Algunas potencialidades de la quitina y el quitosano para ...
EFECTIVIDAD DEL QUITOSANO COMO COAGULANTE EN EL...
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REPÚBLICA BOLIVARIANA DE VENEZUELA UNIVERSIDAD DEL ZULIA FACULTAD DE INGENIERÍA
DIVISIÓN DE ESTUDIOS PARA GRADUADOS PROGRAMA DE POSTGRADO DE CIENCIA Y TECNOLOGÍA DE ALIMENTOS
EFECTIVIDAD DEL QUITOSANO COMO COAGULANTE EN EL TRATAMIENTO DE SALMUERA PARA USO COMESTIBLE
Trabajo de Grado presentado ante la Ilustre Universidad del Zulia
para optar al grado académico en
MAGÍSTER SCIENTIARUM EN CIENCIA Y TECNOLOGÍA DE ALIMENTOS
Autora: Yesenia Coromoto Peña Finol Tutor: Edixon Gutiérrez
Maracaibo, abril de 2015
4 Peña Finol, Yesenia Coromoto. Efectividad del quitosano como coagulante en el tratamiento de salmuera para uso comestible (2015). Trabajo de Grado. Universidad del Zulia. Facultad de Ingeniería. División de Estudios para Graduados. Maracaibo, Venezuela, 119 p. Tutor: Dr. Edixon Gutiérrez.
RESUMEN
Se evaluó la efectividad del quitosano como coagulante en el tratamiento de salmuera destinada a la obtención de sal para consumo humano, mediante la caracterización fisicoquímica de los parámetros: cloruro de sodio, calcio, dureza total, sulfatos, pH, carbonatos, turbidez y color en salmuera. Seguidamente, se determinaron las condiciones operacionales dosis de quitosano, pH y temperatura, en el tratamiento de salmuera para la remoción de turbidez, color, dureza total, carbonatos y sulfatos que garanticen una alta calidad y pureza en el producto final (sal comestible). Esto se llevó a cabo en un equipo de Test de Jarra a escala laboratorio. Se trabajó con quitosano comercial (Biofloc BPQ-12) a concentraciones de 0, 16 y 22 mg/L, variaciones de pH 5,5, 7,3, 9,5 y temperatura de 27, 38 y 42ºC. Para el polímero sintético poliacrilamida, se establecieron las condiciones operacionales existentes en el tratamiento de salmuera, a un pH de 10,5 y dosis de poliacrilamida de 0 ppm, 2 ppm y 4 ppm. Los mayores porcentajes de remoción de color y turbidez se encontraron en 98,72% y 98,82% respectivamente a pH 9,5, temperatura de 38ºC y una dosis de 22 mg/L de quitosano. Para el parámetro dureza total, a pesar de obtenerse un porcentaje de remoción de 83,06%, su valor promedio se encontró por encima del valor referencia en el tratamiento de salmuera (<1000 mg/L CaCO3), igualmente los carbonatos estuvieron por encima de este criterio. En la remoción de sulfatos el quitosano no constituyó un coagulante efectivo, encontrándose el mayor porcentaje en 25,35 %, en muestra de salmuera tratada con 22 mg/L de quitosano a 42ºC y pH 9,5. La poliacrilamida demostró una mayor reducción en los parámetros de turbidez, color, sulfatos, carbonatos y dureza en la salmuera tratada en comparación con las muestras tratadas con quitosano comercial. Palabras claves: Coagulante, turbidez, quitosano, salmuera, poliacrilamida
Email del autor: [email protected]
5 Peña Finol, Yesenia Coromoto. Effectiveness of chitosan as a coagulant for the treatment of brine for food use (2015). Trabajo de Grado. Universidad del Zulia. Facultad de Ingeniería. División de Estudios para Graduados. Maracaibo, Venezuela, 119 p. Tutor: Dr. Edixon Gutiérrez.
ABSTRACT
The effectiveness of chitosan as a coagulant in the treatment of brine intended of salt for human consumption through physicochemical characterization parameters; sodium chloride, calcium, total hardness, sulfates, pH, carbonates, turbidity and color, according to the established procedures in Venezuelan standard Covenin 179: 1995 and standard method of analysis water (2000). Next, in determinated the operational conditions (chitosan dosage, pH and temperature), in brine treatment for the removal of turbidity, color, total hardness, carbonates and sulfates hat guarantee high quality and purity in the final product (comestible salt). This it was made in a jar test equipment at lab scale. Worked with commercial chitosan (Biofloc BPQ-12) at concentrations of 0 mg/L, 16 mg/L and 22 mg/ L, pH 5.5 variations, 7.3, 9.5 and temperature of 27°C, 38°C and 42ºC. The highest percentages of color and turbidity removal were found 98.82% and 98.72% respectively at pH 9.5, temperature 38°C and a dosage of 22 mg/L of chitosan. For total hardness the parameter, despite removal percentage of 83.06%, found their average value over the reference value in the treatment of brine (<1000 mg/L CaCO3), also carbonates were found above this criterion. In the chitosan was not an effective coagulant, being the greatest percentage in 25.35% in brine sample treated with 22 mg/ L of chitosan and pH 9.5 at 42°C. Polyacrylamide proved a greater reduction in parameters turbidity, color, sulfates, carbonates and the treated brine hardness compared with samples commercial chitosan.
