração formam estipulados

com base em estudos prévios de quantificação de compostos fenólicos individuais

(SHAHRZAD et al., 1996). Os resultados foram expressos em mg do composto

fenólico 100g-1 de amostra.

3.2.1.1. Delineamento experimental

Para as análises físico-químicas, o delineamento experimental foi um mono-

fatorial com seis níveis (porta-enxertos), com três repetições de 20 frutas por porta-

enxerto.

39

Para as análises fitoquímicas, tanto para a casca quanto para a polpa, o

delineamento experimental foi um mono-fatorial com seis níveis (porta-enxerto), com

três repetições de 15 frutas por porta-enxerto.

Na análise dos resultados foi realizada análise da variância e as médias foram

comparadas pelo teste de Tukey (P<0,05), sendo realizada também, para os

fitoquímicos, a análise de Correlação de Pearson, utilizando o programa estatístico

WinStat (MACHADO e CONCEIÇÃO, 2002).

40

4. Resultados e Discussão

4.1. Características físico-químicas da cultivar Maciel

Os pêssegos da cultivar Maciel, oriundos do CAP/UFPel, apresentaram

influência significativa do porta-enxerto em algumas características físico-químicas,

tais como acidez titulável, relação SST/AT e pH conforme dados apresentados na

Tabela 4.

Para o parâmetro acidez titulável, os frutos provenientes do porta-enxerto

Nemaguard apresentaram-se mais ácidos (9,65meq 100mL-1), não diferindo

estatisticamente das cv. Okinawa, Flordaguard e Capdeboscq. Os porta enxertos

Aldrighi e Umezeiro proporcionaram frutos menos ácidos (8,33 meq100mL-1)

respectivamente. Picolotto (2009) obteve também efeito de diferentes porta-enxertos

sobre a cultivar Maciel, sendo que os porta-enxertos Rubira, Aldrighi e Capdeboscq

apresentaram as maiores médias de acidez com valores de 13,45 meq100mL-1,

essas diferenças podem ser atribuídas ao porta-enxerto e ao estádio de maturação

dos frutos no momento da colheita.

Resultados obtidos por Montes et al. (2008) com as cvs. Talismã, Aurora 1,

Dourado 2, Doçura 2 e Aurora 2, sobre os porta enxertos Okinawa e Umezeiro,

evidenciaram que os frutos produzidos sobre a cv. Okinawa também se tornaram

mais ácidos com médias de 2,9 a 4,62 meq100mL-1 para „Okinawa‟ e 2,76 a 3,96

para „Umezeiro‟, concordando com o efeito verificado neste trabalho, porém com

valores completamente diferentes.

Nemaguard é um porta-enxerto que induz um bom vigor a copa e de acordo

com Guidoni et al. (1998), os porta-exertos que induzem maior vigor são mais

eficientes na capacidade de acumular substâncias nas frutas. Porém, as diferenças

encontradas não podem ser totalmente atribuídas ao efeito direto do porta-enxerto

na qualidade dos frutos, mas também ao seu efeito deste na época de maturação.

Sendo que possivelmente, a quantidade de ácidos esteja relacionada com o atraso

na maturação e como consequência a não degradação dos ácidos presentes nos

frutos, uma vez que todos foram colhidos no mesmo dia, independente do porta-

enxerto.

41

Como pode ser constatado na Tabela 5, para o parâmetro sólidos solúveis

totais (SST) os dados obtidos não foram significativos para os efeitos dos diferentes

porta-enxertos. De acordo com Raseira e Nakasu (1998), os teores de sólidos

solúveis encontrados na cultivar Maciel variaram de 11° a 18°Brix, o que foi

confirmado neste trabalho.

Este mesmo parâmetro foi avaliado por Giorgi et al. (2005) com os porta-

enxertos „Barrier 1‟, „Citation‟, „ GF677‟, Ishtara‟ e „Julior‟ sobre a cultivar „Suncret‟, e

também não observaram efeito significativo do porta-enxerto. Entretanto, Rocha

(2006), trabalhando com a cultivar Chimarrita, observou que os frutos provenientes

de plantas enxertadas com os porta-enxertos Capdeboscq e Tsukuba 1,

apresentaram valores mais elevados para sólidos solúveis totais, não diferindo

estatisticamente do „Aldrighi‟. Assim, constata-se que o porta-enxerto pode

influenciar a época de maturação dos frutos e, por conseqüência, o teor de SST

(CARUSO et al., 1995) e que, segundo Grappadelli e Sansavini (1998), este

parâmetro pode estar relacionado com a posição destes na planta, penetração de

luminosidade, sistema de condução e a densidade de plantio do pomar, mas nem

sempre as diferenças obtidas apresentam significância.

Os frutos provenientes das cv. Okinawa e Umezeiro apresentaram-se menos

ácidos que os demais com valores de pH de 3,76 e 3,77, respectivamente. De

acordo com Chitarra e Chitarra (2005), o pH aumenta com a redução da acidez,

sendo utilizado como indicativo desta variação. Isto indica que esses dois porta-

enxertos anteciparam a maturação destas cultivares.

Para a relação SST/AT, houve influência do porta-enxerto sendo o maior valor

para os pêssegos sobre Umezeiro, não apresentando diferença de Okinawa e

Capdeboscq, diferindo de Aldrighi, Flordaguard e Nemaguard. Montes et al. (2008)

trabalhando na região de Presidente Prudente (SP) analisou o comportamento das

cultivares Talismã, Aurora 1, Dourado 2, Doçura 2, Aurora 2 e Tropical sobre os

porta-enxertos Okinawa e Umezeiro. A cv. Tropical foi a que produziu frutos de

maior relação SST/AT, apresentando efeito significativo para os dois porta-enxertos

em estudo.

42

Tabela 5 - Acidez titulável, SST, SST/AT e pH de pêssegos da Cultivar Maciel enxertada em diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

Acidez Titulável SST SST/AT pH

Porta Enxerto (meq 100mL-1) (° Brix)

Aldrighi 8,33 ± 0,41 b* 11,42 ± 0,17 ns 1,19 ± 0,17 b* 3,64 ± 0,04 b*

Capdeboscq 9,11 ± 0,15 ab 12,05 ± 0,19 1,32 ± 0,02 ab 3,65 ± 0,04 b

Flordaguard 9,06 ± 0,28 ab 11,57 ± 0,34 1,27 ± 0,06 b 3,65 ± 0,04 b

Nemaguard 9,65 ± 0,52 a 11,87 ± 0,62 1,23 ± 0,09 b 3,56 ± 0,05 b

Okinawa 8,69 ± 0,40 ab 11,80 ± 0,45 1,35 ± 0,03 ab 3,76 ± 0,02 a

Umezeiro 8,33 ± 0,61 b 11,40 ± 0,18 1,49 ± 0,17 a 3,77 ± 0,05 a

CV.(%) 4,73 5,08 6,90 1,27 * Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5% de

probabilidade de erro pelo teste de Tukey. ± desvio padrão. ns. Não significativo.

Para a variável firmeza de polpa (Figura 5), constata-se que o porta-enxertos

Aldrighi, proporcionou frutos mais firmes (6,59 lbs), não diferindo das cv.

Nemaguard, Okinawa e Umezeiro, porém diferindo das cvs. Capdeboscq e

Flordaguard que apresentaram os valores mais baixos. Trabalhos realizados por

Rossi (2004), com a cultivar de pêssego de polpa amarela „Granada‟, apresentou

efeito do porta enxerto Aldrighi e Tsukuba 1 sobre a firmeza de polpa no ano de

2002, obtendo uma firmeza de polpa de 10,50 e 11,0 lbs, respectivamente,

mostrando que existe uma diferença nas respostas entre as cultivares e também

entre os porta-enxertos quanto à resistência de polpa no momento da colheita.

Segundo Picolloto (2009), a cultivar Maciel enxertada sobre Aldrighi proporciona

frutos com menor firmeza de polpa, o que não foi encontrado neste trabalho. A essa

diferença de resposta pode ser atribuída ao estádio de maturação dos frutos no

momento da colheita.

Remorini et al. (2008) utilizando os porta enxertos GF677, Barrier 1, Ishtara e

Mr.S 2/5, com a cultivar „Flavorcrest‟, avaliou os frutos em três datas de colheita e

conclui que o porta enxerto afeta significativamente a firmeza, na primeira data de

colheita, sendo „Barrier 1‟ o que proporciona os frutos mais firmes, não produzindo

este efeito para as demais datas. A firmeza está diretamente relacionada à

maturação dos frutos, em pêssegos, quanto maior o grau de maturação, menor a

firmeza de polpa e como consequência, menor será sua vida de prateleira,

43

resultados comprovados neste experimento em que a cultivar Maciel sobre Aldrighi

teve frutos mais ácidos e com pH mais alto.

* Médias seguidas de mesma letra minúscula não diferem entre si em nível de 5% de probabilidade

de erro pelo teste de Tukey

Figura 5- Firmeza de polpa de pêssegos da cultivar Maciel enxertada sobre

diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-

2008.

Para a coloração dos frutos, o efeito do porta-enxerto foi verificado apenas

nos valores de a* que correspondem a cor de recobrimento (sendo a* negativo,

verde; a* positivo vermelho), porém as médias entre os porta enxertos não diferiram

entre si. Através dos dados obtidos na tabela 6, constata-se que os porta enxertos

Umezeiro, Okinawa e Capdeboscq apresentaram frutos com valores positivos,

indicando uma coloração mais próxima do vermelho. O porta enxerto Umezeiro,

segundo Pereira et al. (1998) e Campo Dall‟orto et al. (1992) promove a redução do

vigor das plantas sobre ele enxertadas, tornando as plantas com porte menor e

expondo os frutos a uma maior interceptação luminosa. Segundo Ju et al. (1999),

este incremento na coloração é conseqüência do aumento na luminosidade, a luz

estimula a síntese das antocianinas, as quais aceleram a expressão do gene para a

enzima flavonóide-3-o-glicosil transferase, enzima esta que é responsável pela

pigmentação vermelha.

44

Nos parâmetros luminosidade, coloração de fundo e ângulo hue, não foi

observado efeito significativo dos porta-enxertos sobre os pêssegos da cultivar

Maciel.

Tabela 6 - Luminosidade, cor de superfície (a*), cor de fundo (b*) e ângulo hue em

pêssegos da cultivar Maciel, enxertada sobre diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

Porta-enxerto Luminosidade ° a °b °hue

Aldrighi 69,05 ns -1,13 a* 56,23 ns 91,39 ns

Capdebosq 69,14 1,03 a 56,01 87,52

Flordaguard 68,66 - 0,52 a 56,63 90,81

Nemaguard 69,15 - 1,06 a 54,75 91,29

Okinawa 68,65 0,68 a 55,03 90,91

Umezeiro 68,18 1,42 a 57,56 90,82

CV.(%) 1,23 3,38 3,32 3,62 * Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5%de probabilidade de erro pelo teste de Tukey. ns: não significativo.

Para aos pêssegos oriundos da EE/UFRGS, não houve significância da

análise de variância dos porta-enxertos para os parâmetros acidez titulável, sólidos

solúveis totais, relação sólidos solúveis totais /acidez titulável, cor e pH (tabela 7).

Tabela 7 - Acidez titulável, SST, SST/AT e pH de pêssegos da Cultivar Maciel enxertada em diferentes porta-enxertos. Centro Estação Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul-2008

Acidez Titulável SST SST/AT pH

Porta Enxerto (meq100mL-1) (° Brix)

Aldrighi 9,28 ± 0,20 ns 12,68 ± 0,45 ns 1,36 ± 0,03 ns 3,65 ± 0,03 ns

Capdeboscq 9,60 ± 0,65 13,06 ± 1,24 1,35 ± 0,06 3,71 ± 1,24

Flordaguard 9,56 ± 0,88 12,08 ± 0,55 1,27 ± 0,16 3,66 ± 0,04

Nemaguard 9,12 ± 0,20 12,24 ± 0,25 1,34 ± 0,06 3,68 ± 0,06

Okinawa 9,51 ± 0,55 13,11 ± 0,40 1,38 ± 0,05 3,68 ± 0,02

Umezeiro 9,63 ± 0,22 12,51 ± 0,20 1,30 ± 0,02

3,74 ± 0,02

CV.(%) 5,08 4,95 5,59 1,26 * ns: não significativo.

45

Para a firmeza (fig.6), embora a análise de variância tenha demonstrado

efeito do porta-enxerto, os valores das médias não diferiram entre si. Esses

resultados confirmam as observações de outros autores, entre eles, Grappadelli e

Sansavini (1998), na qual afirmam que o local, espaçamento, forma de condução,

posição dos frutos na planta, podem gerar informações diferentes e muitas vezes

conflitantes. Deste modo é fundamental que os frutos possam ser colhidos no

mesmo estádio de maturação para permitir comparações confiáveis.

* Médias seguidas de mesma letra minúscula não diferem entre si em nível de 5% de probabilidade de erro pelo teste de Tukey Figura 6- Firmeza de polpa de pêssegos da cultivar Maciel enxertada sobre diferentes porta-enxertos. Estação Experimental/UFRGS - Eldorado do Sul - 2008.

4.2. Fitoquímicos encontrados em pêssegos da cultivar Maciel

4.2.1 Compostos fenólicos totais

Muitos dos compostos fenólicos presentes em frutas e hortaliças são

substâncias bioativas, cujas principais classes são representadas pelos flavonóides,

46

ácidos fenólicos e pelos polifenóis (KING e YOUNG, 1999; GARCIA-ALONSO et al.,

(2004). A quantificação de compostos fenólicos totais é uma estimativa do conteúdo

de todos os compostos pertencentes às classes de compostos fenólicos em uma

amostra. Pelos dados obtidos para pêssegos do CAP/UFPel (tabela 8), constata-se

que houve efeito significativo do porta-enxerto tanto na casca quanto na polpa dos

frutos da cv. Maciel. Frutos provenientes do „Flordaguard‟ apresentaram as maiores

médias quando quantificados na polpa, e na casca, as maiores médias foram para

„Okinawa‟.

Os teores médios de fenóis encontrados na polpa (152 mg EAG 100g-1) e na

casca (250,52 mg EAG 100g-1) se mostram superiores aos encontrados por Manica-

Berto (2008) com a cultivar Jubileu (103 mg EAG 100g-1 na casca e 58,76 mg EAG

100g-1 na polpa). Porém são semelhantes aos reportados por Giorgi et al. (2005) na

cultivar Suncrest, na qual encontraram variações dos valores de fenóis de 330,2 mg

EAG 100g-1(cv. Barrier 1) até 453,0 mg EAG 100g-1 (cv. GF677).

Comportamento similar ocorreu para os frutos do pomar da EE/ UFRGS, onde

o efeito do porta-enxerto também apresentou significância (tabela 8). Para esta

localidade, a análise com os frutos provenientes de „Nemaguard‟ apresentaram as

maiores médias quando determinados na polpa (148,72 mg EAG 100g-1) e para a

casca, assim como observado com os frutos provenientes da Palma, na cv. Okinawa

foram obtidas as maiores médias (216,46 mg EAG 100g-1).

Para a polpa, as maiores médias foram obtidas com as cultivares

Flordaguard, no CAP, e Nemaguard para a EE(UFRGS). Estes dois porta-enxertos

promovem crescimento vigoroso, com isto, conseguem enviar fotoassimilados de

forma mais eficiente aos frutos, aumentando a concentração de ácidos e demais

compostos que fazem parte do metabolismo secundário, contribuindo para este

valor. Isto pode ser atribuído a uma maior absorção de água e nutrientes, pois

conforme relatado por Scalzo et al. (2005), o efeito dos porta-enxertos sobre as

qualidades nutricionais dos frutos é estreitamente correlacionado com a interação

entre o porta-enxerto e a disponibilidade de água e minerais no solo.

Picolotto (2009), observou que o uso dos porta-enxertos Okinawa 1 e

Okinawa 12 com a cultivar Maciel promove um vigor considerado mediano e

insuficiente respectivamente, refletindo em um menor volume de copa, deste modo

proporcionando frutos com maior incidência a insolação, contribuindo deste modo

47

para a maior síntese destes compostos, como foi observado na casca para as duas

localidades.

Os compostos fenólicos constituem-se em moléculas do metabolismo

secundário de vegetais que tendem a serem sintetizados como forma de proteção

frente a estresses bióticos (ataque de patógenos) e abióticos (radiação ultravioleta,

seca, estresse salino) (SIMÕES et al., 2007). Por esta razão, os valores encontrados

na casca são superiores aos da polpa.

Tomas-Barberan et al. (2001) detectaram teores superiores de ácidos

hidroxicinâmicos, antocianinas e flavonóis na casca de nectarinas, de pêssegos e de

ameixas em relação à polpa. Estes autores encontraram que os teores de

fitoquímicos em casca eram geralmente de 2 a 3 vezes superiores do que na polpa.

Neste trabalho foram obtidos 1,77 e 1,57 vezes mais compostos na casca do que na

polpa para CAP/UFPel e para a EE/UFRGS, respectivamente. Kondo et al. (2002)

também relataram concentração mais elevada de compostos fenólicos na casca em

diferentes cultivares de maçã.

Os valores para compostos fenólicos em pêssegos podem ser considerados

baixos se forem comparados com as pequenas frutas como Pitanga roxa (420,8 mg

EAG 100g-1), Butiá (328,6 mg EAG 100g-1), amora cv. Xavante (731,4 mg EAG 100g-

1) e mirtilo cv. Delite (750,5 mg EAG 100g-1), conforme relatados por Jacques et al.,

(2009) entretanto, dentre as frutíferas de clima temperado, o pêssego pode ser

considerado como uma boa fonte de compostos fenólicos juntamente com a maçã

onde Sun et al. (2002), quantificaram valores de 296,3 ± 6,64 mg EAG 100g-1.

Porém, é conhecido também, que elevados teores de compostos fenólicos

constitui-se em agravante do ponto de vista do processamento, pois torna o produto

mais sensível ao escurecimento enzimático, caso tenha elevada atividade de

peroxidase e/ou polifenoloxidase (DEGL‟INNOCENTI et al., 2005).

Assim, constata-se que não somente o porta-enxerto interfere na quantidade

de fenóis, mas também fatores como a cultivar, o estádio de maturação dos frutos e

o local de cultivo.

48

Tabela 8- Fenóis totais, em casca e polpa de pêssegos da cultivar Maciel enxertada

sobre diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

Fenóis totais polpa Fenóis totais casca

Porta Enxerto (mg EAG 100g-1) (mg EAG 100g-1)

Aldrighi 130,90 ± 0,17 *c 194,05 ± 3,26 *d

Capdeboscq 145,92 ± 2,40 b 213,03 ± 8,16 c

Flordaguard 152,00 ± 3,61 a 234,81 ± 7,40 b

Nemaguard 118,81 ± 0,25 e 213,42 ± 4,63 c

Okinawa 120,91 ± 3,40 f 250,52 ± 3,66 a

Umezeiro 126,41 ± 3,10 d 210,12 ± 2,75 c

CV.(%) 1,97 2,46 * Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5% de probabilidade de erro pelo teste de Tukey. ± desvio padrão.

Tabela 9 - Fenóis totais, em casca e polpa de pêssegos da cultivar Maciel enxertada

sobre diferentes porta-enxertos. Estação Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul -2008.

Fenóis totais polpa Fenóis totais casca

Porta Enxerto (mg EAG 100g-1) (mg EAG 100g-1)

Aldrighi 134,14 ± 4,22 *b 172,79 ± 18,20 *c d

Capdeboscq 113,11 ±14,62 c 160,33 ± 7,01 d

Flordaguard 112,80 ± 7,79 c 195,53 ± 15,50 b

Nemaguard 148,72 ± 5,35 a 199,62 ± 9,02 ab

Okinawa 116,92 ± 3,17 c 216,46 ± 15,90 a

Umezeiro 133,85 ± 3,12 b 184,17 ± 5,60 bc

CV.(%) 5,95 6,87 * Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5%de probabilidade de erro pelo teste de Tukey. ± desvio padrão.

49

4.2.1.1. Compostos Fenólicos Individuais

No método por cromatografia liquida de alta eficiência (CLAE) são

quantificados apenas compostos que coincide o seu tempo de retenção com os

padrões utilizados. Com isto, de acordo com os padrões utilizados, foram

encontrados os ácidos gálico, p-hidrobenzóico, ácido caféico e ácido p-cumárico em

pêssegos da cultivar Maciel (figura 6).

Carotenóides

Minutes

0,0 2,5 5,0 7,5 10,0 12,5 15,0 17,5 20,0 22,5 25,0 27,5 30,0 32,5 35,0 37,5 40,0

mA

U

0

200

400

600

800

1000

mA

U

0

200

400

600

800

1000

galic

o

hid

roxi

benzo

ico

(cate

quin

a)

cum

arico

(cafe

ico)

epic

ate

quin

a

kaem

pfe

rol

feru

lico

querc

etin

a

Detector A (280nm)

Fenóis

ALD-casca-Palma_30uL002

Name

Figura 6 - Cromatograma de compostos fenólicos em pêssegos cv. Maciel. / com

coluna em fase reversa e detector UV (280 nm). 1: ácido gálico, 2: ácido

hidroxibenzóico, 3: ácido caféico, 4: ácido ferúlico. Fase móvel: gradiente de ácido

acético em água (1:99 v/v) e metanol com fluxo de 0,9mLmin-1- UFPEL/ Pelotas

(2009)

Para os frutos oriundos do CAP/UFPel, os porta-enxertos influenciaram

significativamente no conteúdo de todos os ácidos quantificados. A cv. Flordaguard

apresentou as maiores médias para ácido gálico na polpa (95,18 mg100g-1), sendo

que nesta, não diferiu estatisticamente da cv. Capdeboscq (tabela 9). Para a polpa,

no porta-enxerto „Umezeiro‟ foram encontradas as maiores médias para os demais

ácidos sendo eles, hidroxibenzóico, ácido caféico e ácido cumárico. Para a

50

quantificação do ácido hidroxibenzóico, o „Umezeiro‟ não diferiu de „Flordaguard‟,

assim como para o ácido cumárico, este não diferiu para do porta-enxerto

Capdeboscq, não mantendo estes parâmetros para a casca.

Na casca (tab.11) o porta-enxerto Capdeboscq apresentou efeito estatístico

significativo para o ácido gálico, apresentando a maior média em comparação aos

demais porta-enxertos. Para o ácido hidroxibenzóico os porta-enxertos Aldrighi,

Capdeboscq e Okinawa não diferiram estatisticamente entre si, porém diferiram de

Flordaguard, Nemaguard e Umezeiro. No ácido caféico os frutos provenientes de

Aldrighi, Capdeboscq, Flordaguard e Umezeiro não diferiram entre si enquanto que

para o ácido cumárico, os porta-enxertos Flordaguard e Umezeiro apresentaram as

maiores médias e efeito estatístico significativo comparado com os demais.


pêssegos da cultivar Maciel enxertada em diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

P. Enxerto Ác. gálico Ác p-hidroxibenzóico Ác. caféico Ác. Cumárico

Aldrighi 85,20 b* 57,87 bc* 0,52 cd* 3,56 b*

Capdeboscq 86,49 ab 59,08 bc 0,82 cd 3,90 a

Flordaguard 95,18 a 60,75 ab 0,48 d 3,27 c

Nemaguard 77,49 bc 52,28 c 0,88 b 3,60 b

Okinawa 61,58 d 33,96 d 0,82 bc 1,22 d

Umezeiro 73,97 c 68,03 a 1,35 a 4,04 a

CV.(%) 4,52 5,39 14,47 3,16 * Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5% de probabilidade de erro pelo teste de Tukey.


pêssegos da cultivar Maciel enxertada em diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

P. Enxerto Ác. gálico Ác. p-hidroxibenzóico Ác. cafeíco Ác. Cumárico

Aldrighi 149,20 c* 98,74 a* 1,19 a* 12,45 b*

Capdeboscq 177,64 a 89,62 a 1,33 a 0,02 c

Flordaguard 136,58 d 76,37 b 1,34 a 16,40 a

Nemaguard 122,06 e 74,64 b 0,70 b 0,01 b

Okinawa 167,29 b 94,60 a 0,54 b 0,02 c

Umezeiro 166,46 b 76,17 b 1,26 a 17,00 a

CV.(%) 2,29 3,35 11,50 12,04 * Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5%de probabilidade de erro pelo teste de Tukey.