Keywords: coagulation, flocculation, chitosan, brine, polyacrylamide
Email del autor: [email protected]
6
DEDICATORIA
A Dios, por darme la sabiduría y paciencia necesaria que me han permitido lograr esta
meta.
A mi madre, por su apoyo incondicional a lo largo de toda mi vida, que han hecho de mí una
persona perseverante ante todos los obstáculos.
A todos mis amigos que siempre confiaron y creyeron en mí.
7
AGRADECIMIENTOS
A la Universidad del Zulia.
A mi familia y amigos, por hacerme feliz todos los días de mi vida, por su gran paciencia, y por
mostrarme que luego de la tormenta siempre viene la calma ¡Muchas gracias a todos!
A mi tutor Edixon Gutiérrez, por apoyarme y asesorarme en este proyecto.
Al Centro de Investigaciones del agua (CIA), por permitirme utilizar el equipo clave de esta
investigación.
A la empresa INDUSALCA, por proporcionarme todos los recursos para el logro de esta
investigación.
A la empresa INNOVAQUITO, por proporcionarme las muestras del quitosano comercial.
8
TABLA DE CONTENIDO
Página
RESUMEN………………………………………………………………………………. 4
ABSTRACT……………………………………………………………………………… 5
DEDICATORIA………………………………………………………………………….. 6
AGRADECIMIENTOS………………………………………………………………….. 7
TABLA DE CONTENIDO………………………………………………………………. 8
LISTA DE TABLAS……………………………………………………………………... 12
LISTA DE FIGURAS……………………………………………………………………. 15
INTRODUCCIÓN……………………………………………………………………….. 17
CAPÍTULO I……………………………………………………………………………... 20
MARCO TEÓRICO……………………………………………………………………... 20
2.1 Características y propiedades químicas del cloruro de sodio……………... 23
2.1.1 Usos de sal en la industria alimenticia………………………………… 24
2.1.1.1 Uso de sal como agente preservante…………………………. 24
2.1.1.2 Uso de sal como intensificador del sabor…………………….. 25
2.1.1.3 Función tecnológica de la sal en los alimentos……………… 26
2.2 Descripción del proceso de obtención de sal recristalizada al vacio……… 28
2.2.1 Recepción y almacenamiento de materia prima……………………… 28
2.2.2 Preparación de salmuera……………………………………………….. 29
2.2.3 Zona de evaporación……………………………………………………. 29
2.2.4 Zona de secado………………………………………………………….. 31
2.2.5 Ensilado y ensacado……………………………………………………. 31
2.3 Descripción de tratamiento primario: Coagulación – Floculación………… 31
2.3.1 Mecanismos de coagulación…………………………………………… 33
2.3.2 Factores que influyen en el proceso de coagulación………………... 36
2.3.2.1 Tipo de coagulante……………………………………………… 36
2.3.2.2 Contenido de material suspendido……………………………. 37
2.3.2.3 pH………………………………………………………………… 37
2.3.2.4 Salinidad…………………………………………………………. 38
9 2.3.2.5 Temperatura……………………………………………………… 38
2.3.2.6 Tiempo de mezcla y floculación………………………………... 39
2.3.2.7 Fuerza de agitación……………………………………………… 39
2.3.2.8 Color………………………………………………………………. 39
2.3.2.9 Presencia de núcleo……………………………………………... 39
2.3.2.10 Presencia de iones……………………………………………... 40
2.3.2.10.1 Presencia de cationes…………………………….. 40
2.3.2.10.2 Presencia de aniones……………………………… 40
2.4 Tipos de coagulantes existentes………………………………………….. 40
2.5 Quitosano…………………………………………………………………… 41
CAPÍTULO II …………………………………………………………………………….. 46
MARCO METODÓLOGICO…………………………………………………………… 46
3. Procedimiento experimental……………………………………………………. 46
3.1 Preparación de muestras de coagulantes……………………………….. 46
3.2 Preparación de salmuera…………………………………………………... 46
3.3 Determinación de los parámetros fisicoquímicos de muestra de salmuera concentrada……………………………………………………. 47
3.3.1 Determinación del contenido de cloruro de sodio………………... 47
3.3.2 Determinación del contenido de calcio……………………………. 48
3.3.3 Determinación del contenido de dureza total……………………..
3.3.4 Determinación del contenido de carbonatos………………………
49
49
3.3.5 Determinación de pH……………………………………………….. 50
3.3.6 Determinación de turbidez…………………………………………. 50
3.3.7 Determinación de material insoluble………………………………. 51
3.3.8 Determinación de color……………………………………………… 51
3.3.9 Determinación de contenido de sulfatos………………………….. 51
3.4 Proceso de coagulación y floculación en tratamiento de salmuera utilizando como coagulante quitosano comercial…………………………. 51
3.4.1 Condiciones para el desarrollo de la prueba de jarras………….. 52