51

Para os frutos provenientes do pomar da EE/UFRGS (tabelas 12 e 13),

obteve-se efeito significativo dos porta-enxertos para os ácidos identificados com

exceção do ácido cumárico na polpa. A cv. Nemaguard proporcionou as maiores

médias de fenóis individuais, na polpa para os três ácidos quantificados, em relação

aos demais porta-enxertos, com exceção dos frutos provenientes de „Aldrighi‟ na

qual não apresentou diferença estatística para o ácido gálico.

Os porta enxertos Flordaguard, Nemaguard e Okinawa não diferiram

estatisticamente entre si em relação ao conteúdo de ácido gálico. O porta-enxerto

Okinawa apresentou a maior quantidade de ácido hidroxibenzóico na casca;

Nemaguard apresentou a maior quantidade de ácido caféico e „Umezeiro‟ junto com

„Flordaguard‟, as maiores quantidades de ácido cumárico.

Tabela 12 - Valores quantificados de fenóis individuais (mg100g-1), em polpa de pêssegos da cultivar Maciel enxertada em diferentes porta-enxertos. Estação Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul-2008.

P. Enxerto Ác. gálico Ác. hidroxibenzóico Ác. caféico Ác. Cumárico

Aldrighi 90,67 ab* 69,66 b* 0,69 c* 3,62 ns

Capdeboscq 74,94 c 73,00 b 0,36 e 3,68 ns

Flordaguard 83,65 b 57,00 d 0,88 b 3,25 ns

Nemaguard 97,21 a 79,20 a 0,98 a 3,50 ns

Okinawa 83,98 b 65,20 c 0,57 d 2,88 ns

Umezeiro 74,40 c 70,83 b 0,36 e 3,81 ns

CV.(%) 3,09 2,04 4,67 14,25 * Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5% de probabilidade de erro pelo teste de Tukey ns.não significativo.

52

Tabela 13 - Valores quantificados de fenóis individuais (mg100g-1), em casca de pêssegos da cultivar Maciel enxertada em diferentes porta-enxertos. Estação Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul-2008.

P. Enxerto Ác. gálico Ác.p- Hidroxibenzoíco Ác. cafeíco Ác. Cumárico

Aldrighi 133,55 bc* 70,33 c* 0,41 e* 7,96 c*

Capdeboscq 118,03 c 68,32 c 0,51 cd 6,56 d

Flordaguard 161,30 a 82,22 b 0,46 de 11,00 ab

Nemaguard 171,96 a 83,51 b 0,95 a 9,00 bc

Okinawa 159,17 a 96,74 a 0,58 c 8,34 bc

Umezeiro 138,41 b 72,08 c 0,67 b 11,30 a

CV.(%) 4,45 4,02 4,85 7,48 * Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5% pelo teste de Tukey

Segundo Skrede e Wrolstaad (2002), os ácidos fenólicos mais comumente

encontrados nos frutos são os ácidos hidroxicinâmicos e hidrobenzóicos. Neste

trabalho, os hidroxicinâmicos são representados pelos ácidos caféico, cumárico e

para os ácidos hidrobenzóicos, foram quantificados os ácidos p-hidroxibenzóico e

gálico, sendo este último em maior quantidade.

O ácido gálico foi o composto majoritário na quantificação dos fenóis

individuais, estes resultados discordam de Podestá et al. (2009) que encontraram

em resíduos do raleio de pomares de ameixas (Prunus salicina) por meio de

cromatografia liquida de alta eficiência (CLAE), a presença dos ácidos gálico,

caféico, protocatecuico, siríngico, cumárico, vanilico e clorogênico, sendo este último

o ácido encontrado em maior quantidade. Esta diferença pode ser explicada pelo

estádio diferenciado de maturação das amostras e também por se tratar de espécies

diferentes pois, segundo Shahidi e Naczk (1995), a quantificação de compostos

fenólicos é influenciada pela natureza do composto, o método de extração

empregado, o tamanho da amostra, o tempo e as condições de estocagem assim

como os padrões utilizados.

53

4.2.2. Carotenóides

Os carotenóides constituem um dos mais importantes grupos de pigmentos

na natureza, devido às suas numerosas funções, larga distribuição e diversidade

estrutural (OLIVER e PALOU, 2000).

Pôde-se constatar que houve efeito do porta-enxerto, tanto para os frutos

provenientes do CAP/UFPel (fig. 7 e 8 ) quanto para os da EE/UFRGS (fig. 9 e 10).

Do mesmo modo foi observado para as partes do fruto, tanto a casca quanto a polpa

tiveram influência significativa do porta-enxerto.

Para os frutos provenientes do CAP/UFPel, as cultivares Flordaguard e

Umezeiro apresentaram os maiores conteúdos de carotenóides na casca sendo de

33,58 e 33,53 μg g-1, respectivamente. Para polpa, nas cv. Aldrighi e Okinawa

foram quantificadas as maiores médias (27,17 e 28,56 μg g-1). Os valores

encontrados para pêssegos são semelhantes aos reportados por Manica-Berto

(2008), na qual trabalhando com a variedade „Granada‟ quantificou valores médios

de 31,1 μg g-1 para casca e 19,4 μg g-1 para polpa.

Observações feitas no pomar mostraram que o porta-enxerto Umezeiro

proporciona um menor vigor na cultivar Maciel, assim como sinais alguns sinais de

incompatibilidade, como por exemplo, o engrossamento do caule e o retardo no

crescimento. Deste modo as plantas se tornam pequenas e os frutos ficam com uma

maior exposição à luz solar, favorecendo a síntese destes pigmentos na casca dos

frutos.

Para os frutos do pomar da EE/UFRGS a cv Okinawa também favoreceu a

síntese deste pigmento, porém na casca (23,66 μg g-1). Para polpa a cultivar

Capdeboscq apresentou a maior média de 17,91 μg g-1 não diferindo de Nemaguard

e Umezeiro. Remorini et al. (2008) analisando o efeito de diferentes porta-enxertos

sobre pêssegos “Flavorcrest” descreveu que o conteúdo de carotenóides foi

influenciado pelo uso dos porta-enxertos sendo os maiores valores reportados nos

porta-enxertos Ishtara, Mr. S2/5 e Barrier 1, sendo os valores máximos de 40 μg

100g-1 na polpa e 250 μg 100g-1 para a casca.

54

A composição qualitativa e quantitativa dos carotenóides é influenciada

diretamente por fatores como o genótipo, estádio de maturação, condições

climáticas, parte da fruta e condições de tratamento pós-colheita, processamento e

armazenamento (RODRIGUEZ-AMAYA, 1993; REMORINI et al., 2008).

* Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5% pelo teste de Tukey

Figura 7 - Carotenóides totais (μg g-1) presentes na casca de pêssegos da cultivar

Maciel, enxertadas sobre diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão- 2008.

55

* Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5% pelo teste de Tukey.

Figura 8- Carotenóides totais (μg g-1) presentes na polpa de pêssegos da cultivar Maciel, enxertadas sobre diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

* Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5% de probabilidade de erro pelo teste de Tukey

56

Figura 9 - Carotenóides totais (μg g-1) presentes na casca de pêssegos da cultivar

Maciel, enxertadas sobre diferentes porta-enxertos. Estação Experimental da

UFRGS – Eldorado do Sul-2008.

* Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5%de probabilidade de erro pelo teste de Tukey

Figura 10 - Carotenóides totais (μg g-1) presentes na polpa de pêssegos da cultivar

Maciel, enxertadas sobre diferentes porta-enxertos. Estação Experimental da

UFRGS - Porto Alegre-2008.

4.2.2.1. Carotenóides Individuais

Para a variável carotenóides individuais, obteve-se efeito significativo do

porta-enxerto sobre os valores quantificados.

Em pêssegos os carotenóides individuais já foram estudados por vários

pesquisadores, porém, além dos teores baixos, há divergência até do tipo de

carotenóide predominante, alguns autores relatam violaxantina (CURL, 1959;

GROOS, 1979), β-caroteno (BUREAU E BUSHWAY, 1986) e β-criptoxantina

(GEBHARDT et al., 1977), ou ambos como principais (PHILIP e CHEN, 1988). Para

os frutos provenientes tanto do CAP/UFPel e da EE/UFRGS, assim como, para a

polpa e a casca, o carotenóide predominante foi o β-criptoxantina seguido do β-

caroteno. Este resultado está de acordo com o relatado por Sentanin e Amaya

57

(2007) que, avaliando as cultivares de pêssegos Coral, Chiripá e Diamante,

obtiveram β-criptoxantina como carotenóide majoritário.

Para os frutos provenientes do CAP/UFPel, conforme se pode observar na

tabela 14, o porta enxerto Aldrighi apresentou os maiores valores na polpa para os

três carotenóides quantificados sendo 5,88 µg g-1 de β-criptoxantina, 2,0 µg g-1 de β-

caroteno e 2,5 µg g-1 de licopeno.

Na casca (tabela 15) os valores quantificados para o carotenóide β-

criptoxantina foram superiores ao da polpa, não repetindo este efeito para os demais

carotenóides, como por exemplo, para licopeno e β-caroteno.

O „Umezeiro‟ obteve as maiores médias para carotenóides totais na casca e

manteve esta condição no carotenóide majoritário (β-criptoxantina), sendo a média

de 15,50 µg g-1. Segundo Pereira et al. (1998) e Campo Dall‟orto et al. (1992), este

porta-enxerto induz a redução do vigor das plantas sobre ele enxertadas,

proporcionando uma maior exposição dos frutos a luz e como conseqüência a

síntese deste pigmento.

Nos porta-enxerto Aldrighi e Capdeboscq foram observadas as maiores

médias de β-caroteno (2,0 µg g-1). Os valores de licopeno quantificados na casca,

foram muito baixos sendo possível identificar apenas traços, para as cultivares

Nemaguard e Umezeiro.

Tabela 14 - Carotenóides individuais em polpa de pêssegos da cultivar Maciel enxertada em diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

Porta-enxerto β-caroteno (µg g-1) β-criptoxantina (µg g-1)

Licopeno ( µg g-1)

Aldrighi 2,0 a* 5,88 a* 2,50 a*

Capdeboscq 0,5 c 3,50 c 0,50 c

Flordaguard 1,0 b 3,50 c 0,50 c

Nemaguard 1,0 b 5,00 b 1,00 b

Okinawa 0,5 c 3,48 c 0,48 c

Umezeiro 1,0 b 3,50 c 0,50 c

C.V (%) 22,73 8,59 13,94 * Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5% de

probabilidade de erro pelo teste de Tukey.

58


enxertada em diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

Porta-enxerto β-caroteno (µg g-1) β-criptoxantina

(µg g-1) Licopeno( µg g-1)

Aldrighi 2,00 a* 9,28 d* 0,5 a*

Capdeboscq 2,00 a 11,33 c 0,5 a

Flordaguard 0,48 c 11,50 c 0,5 a

Nemaguard 1,53 b 14,20 b tr. b

Okinawa 0,48 c 9,28 d 0,5 a

Umezeiro 0,48 c 15,50 a tr. b

C.V(%) 8,1 2,0 3,87 * Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5% pelo

teste de Tukey tr.:traços

Os valores obtidos com os frutos da EE/UFRGS indicam que o porta-enxerto

Flordaguard proporcionou os maiores teores de β-caroteno na polpa (tabela 16)

com média de 1,50 µg g-1. Para o carotenóide β-criptoxantina as maiores médias

foram identificadas sob efeito do „Capdeboscq‟, com valor de 5,53 µg g-1. Para o

carotenóide licopeno, na polpa, não foi observado efeito significativo do porta-

enxerto.

Na casca (tab.17) com o porta-enxerto „Umezeiro‟ obteve-se diferença

significativa sobre os demais para o carotenóides β-caroteno (5,0 µg g-1) e os porta

enxertos Flordaguard e Okinawa não diferem significamente para os valores de β-

criptoxantina (14,5 e 15,00 µg g-1, respectivamente). Os dados obtidos com o

carotenóide licopeno indicam que porta-enxerto Capdeboscq proporcionou as

maiores médias (1,0 µg g-1).

Os valores para β-caroteno encontrados nos dois locais (CAP/UFPel e

EE/UFRGS) estão abaixo dos apresentados por Souza et al., (2004) em pêssegos

oriundos da região de Viçosa-MG, cujo os valores foram de 2,72 a 3,10 µg g-

1.Entretanto concordam com os reportados por Rodriguez-Amaya (1999) em

pêssegos oriundos de São Paulo sendo os valores entre 0,6 a 1,2 µg g-1 .Com o

caroteno β-criptoxantina, os dados são semelhantes aos identificados por Sentanin

e Amaya (2007) na qual quantificaram valores médios de 6,4 µg g-1 de β-

criptoxantina com a cultivar de pêssego Diamante que, assim como a cv. Maciel

apresenta polpa amarela.

59


enxertada em diferentes porta-enxertos. Estação Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul – 2008.

Porta-enxerto β-caroteno (µg g-1) β-criptoxantina (µg g-1) Licopeno( µg g-1)

Aldrighi 0,51 c* 2,01 d* 0,51 ns

Capdeboscq 1,00 b 5,53 a 0,50

Flordaguard 1,50 a 3,60 c 0,53

Nemaguard 0,50 c 4,16 bc 0,51

Okinawa 0,16 c 1,96 d 0,51

Umezeiro 0,51 c 4,36 b 0,51

CV.(%) 15,37 5,19 6,51 * Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5% de probabilidade de erro pelo teste de Tukey ns: não significativo ao teste de tukey a 0.05%.

Tabela 17 - Carotenóides individuais em casca de pêssegos da cultivar Maciel enxertada em diferentes porta-enxertos. Estação Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul- 2008.

Porta-enxerto β-caroteno (µg g-1)

β-criptoxantina (µg g-1) Licopeno( µg g-1)

Aldrighi 1,05 b* 11,10 c* 0,50 b*

Capdeboscq 1,05 b 7,00 d 1,00 a

Flordaguard 0,55 b 14,50 a 0,49 b

Nemaguard 1,05 b 13,00 b 0,50 b

Okinawa 0,50 b 15,00 a 0,49 b

Umezeiro 5,00 a 10,50 c 0,.50 b

CV.(%) 3,46 3,61 4,91 * Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5% pelo teste de Tukey

60

Carotenóides

Minutes

0,0 2,5 5,0 7,5 10,0 12,5 15,0 17,5 20,0 22,5 25,0 27,5 30,0 32,5 35,0 37,5 40,0

mA

U

-0,25

0,00

0,25

0,50

0,75

1,00

1,25

1,50

1,75

2,00

2,25

mA

U

-0,25

0,00

0,25

0,50

0,75

1,00

1,25

1,50

1,75

2,00

2,25

lute

ina

b-c

ripto

xantina

licopeno

b-c

aro

teno

Detector A (450nm)

carotenóides

Cap-Palma-Casca_30uL001

Name

Figura 11 - Cromatograma típico da separação de carotenóides em pêssegos cv.

Maciel via CLAE, com coluna de fase reversa C18 e detector UV a 280nm, tendo

como fase móvel um gradiente com metanol, acetonitrila e acetato de

etila.UFPel/2009.

4.2.3. Capacidade antioxidante

De acordo com os dados, pode-se observar que a casca apresentou os

maiores valores para a capacidade antioxidante. Para os pêssegos das duas

localidades e para cada parte do fruto (polpa e casca), encontrou-se efeito

significativo dos porta-enxertos (tabelas 18 e 19).

Para os pêssegos do CAP/UFPel (tabela 18), quando analisado a polpa dos

frutos, a cultivar Nemaguard embora apresentando a maior média (9,91mg TEAC

100g –1), não diferiu das demais cultivares com exceção da „Okinawa‟ . Na casca

observou-se que os porta-enxertos Nemaguard (28,54mg TEAC100g–1) com a maior

média, não diferiu de „Umezeiro‟ (26,66mg TEAC100 g –1) e „Aldrighi‟ (27,05mg

TEAC100 g –1 ).

Para os frutos da EE/UFRGS (tab.19), com o „Umezeiro‟ encontrou-se as

maiores médias para esta variável (19,48 mg TEAC 100g-1) na casca, enquanto que

na polpa „Nemaguard‟ e „Aldrighi‟ obtiveram médias de 10,47 e 9,21mgTEAC100g-1,

respectivamente.

61

Observa-se que o porta-enxerto „Nemaguard‟ possui as maiores médias para

casca e polpa nos frutos do CAP/UFPel e na polpa para os frutos da EE/UFRGS.

Segundo Scalzo et al. (2005), porta-enxertos com elevada afinidade, ampla

adaptabilidade às diferentes condições e que conferem um maior vigor na planta ou

pelo maior desenvolvimento de dossel ou de raízes proporcionam frutos com

maiores valores de capacidade antioxidante, efeito este que pode ter ocorrido com

esta cultivar nos dois locais.

Observações semelhantes foram feitas por Giorgi et al. (2005), os quais

acompanharam a produção, a qualidade e a nutrição de frutos de pêssegos cv.

Suncrest enxertada nos porta-enxertos „GF677‟, „Barrier 1‟, „Junior‟ e „Citation‟,

verificaram que o porta-enxerto afetou significativamente a capacidade antioxidante,

sendo o porta-enxerto „Junior‟ o que proporcionou os maiores valores (1,98 Eq

trolox/g).

Os valores encontrados para a atividade antioxidante estão abaixo dos

quantificados por Manica-Berto (2008) que obteve valores de 12,2 mg TEAC 100g-1

para a casca e 11,8mg TEAC 100g-1 para a polpa em pêssegos com a cultivar

Jubileu. Segundo Frankelo (1993); Madsem e Bertlesen (1995), os valores da

capacidade antioxidantes dos vegetais é amplamente influenciado por fatores

genéticos, condições ambientais, além do grau de maturação, variedade da planta e

ainda pelo solvente utilizado e a técnica de extração empregados.

Tabela 18- Capacidade antioxidante com tempo de reação em 30 minutos, expressa em equivalente Trolox (mg TEAC 100g-1), em polpa e casca de pêssegos cv. Maciel enxertados em diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

Porta-enxerto DPPH 30 min (polpa) DPPH 30 min (Casca)

Aldrighi 7,83 ± 0,50 ab* 27,05 ± 1,70 ab*

Capdeboscq 9,48 ± 0,76 a 22,85 ± 2,93 bc

Flordaguard 8,63 ± 1,45 a 18,33 ± 0,98 c

Nemaguard 9,91 ± 1,72 a 28,54 ± 7,71 a

Okinawa 6,02 ± 2,24 b 17,65 ± 1,42 c

Umezeiro 8,65 ± 1,61 a 26,66 ± 3,73 ab

C.V.(%) 17,5 16,28 * Médias seguidas de mesma letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5%de probabilidade de erro pelo teste de Tukey. ± desvio padrão.

62

Tabela 19- Capacidade antioxidante com tempo de reação em 30 minutos, expressa em equivalente Trolox (mg TEAC 100g-1), em polpa e casca de pêssegos cv. Maciel enxertados em diferentes porta-enxertos. Estação Experimental da UFRGS - Porto Alegre-2008.

Porta-enxerto DPPH 30 min (polpa) DPPH 30 min (Casca)

Aldrighi 9,21 ± 1,66 ab* 15,64 ± 3,42 b*

Capdeboscq 8,32 ± 0,96 b 13,17 ± 1,61 bc

Flordaguard 8,70 ± 1,40 b 14,95 ± 0,60 bc

Nemaguard 10,47 ± 1,43 a 11,87 ± 0,06 c

Okinawa 8,11 ± 0,88 b 16,24 ± 3,66 b

Umezeiro 8,23 ± 0,07 b 19,48 ± 1,42a

CV.(%) 13,4 14,72 * Médias seguidas de mesma, letra minúscula na coluna não diferem entre si em nível de 5% de probabilidade de erro pelo teste de Tukey. ± desvio padrão.

4.2.4. Correlações entre os fitoquímicos

A análise de correlação entre os fitoquímicos permite determinar a

contribuição de cada composto bioativo na capacidade antioxidante.

Observa-se que os frutos das duas localidades, apresentaram uma correlação

fraca e negativa para a análise da casca (-0,56) (tabela 20) e, para a polpa dos

frutos provenientes da EE/UFRGS a correlação foi fraca e positiva (r=0,38) (tabela

21).

Alguns autores têm demostrado de forma conclusiva que existe uma forte

relação positiva entre o teor de fenóis totais e a capacidade antioxidante das frutas

(VILSON et al., 1998; VELIOGLU et al., 1998; KAUR e KAPOOR, 2002; ABDILLE et

al, 2005), enquanto que outros autores não têm evidenciado esta correlação

(KAHKONEN et al., 1999; ISMAIL et al., 2004; REYNERTSON et al., 2008). Além da

presença de outros fitoquímicos, a estrutura química do componente ativo tem

influência sobre a eficácia do antioxidante natural, uma vez que a posição e o

63

número de hidroxilas presentes na molécula dos compostos fenólicos é um fator

relevante para esta atividade (MELO et al., 2008)

Trabalho realizado por Silva (2007) com 11 variedades de pêssegos, sendo

elas: Jade, Maciel, Leonense, Eldorado, Coral, Ametista, Ágata, Chiripá, Esmeralda,

Sensação e Olímpia, na região de Pelotas, também encontrou baixa correlação

(0,26) entre o poder antioxidante-DPPH e conteúdo de fenóis totais. Porém Gil et al.

(2002), encontraram em pêssegos uma correlação positiva entre o conteúdo de

fenóis e poder antioxidante na casca (0,89) e na polpa (0,87) de pêssegos.

Segundo Vizzotto et al., (2008) acredita-se que a atividade antioxidante

envolve compostos não identificados ou quantificados nas determinações de

compostos fenólicos. Muitos outros compostos como vitaminas, carotenóides e

outros fenólicos, podem ser os responsáveis pela atividade antioxidante. Assim a

capacidade antioxidante de uma amostra não pode ser explicada apenas com base

em seu teor de fenólicos totais, a caracterização da estrutura dos compostos,

também é necessária (HEINONEN et al., 1998).

Com relação às correlações com carotenóides, na literatura pode-se

encontrar citações onde a contribuição de compostos fenólicos para a atividade

antioxidante é mais importante que a contribuição dos carotenóides (GIL et al., 2002;

KIM et al., 2003). Fato este encontrado nesta correlação na qual na casca os

carotenóides não apresentaram efeito significativo e para polpa o efeito foi

significativo porém negativo (-0,45) (tab.19 e 20). Segundo Melo et al. (2008), os

carotenóides, assim como o ácido ascórbico e outros polifenóis, podem contribuir de

forma sinérgica ou antagonicamente com a capacidade antioxidante dos frutos.


1),conteúdo de fenóis totais (mg EAG 100g-1) e de carotenóides totais (μg.g-1) em casca e polpa de frutos da cultivar Maciel, enxertadas em diferentes porta-enxertos. Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

Atividade antioxidante Fenóis Carotenóides

DPPH(TEAC) Casca -0,56* ns

DPPH(TEAC) polpa ns -0,45* *e

ns coeficiente significativo e não significativo, respectivamente (p≤0,01).

64


1), conteúdo de fenóis totais (mg EAG 100g-1) e de carotenóides totais (μg.g-1) em casca e polpa de frutos da cultivar Maciel, enxertadas em diferentes porta-enxertos. Estação Experimental da UFRGS - Porto Alegre-2008.

Atividade antioxidante Fenóis Carotenóides

DPPH(TEAC) Casca -0,56* ns

DPPH(TEAC) polpa 0,38* ns *e

ns coeficiente significativo e não significativo, respectivamente (p≤0,01).

65

5. Conclusões

Com base nos resultados obtidos, conclui-se:

- que os porta-enxertos afetam de forma indireta alguns parâmetros físico-

químicos e fitoquímicos de frutos de pessegueiro;

- para os parâmetros físico-químicos, a combinação Nemaguard/Maciel tornou

os frutos mais ácidos e a combinação Aldrighi/Maciel proporcionou frutos mais

firmes no pomar da Palma;

- o conteúdo de compostos fenólicos, e de carotenóides assim como a

capacidade antioxidante tem influência significativa dos porta-enxertos, sendo os

maiores valores encontrados nas cascas dos frutos;

- Nos porta-enxertos Nemaguard e Flordaguard foram encontrados os maiores

conteúdos de compostos fenólicos na polpa dos frutos;

- o composto fenólico majoritário encontrado em pêssegos „Maciel‟ foi o ácido

gálico;

- na caracterização dos carotenóides individuais, de todos os porta enxertos em

ambas as localidades, foram identificados os compostos criptoxantina, licopeno e β-

caroteno, sendo que a criptoxantina foi o composto encontrado em maior

quantidade;

- Os frutos provenientes do porta-enxerto Nemaguard apresentaram os maiores

valores para a capacidade antioxidante comparadas com os demais porta-enxertos.

- As correlações entre conteúdo fenólicos e carotenóides com a capacidade

antioxidante se mostraram fracas e negativas respectivamente.

66

6. Referências

ABIDILLE, M.D.H.; SINGH, R.P.; JAYAPRAKASHA,G.K.; JENA, B.S. Antioxidant activity of the extracts from Dillenia indica fruits. Food Chemistry, Washington, v. 90, p. 891-896, 2005. AL–JALEEL, A.; ZEKRI, M.; HAMMAM, Y. Yield, fruit quality, and tree health of 'Allen Eureka' lemon on seven rootstocks in Saudi Arabia. Journal of the American Society for Horticultural Science, Alexandria, v.105, p. 457–465, 2005

ARAÚJO, J. M. Química de Alimentos: teoria e prática, 3ª ed., Editora UFV, 2004.

478 p. ARENA, E.; FALLICO, B.; MACCARONE, E. Evaluation of antioxidant capacity of blood orange juices as influenced by constituents, concentration process and storage. Food Chemistry, v. 74, p. 423-427, 2001. ARNOUS, A.et al. Correlation of pigment and flavanol content with antioxidant properties in selected aged regional wines form Greece. Journal of Food Composition and Analysis, Orlando, v.15, p. 655-665, 2002. AWAD, M. Fisiologia pós-colheita de frutos. São Paulo: Nobel, 1993. 111 p.

BARBOSA, W.; CAMPO DALL‟ORTO, F.A.; OJIMA, M. Comportamento vegetativo e reprodutivo de Tropical: pêssego bem precoce do planalto paulista. Campinas:

Instituto Agronômico, 1990. 22p. (Boletim Científico, 21).

BLEINROTH, E. W. SIGRIST, J. M.M.; ARDITO, E.DE F. G. Tecnologia de pós-colheita de frutas tropicais. 2ª ed. rev. Campinas: ITAL, 203p.(manual técnico n.9),

1992. BRAND-WILLIAMS, W.; CUVELIER, M. E.; BERSET, C. Use of free radical method to evaluate antioxidant activity. Lebensmittel-Wissenschaft und-Technologie, v.

22, p. 25-30,1995. BRASIL. Resolução n° 19 de 30 de abril de 1999. Aprova o Regulamento Técnico de Procedimentos para Registro de Alimento com Alegação de Propriedades Funcionais e ou de Saúde em sua Rotulagem. Diário Oficial da União. Disponível em: <http://e-legis.bvs.br/leisref/public/search.php> Acesso em: 17 de junho de 2009. BURNS, J. Extraction of phenolics and changes in antioxidant activity of red wines during vinification. Journal Agric. Food Chemistry, v.49, p. 5797-5808, 2001

http://e-legis.bvs.br/leisref/public/search.php

67

BUREAU, J. L.; BUSHWAY, R. J. HPLC determination of carotenoids in fruits and vegetables in the United States. Journal Food Science, v. 51, n.1, p. 128-130,

1986. CAMPO DALL'ORTO, F.A.; OJIMA, M.; BARBOSA, W.; MARTINS, F.P. O nanismo do pessegueiro induzido pela enxertia no damasqueiro–japonês. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, v. 27, n. 3, p. 517–521, 1992. CAMPO–DALL'ORTO, F.A.; OJIMA, M.; BARBOSA, W.; TOMBOLATO, A.F.C.; RIGITANO, O., ALVES, S. Cultivo de seleções de pessegueiros precoces no sistema de pomar compacto com poda drástica anual de renovação da copa. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, v.19, n. 6, p. 719–727, 1994.

CAMPOS, R.V.D. Estabelecimento e multiplicação e enraizamento in vitro de porta-enxerto de Prunus spp. Pelotas, 2005. 67 f. Dissertação (Mestrado em Agronomia) – Universidade Federal de Pelotas, 2005. CARUSO, T., GIOVANNINI, D., INGLESE, P., TURCI, E.,. Rootstock influence on dry matter and nutrient above-ground content and partitioning in Maravilha peach trees. In: Proceedings of the Second International Symposium on Diagnosis of Nutritional Status of Deciduous Fruit Orchards, San Michele all‟Adige (Tn), September, p. 13–17, 1996b. CARUSO, T.et al. Effetto Del portinnesto sul contenuto di elementi minerali, di zuccheri e di acidi organici Nei fruti della cultivar extraprecoce di pesco Maravilha. In: CONVENGO PESCHICOLO, XXI, 1993, Cesena. Atti... Cesena: Regione Emilia-Romagna (BO) e Società Orticola Italiana (FI), 1995. p.147 – 157. CERUTTI, P. A. Oxidant stress and carcinogenesis. European Journal of Clinical Investigation, Oxford, v. 21, n. 1, p.1-5, 1991. CEVALLOS-CASALS, B.A., BYRNE, D., OKIE, W.R.; CISNEROS-ZEVALLOS, L.. Selecting new peach and plum genotypes rich in phenolic compounds and enhanced functional properties. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 96, 273–280, (2006). CHALMERS, D. J., MITCHELL, P. D., VAN HEEK, L. Control of peach tree growth and productivity by regulated water supply, tree density and summer pruning. Journal of American Society of Horticultural Science, v. 106, p. 307–312, 1981.

CHITARRA, M.I.F.; CHITARRA, A.B. Pós-colheita de frutos e hortaliças: fisiologia

e manuseio. Lavras: ESAL/FAEPE, 735 p. 2005. CRISOSTO, H.C.; JOHSON, R.S.; DEJONG, T. Orchard factors affecting postharvest stone fruit quality. HortSciense, v. 32, n. 5, p. 820-823, 1997.

CUNHA JUNIOR, L.C.; DURIGAN, M.F.B.; MATTIUZ, B.; MARTINS, R.N. DURIGAN, J.F. Caracterização da curva de maturação de pêssegos Aurora-1 na região de Jaboticabal- SP. Revista Brasileira de Fruticultura, Jaboticabal, v. 29, n. 3, p. 661-

665, 2007.

68

CURL, A. L. The carotenoids of cling peaches. Food Research v. 24, n. 4, p. 413-

422, 1959. DAREZZO, H.M. Conservação pós-colheita de pêssegos ‘Aurora-’ e ‘Biuti’ acondicionados em diferentes embalagens e armazenados sob condições de ambiente e refrigeração. 1998. 129f. Dissertação (Mestrado em Produção Vegetal). Universidade Estadual Paulista, Faculdade de Ciências Agrárias e Veterinárias, Jaboticabal, 1998. DEGL‟INNOCENTI, E.; GUIDI, L.; PARDOSSI, A.; TOGNONI, F. Biochemical study of leaf browning in minimally processed leaves of lettuce (Lactuca sativa L. var. acephala). Journal of Food Science, v.53, p.9980–9984, 2005. DI VAIO, C., BUCCHERI, M., GRAZIANI, G., RITIENI, A., SCALFI, L., 2001. Attivita` antiossidante di frutti di pesco (cv. Maycrest). Rivista di Frutticoltura e di Ortofloricoltura, vol. 7–8. Edagricole, Bologna, p. 83–86 DIPLOCK, A.T; AGGETT, P.J; ASHWELL, M; BORNET, F.; FERN, E.B.; ROBERFROID, M.B. Scientific concepts of functional foods in Europe: consensus document. British Journal of Nutrition, v. 88, p.1-27, 1999

DROGOUDI, PAVLINA; TSIPOURIDIS, CONSTANTINOS GR. Effects of cultivar and rootstock on the antioxidant content and physical characters of clingstone peaches.

Scientia Horticulturae v. 115, p. 34–39, 2007.

EREZ, A.; FLORE, J.A. The quantitative effect of solar radiation on 'Redhaven' peach fruit skin color. HortScience, v.21, n.6, p.1424-6, 1986. FACHINELLO, J.C. Problemática das mudas de plantas frutíferas de caroço. In: SIMPÓSIO INTERNACIONAL DE FRUTAS DE CAROÇO: PÊSSEGOS, NECTARINAS E AMEIXAS, 1., 2000, Porto Alegre. Anais. Porto Alegre: UFRGS, 2000. p. 25-40. FAOSTAT – Disponível em< http:faostat.fao.org> acesso em 31 de janeiro de 2010. FENNEMA, O.R. Química de los alimentos, 2ª. ed., Editora. ACRIBIA, S. A.,

ZARAGOZA, Espanha, 2000. 1258p. FILHO, S.; PEREIRA, A.P.S.; BAYMA, J.C. Aleloquímico produzido pela gramínea forrageira Brachiaria humidicola. Planta Daninha, v. 23, n. 1, 2005.

FINARDI, N. L. Método de propagação e descrição de porta-enxertos. In: MEDEIROS, C. A. B.; RASEIRA, M. C. B. (Ed.). A cultura do pessegueiro. Pelotas: EMBRAPA/CPACT, 1998. p. 100-128. FORNER–GINER, M.A.; ALCAIDE, A.; PRIMO–MILLO, E.; FORNER, J.B. Performance of 'Navelina' orange on 14 rootstocks in Northern Valencia (Spain).

69

Journal of the American Society for Horticultural Science, Alexandria, v.98, p.223–232, 2003 FRANCO, G. Tabela de composição química de alimentos. 9. ed. Rio de Janeiro:

Atheneu, 2006. 307p. FRANKEL, E.N. In search of better methodos to evaluate natural antioxidant and oxidative stability in food lipids. Trends in Food Sciensce & Technology, v.4,

p.220-225, 1993 GARCIA-ALONSO, M.; PASCUAL-TERESA, S.; SANTOS BUELGA, C.; RIVAS-GONZALO, J.C. Evaluation of the antioxidants properties of fruits. Food Chemistry, v.84, p. 13-18, 2004. GARCIA-CLOSAS, R.; GONZALEZ, C. A.; AGUDO, A.; Intake of specifics carotenoids and flavonoids and the risk of gastric cancer in Spain. Cancer Causes and Control, v.10, p. 71-75, 1999. GEBHARDT,S. E.; ELKINS,E.R.: HUMPHREY,J. Comparison of two methods for determining the vitamin A values of Clingstones peaches. Journal of Agricultural and Food Chemistry. V.25. n.3. 629-632. 1977. GENOVESE, M. I.; DA SILVA M. P.; DE SOUZA, A. E. S. G.; LAJOLO, F. M. Bioactive compounds and antioxidant capacity of exotic fruits commercial frozen pulps from Brazil. Food Science and Technology International, v. 4, n. 3, p. 207-214, 2008. GIADA, M. L. R.; MANCINI FILHO, J. Importância dos compostos fenólicos da dieta na promoção da saúde humana. Publicatio UEPG Ciencias Biologicas e da Saude, v. 12, n. 4, p. 7-15, 2006. GIL, M.I., TOMAS-BARBERAN, F.A., HESS-PIERCE, B. KADER, A.A. Antioxidant capacities, phenolic compounds, carotenoids and vitamin C contents of nectarine, peach and plum cultivars from California. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 50, p. 4976–4982, 2002. GIORGI, M.; CAPOCASA, F.; SCALZO, J.; MURRI, G.; BATTINO, M.; MEZZETTI, B. The rootstock effects on plant adaptability, production, fruit quality, and nutrition in the peach (cv. „Suncrest‟) Scientia Horticulturae, , Amsterdam, n. 107, p. 36–42, 2005. GODOY, H. T.; RODRIGUEZ-AMAYA, D. B. Occurrence of cis-isomers of provitamin A in Brazilian fruits. Journal of Agricultural and Food Chemistry., v. 42, n. 6, p. 1306-1313, 1994. GRAPPADELLI, L.C.; SANSAVINI, S. Forme di ellevamento, efficienza degli impianti e qualità delle pesche. In: Sansavini, S.; Errani, A. Frutticoltura ad alta densità – Impianti, forme di allevamento, e tecniche di potatura. Bologna. Ed. Edagricole. 1998. p. 191-235

70

GROSS, J. Carotenoid changes in the mesocarp of the Redhaven peach (Prunus Persica) during ripening. Z. Pflanzenphysiol.,v. 94, n. 5, p. 461-468, 1979.

GUIDONI, S. et al. Influenza di nuovi portinnesti sullo sviluppo fogliare e sulle prime fruttificazioni del pesco cv. “Suncrest”. Rivista di Frutticoltura e Ortofloricoltura, Bologna, n. 4, p. 77-81, 1998. HÄKKINEN, S. H.; KÄRENLAMPI, S. O.; HEINONEN, M.; et al. HPLC Method for Screening of Flavonoids and Phenolic Acids in Berries. Journal Science Food Agricultural, v. 77, p. 543-551, 1998.

HALLIWELL, B.; GUTTERIDGE, J. M. C. Free radicals in biology and medicine. 3ª

ed. Claredon, Oxford, 2000. LEONTOWICZA, H.; GORINSTEINB S; LEONTOWICZA A.L.M.; , MILAN R.S.F., PARKD. Y.S, JUNGE S.T.; TRAKHTENBERGF. S., MARTIN-BELLOSOG, O. Comparative content of some bioactive compounds in apples, peaches and pears and their influence on lipids and antioxidant capacity in rats Journal of Nutritional Biochemistry. v. 13, p. 603–610, 2002. HERTER F.G.; TONIETO, J.; WREGE, M. Sistema de Produção de Pêssego de Mesa na Região da Serra Gaúcha. Embrapa Uva e Vinho, Sistema de Produção ,3. ISSN 1678-8761 Versão Eletrônica Jan/ 2003. Disponível em http://sistemasdeproducao.cnptia.embrapa.br/FontesHTML/Pessego/PessegodeMesaRegiaoSerraGaucha/index.htm .Acesso em 31 nov. 2009.

HOFFMANN, A.; NACHTIGAL, G.R.; BERNARDI, J. Sistema de produção de pêssegos de mesa na região da Serra Gaúcha. Disponível em

<http://www.embrapa.cnpuv.br > Acesso em 21 dez. 2009.

HUNTER, R.S.; HAROLD, R.W. The measurement of appearance. New York: Wiley-Interscience, 1987. IBGE – Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística. Disponível em <http://www.ibge.gov.br> Acesso em 10 jan. 2010. ISCI, A.; DEMIRER, G. N. Biogas producyion potential from cotton wastes. Renewable Energy, v. 32, p. 750–757, 2007.

ISMAIL, A.; MARJAN, Z.M.; FOONG, C.W. Total antioxidant activity and phenolic content in selected vegetables. Food Chemistry, v. 87, p. 581-586, 2004. JACQUES, A.C.; PERTUZATTI, P.B.; BARCIA, M.T. ZAMBIAZI, R.C. Compostos Bioativos em pequenas frutas cultivadas na região sul do Estado do Rio Grande do Sul. Brazilian Journal of Food Technology., v. 12, n. 2, p. 123-127, 2009

http://www.embrapa.cnpuv.br/

http://www.ibge.gov.br/

71

JU, Z.; DUAN, Y.; JU. Z. Coloration potential, anthocyanin accumulation and enzyme activity in fruit of commercial apple cultivars and their F1 progeny. Scientia Horticulture, Amsterdam, v. 79, p. 39-50, 1999. KADER, A.A. Postharvest technology of horticultural crops. California: University of California, 2002. 3ª ed. p. 535.

KAHKONEN, M.P.; HOPIA, A.I.; VUORELA, H.J.; RAUHA, J-P.; PIHLAJA, K.; KUJALA, T.S.; HEINONEN, M. Antioxidant activity of plan extracts containing phenolic compounds. Journal of Agricultural Food and Chemistry, Washington, v.

47, p. 3954-3962, 1999

KAUR,C.; KAPOOR,H.C. Anti-oxidant activity and total phenolic content of some Asian vegetables. Int. Journal Food Science Technology., Oxford, v. 37, p. 153-

161, 2002.

KING, A. R.D.; YOUNG, G. E.de D. Characteristics and occurrence of Phenolic phytochemicals. Journal of American Dietetic Association, v. 99, n. 2, p. 213-218,

1999. KLUGE, R. A.; NACHTIGAL, J. C.; FACHINELLO, J. C.; BILHALVA, A. B. Fisiologia e manejo pós-colheita de frutas de clima temperado. Pelotas: Editora UFPel,

1997, p. 163. KIM, D.O.; JEONG, S.W.; LEE, C.Y. Antioxidant capacity of phenolic phytochemicals from various cultivars of plums. Journal of Agricultural Food and Chemistry.

Washington, v.81, p.321-326, 2003. KIM,D.O.; LEE, K. W.; LEE, H. J.; LEE, C. Y. Vitamin C equivalent antioxidant capacity (VCEAC) of phenolics phytochemicals. Journal of Agricultural Food and Chemistry, Washington, v. 50, p. 3713-3717, 2002. KONDO, S.; TSUDA, K.; MUTO, N.; UEDA, J. Antioxidative activity of apples skin or flesh extracts associated with fruit development on selected apple cultivars. Scientia Horticulturae, v.96, p.177–185, 2002. KRAMER, A. Fruits and Vegetables. In: TWIGG, B. A. Quality control for food industry. Connecticut: AVI Publishing Company, 1973. v. 2, p. 157-227.

LEE, S.K; KADER, A.A. Preharvest and postharvest factors influencing vitamin C content of horticultural crops. Postharvest Biology and Technology, v. 20, p. 207–220; 2000. LIMA, L. C. de O. Tecido esponjoso em manga ‘Tommy Atkins‟: transformações químicas e bioquímicas no mesocarpo durante o armazenamento. 1997. 147 f. Tese (Doutorado em Ciência dos Alimentos) – Universidade Federal de Lavras, Lavras, 1997.

72

LIMA, V.L.A.G.; MÉLO, E.A.; MACIEL, M.I.S.; PRAZERES, F.G.; MUSSER, R.S.; LIMA, D.E.S. Total phenolic and carotenoid contents in acerola genotypes harvested at three ripening stages. Science direct. p. 565-568; 2005. LORETI, F. Porta-enxertos para a cultura do pessegueiro do terceiro milênio. Revista Brasileira de Fruticultura, v. 30, p. 274-284, 2008.

LORETI, F.; MASSAI, R. II contributo dell‟Università di Pisa al miglioramento genético dei portinnesti. Rivista di Frutticoltura e Ortofloricultura. Bologna, n. 4, p. 9-13, 1998. MACHADO, A.; CONCEIÇÃO, A. R. Programa estatístico WinStat Sistema de Análise Estatístico para Windows. Versão 2.0. Pelotas: UFPel, 2002. MADSEN,H.L.; BERTELSN, G. Spices as antioxidants. Trends in Food Sciensce and Technology, v. 6, p. 271-277, 1995.

MALACRIDA, C.R.; MOTTA, S. da. Antocianinas em suco de uva: Composição e estabilidade. B. Ceppa, v. 21, n. 1, p. 59-82, 2006. MATHIAS, C., MAYER, N.A., MATTIUZ,B.H., PEREIRA, F.M., Efeito de porta–enxertos e espaçamentos entre plantas na qualidade de pêssegos 'Aurora–1'. Revista Brasileira de Fruticultura. vol. 30, n. 1 Jaboticabal, 2008. MANACH, C. Polyphenols: food sources and bioavailability. American Journal of Clinical Nutrition, v. 79, n. 5, p. 727-747, 2004.

MANICA-BERTO, R. Influência da interenxertia e dos sistemas de condução nas propriedades funcionais do pêssego. 2008. 50f. Dissertação (Mestrado) – Universidade Federal de Pelotas, Pelotas. MAYER, N. A., PEREIRA, F.M., BARBOSA, J. C. Pegamento e crescimento inicial de enxertos do pessegueiro 'Aurora-1' em clones de umezeiro (Prunus mume Sieb. et Zucc.) e 'Okinawa' [Prunus persica (L.) Batsch] propagados por estacas herbáceas. Revista Brasileira Fruticultura, Jaboticabal, v. 27 n. 1. 2005 MEDEIROS, C.A.B.; RASEIRA, M.C.B. A cultura do pessegueiro. Brasília: Embrapa, 1998. p. 350. MELO, E. A.; MACIEL, M. I. S., DE LIMA, V. L. A. G.; NASCIMENTO, R. J. Capacidade antioxidante de frutas. Revista Brasileira de Ciências Farmacêuticas, v. 44, p. 193-201, 2008. MINOLTA. Precise color communication. Ramsey: Minolta, 1994

MIGNANI, I.; BASSI, D. Maturazione e qualità delle albicocche: influenza Del portainesto. Rivista di Frutticoltura e Ortofloricultura. Bologna, n.4, p. 34-39, 2000.

73

MONTES, S.M., BOLIANI, A.C., RAGA, A., SANTOS, P.C., CORRÊA, L.S., FERRARI, J.T. Características produtivas, físicas e químicas de frutos de cultivares de pessegueiros sobre dois porta-enxertos no oeste do estado de São Paulo. Revista Brasileira de Fruticultura, Jaboticabal - SP, v. 30, n. 4, p. 1065-1070,

2008. NACZK, M.; SHAHIDI, F. Extraction and analysis of phenolics in food. Journal Chromatografy; 1054 (1/2): p. 95-111, 2004.

NAVARRO, J.M.; FLORES, P.; GARRIDO, C.; MARTINEZ, V. Changes in the content of antioxidant compounds in pepper fruits at different ripening stage, as affected by salinity. Food Chemistry, v. 96, p. 66–73, 2006.

NAVES, M.M. V. Beta-caroteno e câncer. Revista de Nutrição, Campinas, v. 11, n.

2, p. 99-115, 1998. OLIVER, J.; PALOU, A. Chromatographic determination of carotenoids in foods. Journal chromatography. Amsterdam, v. 881, p. 543-555, 2000.

PELEG H, BODINE KK, NOBLE AC. The influence of acid on adstringency of alum and phenolic compounds. Chemistry Senses; v. 23. p. 371-378, 1998 PEREIRA, F.M.; MAYER, N.A. Pessegueiro: tecnologias para a produção de mudas. Jaboticabal: Funep, p.65, 2005.

PEREIRA,F.M. Propagação vegetativa do umezeiro (Prunus x Mume) por meio de estacas herbáceas. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE FRUTICULTURA, XV, 1998, Poços de Caldas. Anais...Lavras: UFLA,1998.p.81.

PHILIP, T.; CHEN, T. S. Development of a method for the quantitative estimation of provitamin A carotenoids in some fruits. Journal. Food Science., v. 53, n. 6, p.

1703-1706, 1988. PICOLOTTO, L. Avaliação Bioagronomica de diferentes porta-enxertos para pessegueiro (Prunus pérsica(L.) Batsch). 2009. 114p. Tese (Doutorado) –

Universidade Federal de Pelotas, Pelotas. PICOLOTTO, L.; MANICA-BERTO, R.; PAZIN, D.; PASA, M.; SCHIMITZ, J.D.; PREZOTTO, M.E.; BETEMPS, D.; BIANCHI, V.J.; FACHINELLO, J.C.; Caractersticas vegetativas, fenológicas e produtivas do pessegueiro cultivar Chimarrita enxertado em diferentes porta-enxertos. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, v. 44, n. 6, p. 583-589, 2009. PINELO, M.; et al. Interaction among phenolics in food fortification: negative synergism on antioxidant capacity. Journal of Agricultural and Food Chemistry,

Washington, v. 52, p.1177-1180, 2004 PODESTÁ, R.; VIEIRA,M.A.; PAGLIOSA, C.M. SIMAS, K.SN. MARASCHIN, M. Caracterização Físico-química dos Resíduos de Pomares de Amexeira (Prunus

74

salicina), 2ªInternacional Workshp Advances in Clear Production. São Paulo-Brazil, 2009. RAHMAN, I.; ADCOCK, I. M. Oxidative stress an redox regulation of lung inflammation in COPD. European Respiratory Journal, v. 28 (1), p. 214-219, 2006. RATO, A.E.; AGULHEIRO, A.C.; BARROSO, J.M.; RIQUELME, F. Soil and rootstock influence on fruit quality of plums (Prunus domestica L.) Scientia Horticulturae

2008. RASEIRA , M. C. B.; NAKASU, B.H.; Pessegueiro: Tecnologias para a produção de mudas. Jaboticabal: Funep, 2005. 65p.

REID, M.S. Maturation and maturity indices. In: KADER, A.A. Posharvest technology of horticultural crops. 3ª ed. California: University of California, p. 55-62, 2003. REISSER JUNIOR, C.; TIMM, L.C.; TAVARES, V.E.M. Características do cultivo de pêssegos da região de Pelotas-RS, relacionadas à disponibilidade de água para as plantas. Documentos 240, Embrapa Clima Temperado-Pelotas, RS ISSN 1806-9193 Dezembro, 2008. Versão eletrônica. Disponível em: http://www.cpact.embrapa.br/publicacoes/download/documentos/documento_240.pdf Acessado em 15 de dez. de 2009. REMORINI, D.; TAVARINI,S.; DEGL‟INNOCENTI, E.; LORETI, F.; MASSAI, R.; GUIDI, L. Effect of rootstocks and harvesting time on the nutritional quality of peel and flesh of peach fruits. Food Chemistry, London, v.110, p.361–367, 2008.

REYNERSTON, K. A.; YANG, H.; JIANG, B.; BASILE, M. B.; KENNELY, E. J. Quantitative analysis of antiradical phenolic constituents from fourteen edible Myrtaceae fruits. Food Chemistry, v. 109, n. 4, p. 883-890, 2008. RIBEIRO, E.P.; SERAVALLI, E.A.G. Química de alimentos. 1ª edição; p. 157; SP; 2004 ROBERTSON, J.A; MEREDITH, F.I.; FORBUS, W.R; L YON, B.G. Relationship of quality characteristics of peaches (cv. Loring) to maturity. Journal of Food Science, v.57, n.6, p.1401-1404, 1992. ROCHA, M.D.S. Comportamento fenológico e produtivo das cultivares de pessegueiro Chimarrita e Granada em diferentes porta-enxertos, nos três primeiros anos de implantação. 2006. 168p. Tese (Doutorado) - Universidade

Federal de Pelotas, Pelotas. ROCHA, M.D.S.; BIANCHI, V.J.; FACHINELLO, J.C. SCHIMITZ, J.D.; PASA, M. D.S.; SILVA J.B.D. Comportamento agronômico inicial da cv. Chimarrrita enxertada em cinco porta-enxertos de pessegueiro. Revista Brasileira de Fruticultura, Jaboticabal- SP, v. 29, n. 3, p. 583-588, 2007.

http://www.cpact.embrapa.br/publicacoes/download/documentos/documento_240.pdf

75

RODRIGUEZ-AMAYA, D.B. A guide to carotenoids analysis in foods. Washington: ILSI Press, p.64, 1999. RODRIGUEZ-AMAYA, D.B. Latin American Food Sources of Carotenoids. Arch. Latinoam. Nutrition.; Guatemala, v. 49, p. 74-78, 1999. RODRIGUEZ-AMAYA, D.B. Nature and distribution of carotenoids in foods. In: CHARALAMBOUS, G. (Ed.). Shelf life studies of foods and beverages. Chemical, biological, physical and nutritional aspects. Amsterdam: Elsevier Science Publisher, p. 547–589, 1993. ROSSI, A. Avaliação bioagronômicas de pessegueiros Granada e Suncrest sobre diferentes porta-enxertos. Pelotas 2004. 76p. Tese (Doutorado em Fruticultura de Clima temperado) Faculdade de Agronomia Eliseu Maciel, Universidade Federal de Pelotas. SACHS, S.; CAMPOS, A. D.O. O pessegueiro. In: MEDEIROS, C.A.B.; RASEIRA, M. DO C. B. (ed.). A cultura do Pessegueiro. Pelotas. EMBRAPA/CPACT. 1998. P.

13-19. SCALZO, J.; POLITI, A.; PELLEGRINI, N.; MEZZETTI, B.; BATTINI, M. Plant genotype affects total antioxidant capacity and phenolic contents in fruit. Nutrition,

v.21, p.207–213, 2005. SCALOPPI, E.M. A Cultura do Pessegueiro: Evolução da cultura do pessegueiro no Brasil. Site Toda Fruta. 2006. Disponível em: http://www.todafruta.com.br/todafruta/mostra_conteudo.asp?conteudo=11655 Acesso em: 20/12/2009. SENTANIN, M.A.; AMAYA, D.R. Teores de carotenóides em mamão e pêssego determinados por cromatografia líquida de alta eficiência. Ciência e Tecnologia de Alimentos; v. 27; p.13-19; 2007

SENTER, S. D.; ROBERTSON, J. A.; MEREDITH, F. I. Phenolic compounds of the mesocarp of cresthaven peaches during storage and ripening. Journal of Food Science, v. 54, n. 5, p. 1259-1268, 1989.

SHAHIDI, F.; NACZK, M. Food phenolics: sources, chemistry, effects and applications. Lancaster: Technomic; 1995 SHAHRZAD, S.; BITSCH, I. Determination of some pharmacologically active phenolic acids in juices by high-performance liquid chromatography. Journal of Chromatography, v.741, p. 223-231, 1996.

SHI, J.; MAGUER, M.L. Lycopene in tomatoes: chemical and physical properties affected by food processing. Critical Reviews in Biotechnology., v. 20, n. 4, p. 293-

334, 2000.

http://www.todafruta.com.br/todafruta/mostra_conteudo.asp?conteudo=11655

76

SILVA, R.S. Potencial antioxidante correlacionando com fenóis e antocianinas de cultivares de amora-preta, mirtilo morango e pêssego. 2007. 58f. Dissertação

(Mestrado) –Programa de Pós-Graduação em Ciência e Tecnologia Agroindustrial- Universidade Federal de Pelotas, Pelotas. SIMÃO, S. Manual de Fruticultura. Reimpressão. Piracicaba. São Paulo. 1992. p.

30. SIES, H. Strategies of antioxidant defence: review. European Journal Biochemistry., v. 215, n. 2, p. 213-219,1993. SIMÕES, C.M.O.; SCHENKEL, E.P.; GOSMANN, G.; MELLO, J.C.P. DE; MENTZ, L.A.; PETROVICK, P.R. FARMACOGNOSIA: da planta ao medicamento. 6ª ed. Porto Alegre: Editora da UFRGS; Florianópolis: Editora da UFSC, 2007. 1104p. SINGLETON, V. L.; ROSSI, J.A. JR. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture, v.16, p.144-158, 1965

SKERGET, M.; KOTNIK, P.; HADOLIN, M. et al. Phenols, proanthocyaninas, flavones and flavonols in some plant materials and their antioxidant activities. Food Chemistry, v. 89, p.191-198, 2005.

SNODDERLY, D.M. Evidence for protection against age-related macular degeneration by carotenoids and antioxidant vitamins. American Journal of Nutrition, v. 62, p. 1448S-1462S, 1995.

SOUZA, S.L.; MOREIRA, A.P.B.; PINHEIRO-SANTA‟ANA, H.M.; ALENCAR, E.R.; Conteúdo de carotenos e provitamina A em frutas comercializadas em Viçosa, Estado de Minas Gerais. Acta Scientiarum Agronomy. v. 26, n. 4, p. 453-459,

Maringá, 2004. STEINMETZ, K. A.; POTTER, J. D. Vegetable, fruit and cancer epidemiology. Cancer Causes and Control, v. 2, p. 325-351, 1996.

SUN, J. et al. Antioxidant and antiproferative activies of common fruits. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 50, p. 7449-7454, 2002. TAIZ, L.; ZEIGER, E. Fisiologia vegetal. Tradução de Eliane Romanato Santarém – 3ª ed. - Porto Alegre: Artmed, 2004. 719p. TAVARES, C. A. Composição de carotenóides e valor de vitamina A em tomate, milho, pêssego e seus produtos processados. Campinas, 1991, 127 p. Tese (Mestre em Ciência de Alimentos), Faculdade de Engenharia de Alimentos, Universidade Estadual de Campinas (UNICAMP). TAVARINI, S.; DEGL‟INNOCENTI, E.; REMORINI, D.; MASSAI, R.; GUIDI L. Preliminary characterisation of peach cultivars for their antioxidant capacity. International Journal of Food Science and Technology, v. 43, p. 810–815, 2008.

77

TELLES, C. A. Compatibilidade e crescimento de mudas de pessegueiro interenxertadas com amexeiras, damasqueiro e cerejeira. 2005. 67f. Dissertação

(mestrado em Agronomia) – Faculdade de Ciências Agronômicas, Universidade Federal do Paraná, Curitiba. TOMÁS-BARBERÁN, F.A.; GIL, M.A.; CREMIN, P.; WATERHOUSE, A.L.; HESSPIERCE, B.; KADER,A.A. HPLC-DAD-ESIMS Analysis of phenolic compounds in nectarines, peaches, and plums. Journal of Agricultural and Food Chemistry.v.

49, p. 4748-4760, 2001. TOMAS-BARBERAN, F.A.; GIL, M.I.; CREMIN, P.; WATERHOUSE, A.L.; HESS-PIERCE, B.; KADER, A.A. HPLC–DAD–ESIMS analysis of phenolic compounds in nectarines, peaches and plums. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 49, p. 4748–4760, 2001. TOOR, R. K., & SAVAGE, G. P. Antioxidant activity in different fractions of tomatoes. Food Research International, v. 38, p. 487–494, 2005. TRAINOTTI, L., BONGHI, C., ZILIOTTO, F., ZANIN, D., RASORI, A., CASADORO, G., RAMINA,A., TONUTTI, P.,. The use of microarray _PEACH1.0 to investigate transcriptome changes during transition from pre-climacteric to climactericphase in peach fruit. Plant Sciense. 170, 606–613, 2006.

VELIOGLU, Y.S.; MAZZA, F.; GAO, L.; OOMAH, B.D. Antioxidant activity and total phenolics in selected fruits, vegetables and grains products. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Washington, v. 46, p. 4113-4117, 1998.

VISON, J.A.; HAO, Y.; SU, X.; ZUBIK, L. Phenol antioxidant quantity ad quality in foods: vegetables. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Washington, v. 46, p. 3630-3634, 1998 VIZZOTTO, M.; CISNEROS-ZEVALLOS, L.; BYRNE, D.; RAMMING, D.W.; OKIE, W.R. Large variation found in the phytochemical and antioxidant activity of peach and plum germplasm. Journal of the American Society for Horticultural Science, v.

132, p.1-7, 2007 VIZZOTTO, M.; PEREIRA, J.F.M.; PEREIRA, M.C. Compostos fenólicos totais e atividade antioxidante em pêssegos da seleção Cascata 730 submetidos a diferentes sistemas de condução. Anais: Congresso Brasileiro de Fruticultura, 20 Annual Metting of the Interamerican society for tropical horticulture, 54., 2008,. WANG, T.: GONZALEZ, AR.; GBUR, E. E.; ASELAGE, J.M. Organic acid changes during ripening of processing peaches. Journal of Food Science, v. 58, n. 3, p. 631-632, 1993. WANG, H.; CAO, G.; PRIOR, R.L. Total antioxidant capacity of fruits. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 44, p. 701-705, 1996.

78

WETTASINGLE, M. Antioxidant and free radical-scavenging properties or ethanolic extracts of defatted borage (borago offcinalis L.) seeds. Food Chemistrry v. 67; p.

399-414, 1999. WETTASINGHE M, SHAHIDI F. Evening primrose meal: a source of natural antioxidants and scavenger of hydrogen peroxide and oxygen-derived free radicals. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 47, p. 1801-12, 1999. WOLFE, K.; WU, X.; LIU, R. H. Antioxidant activity of apple peels. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 53, p. 609-614, 2003.

SKREDE, G.; WROLSTEAD., R.E. Flavonoids from berries and grapes. Functional Foods: Biochemical and Processing Aspects. v.2, p.71-133. 2002. ZAMBIAZI, R.C. The role of endogenous lipid components on vegetable oil stability. 1997. 304f. Tese (Doutorado em Foods and Nutritional)- Sciences

Interdepartamental Program. University of Manitoba Winnipeg, Manitoba, Canada. ZHANG, D; HAMAUZU, Y. Phenolics, ascorbic acid, carotenoids and antioxidant activity of broccoli and their changes during conventional and microwave cooking. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 88, p. 503-509, 2004. ZIEGLER, R.G.Vegetables, fruits, and carotenoids and the risk of cancer. Americam Journal of Clinical Nutrition, v. 53, n. 1, p. 251 S-259S, 1991

79

Apêndices:

1- Análise de variância para acidez, firmeza, sólidos solúveis totais (SST), ratio (SST/AT) e pH de frutos de pessegueiro cv. Maciel, na localidade do Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

Quadrado Médio

Fonte de Variação GL Acidez Firmeza SST SST/AT pH

Porta Enxerto 5 1,000** 2,104** 0,481 ns 0,044** 0,025*

Resíduo 18 0,183 0,551 0,369 0,008 0,002

CV.(%) 4,73 13,61 5,08 6,9 1,27 ns, *,**

Não significativo pelo teste F, significativo pelo teste F a 1% e 5% de probabilidade de erro,

respectivamente

2 - Análise de variância para acidez, firmeza, sólidos solúveis totais (SST), ratio (SST/AT) e pH de frutos de pessegueiro cv. Maciel, na localidade da Estação Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul - 2008.

Quadrado Médio

Fonte de Variação GL Acidez Firmeza SST SST/AT pH

Porta Enxerto 5 0,120 ns 0,962** 0,529 ns 0,005ns 0,004 ns

Resíduo 18 0,276 0,318 0,389 0,005 0,002

CV.(%) 5,57 13,61 4,95 5,59 1,27 ns, *,**

Não significativo pelo teste F, significativo pelo teste F a 1% e 5% de probabilidade de erro, respectivamente

3- Análise de variância para luminosidade, cor de superfície (a*), cor de fundo (b*) e ângulo hue em pêssegos da Cultivar Maciel, na localidade do Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

Quadrado Médio

Fonte de Variação GL Luminosidade °a °b ° Hue

Porta Enxerto 5 0,423ns 3,667** 3,224 ns 6,379ns

Resíduo 12 0,721 0,318 3,467 10,752

CV.(%) 1,23 3,38 3,32 3,62 ns, *,**


respectivamente

80

4- Análise de variância para luminosidade, cor de superfície (a*), cor de fundo (b*) e ângulo hue em pêssegos da Cultivar Maciel, na localidade da Estação Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul - 2008.

Quadrado Médio

Fonte de Variação GL Luminosidade °a °b ° Hue

Porta Enxerto 5 2,914ns 2,453ns 1,474 ns 2,330ns

Resíduo 12 5,213 1,465 1,396 1,443

CV.(%) 3,26 7,67 2,03 1,31 ns, *,**


respectivamente

5 - Análise de variância para fenóis, carotenóides e capacidade antioxidante presentes na polpa de pêssegos da Cultivar Maciel, na localidade do Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

Quadrado Médio

Fonte de Variação GL Fenóis Carotenóides DPPH

Porta Enxerto 5 1655,69* 182,72* 17,14* Resíduo 48 6,81 3,75 22,62 CV.(%) 1,97 8,67 17,85

ns, *,** Não significativo pelo teste F, significativo pelo teste F a 1% e 5% de probabilidade de erro,

respectivamente

6- Análise de variância para fenóis, carotenóides e capacidade antioxidante presentes na casca de pêssegos da Cultivar Maciel, na localidade do Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

Quadrado Médio




respectivamente

81

7 - Análise de variância para fenóis, carotenóides e capacidade antioxidante presentes na polpa de pêssegos da Cultivar Maciel, na localidade da Estação Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul - 2008.

Quadrado Médio




respectivamente

8 - Análise de variância para fenóis, carotenóides e capacidade antioxidante presentes na casca de pêssegos da Cultivar Maciel, na localidade da Estação Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul - 2008.

Quadrado Médio




respectivamente

9 - Análise de variância para carotenóides individuais presentes na polpa de pêssegos da Cultivar Maciel, na localidade do Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

Quadrado Médio

Fonte de Variação GL β-caroteno β-criptoxantina licopeno

Porta Enxerto 5 0,900* 3,258* 1,935*

Resíduo 12 0,051 0,126 0,016

CV.(%) 22,73 8,59 13,94

ns, *,**


82

10 - Análise de variância para carotenóides individuais presentes na casca de pêssegos da Cultivar Maciel, na localidade do Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

Quadrado Médio


Porta Enxerto 5 8,912* 21,921** 0,199*

Resíduo 12 0,171 37,688 0,001

CV.(%) 27,15 16,71 9,6 ns, *,**


11- Análise de variância para carotenóides individuais presentes na polpa de pêssegos da Cultivar Maciel, na localidade do da Estação Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul - 2008.

Quadrado Médio


Porta Enxerto 5 0,680* 5,900* 0,003ns

Resíduo 12 0,011 0,034 0,001

CV.(%) 15,37 5,19 6,51 ns, *,**


respectivamente

12- Análise de variância para carotenóides individuais presentes na casca de pêssegos da Cultivar Maciel na localidade do da Estação Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul - 2008.

Quadrado Médio


Porta Enxerto 5 8,852* 26,505* 0,140*

Resíduo 12 0,002 0,183 0,000

CV.(%) 3,46 3,61 4,91 ns, *,**


83

13- Análise de Variância para Fenóis individuais presentes na polpa de pêssegos da Cultivar Maciel na localidade do Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

Quadrado Médio

Fonte de Variação GL Ác. Gálico Ác. Hidróxibe. Cumarico

cafeico

Porta Enxerto 5 408,989** 406,353** 3,228**

0,325**

Resíduo 12 13,083 8,896 0,010 0,012

CV.(%) 4,52 5,39 3,16 14,47

ns, *,**


respectivamente 14- Análise de Variância para Fenóis individuais presentes na casca de pêssegos da Cultivar Maciel na localidade do Centro Agropecuário da Palma/UFPel – Capão do Leão-2008.

Quadrado Médio


cafeico

Porta Enxerto 5 1340.49** 337.429** 217.161**

0.36407

Resíduo 12 12.61 8.443 0.849 0.01504

C.V. 2.32 3.42 12.04 11.50

ns, *,**


respectivamente 15- Análise de Variância para Fenóis individuais presentes na polpa de pêssegos da Cultivar Maciel na localidade do da Estação Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul - 2008.

Quadrado Médio


cafeico

Porta Enxerto 5 235.889** 169.290** 0.34638**

0.20064**

Resíduo 12 6.797 1.995 0.24294 0.00091

C.V. 3.09 2.04 14.25 4.67

84

ns, *,**


respectivamente 16- Análise de Variância para Fenóis individuais presentes na casca de pêssegos da Cultivar Maciel na localidade do da Estação Experimental da UFRGS – Eldorado do Sul - 2008.

Quadrado Médio


cafeico

Porta Enxerto 5 1241.75** 349.380** 9.72E-04**

0.11584**

Resíduo 12 44.83 10.054 4.32E-05 0.00085

C.V. 4.55 4.02 7.48 4.85

ns, *,**


respectivamente

17- Valores de temperaturas médias (ºC), temperatura máximas (ºC), temperatura

mínimas(ºC) e precipitação (mm) do Centro Agropecuário da Palma/Capão do

Leão/2008.

Mês T. Médias T. Máx. T.Min. Precipitação

Janeiro 23.2 28.1 19.1 80.4

Fevereiro 22.5 27.5 19 142.2

Março 22.2 27.8 18.3 102.6

Abril 18 25.4 12.7 31.2

Maio 15.3 20.8 11.5 50.2

Junho 11.8 17 8 78

Julho 14.8 19.7 11.6 63.4

Agosto 8.4 17.8 12.8 188

Setembro 14.4 19.2 10.9 140.8

Outubro 17.7 22.5 13.5 48

Novembro 21 26.1 17.1 21.9

Dezembro 21.7 27 17.8 80.8 Fonte: Estação automática da Fruticultura da UFPel.

85

18- Valores de temperaturas médias (ºC), temperatura máximas (ºC), temperatura

mínimas(ºC) e precipitação (mm) da Estação Experimental da UFRGS/Eldorado do

Sul/2008.

Mês T. Médias T. Máx. T.Min. Precipitação

Janeiro 23.7 29.8 17.9 111.7

Fevereiro 23.1 29.2 17.7 77.0

Março 22.6 29.3 16.9 23.5

Abril 17.9 25.0 11.8 160.5

Maio 14.9 21.3 9.3 241.4

Junho 11.8 17.1 7.0 142.2

Julho 15.0 20.4 10.5 215.4

Agosto 14.3 20.3 8.6 141.2

Setembro 15.0 20.8 9.4 167.2

Outubro 18.4 23.5 13.6 253.9

Novembro 20.7 27.7 15.5 57.8

Dezembro 20.1 28.4 15.0 112.7

Fonte:Estação meteorológica da UFRGS.

86

Dados de catalogação na fonte:

( Marlene Cravo Castillo – CRB-10/744 )

B562c Betemps, Débora Leitzke

Caracterização físico-química e fitoquímica de pêssegos da

cv. Maciel sobre diferentes porta-enxertos / Débora Leitzke

Betemps ; orientador José Carlos Fachinello- Pelotas,2010.-86f. ;

il..- Dissertação ( Mestrado ) –Programa de Pós-Graduação em

Agronomia –Área de Concentração em Fruticultura de Clima

Temperado. Faculdade de Agronomia Eliseu Maciel .

Universidade Federal de Pelotas. Pelotas, 2010.

1.Pessegueiro 2.Fenóis 3.Qualidade 4.Carotenóides

5.Atividade antioxidante I. Fachinello, José

Carlos(orientador) II .Título.

CDD 634.25

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