3.4.2 Velocidad y tiempo de mezcla rápida……………………………... 52
3.4.3 pH……………………………………………………………………… 52
3.4.4 Temperatura………………………………………………………….. 53
10 3.4.5 Velocidad y tiempo de mezcla lenta………………………………... 53
3.4.6 Dosificación de quitosano…………………………………………… 53
3.4.7 Procedimiento para el proceso de coagulación/ floculación con quitosano como coagulante………………………………………………… 54
3.4.8 Procedimiento del proceso de coagulación- floculación utilizando poliacrilamida aniónica………………………………………………………. 55
3.5 Procesamiento estadístico de los datos obtenidos………………………... 57
CAPÍTULO IV………………………………………………………………………….... 57
ANÁLISIS Y DISCUSIÓN DE RESULTADOS………………………………………. 57
4.1 Características fisicoquímicas en salmuera destinada a la obtención de sal para consumo humano……………………………………………………. 57
4.2 Análisis de los parámetros en el tratamiento de salmuera utilizando como coagulante quitosano comercial……………………………………… 59
4.2.1 Evaluación en remoción del parámetro turbidez utilizando como coagulante quitosano comercial…………………………………………. 59
4.2.1.1 Evaluación en remoción de turbidez a condiciones de temperaturas en medio ácido (pH 5,10)......................................... 59
4.2.1.2 Evaluación en remoción de turbidez a condiciones de temperaturas de 27ºC, 38ºC y 42ºC y pH 7,30……………………... 59
4.2.1.3 Evaluación en remoción de turbidez a condiciones de temperaturas (27ºC, 38ºC y 42ºC) en medio alcalino (pH 9,5)…….. 64
4.2.1.4 Significancia estadística para el parámetro de turbidez a las distintas condiciones evaluadas……………………………………... 66
4.2.2 Evaluación en la remoción del parámetro color utilizando como coagulante quitosano comercial…………………………………………... 70
4.2.2.1 Evaluación en la remoción de color a condiciones de temperaturas (27ºC, 38ºC y 42ºC) en medio ácido (pH 5,10)……… 70
4.2.2.2 Evaluación en remoción de color a condiciones de temperaturas (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 7,30………………………… 72
4.2.2.3 Evaluación en remoción de color a condiciones de temperaturas (27ºC, 38ºC y 42ºC) en medio alcalino (pH 9,5)……... 74
4.2.2.4 Significancia estadística para el parámetro Color……………….. 76
4.2.3. Evaluación en la remoción del parámetro dureza total utilizando como coagulante quitosano comercial…………………………………… 79
11
4.2.3.1 Evaluación en remoción de dureza total a condiciones de temperaturas (27ºC, 38ºC y 42ºC) en medio ácido (pH 5,10)…….. 79
4.2.3.2 Evaluación en remoción de dureza total a condiciones de temperaturas (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 7,30………………………. 81
4.2.3.3 Evaluación en remoción de dureza total a condiciones de temperaturas (27ºC, 38ºC y 42ºC) en medio alcalino (pH 9,50)…. 82
4.2.3.4 Significancia estadística para el parámetro dureza total para las condiciones evaluadas……………………………………………… 84
4.2.4 Evaluación en la remoción del parámetro carbonatos y sulfatos utilizando como coagulante quitosano comercial……………………….. 86
4.2.4.1 Evaluación en remoción de carbonatos y sulfatos a condiciones de temperaturas (27ºC, 38ºC y 42ºC) en medio acido (pH 5,10)……………………………………………………………………
86
4.2.4.2 Evaluación en remoción de carbonatos y sulfatos a condiciones de temperaturas (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 7,30………… 89
4.2.4.3 Evaluación en remoción de carbonatos y sulfatos a condiciones de temperaturas (27ºC, 38ºC y 42ºC) en medio alcalino (pH 9,5)………………………………………………………….
92
4.2.4.4 Significancia estadística para el parámetro carbonatos para cada una de las condiciones evaluadas………………………………. 94
4.2.4.5 Significancia estadística para el parámetro sulfatos para cada una de las condiciones evaluadas……………………………………...
98
5 Efectividad del polímero sintético poliacrilamida en el tratamiento de salmuera…………………………………………………………………………. 101
5.1 Comparación estadística de los resultados obtenidos del mejor tratamiento de quitosano con poliacrilamida…………………………………… 103
CONCLUSIONES……………………………………………………………………….. 105
RECOMENDACIONES…………………………………………………………………. 107
REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS…………………………………………………… 108
ANEXOS………………………………………………………………………………….. 115
12
LISTA DE TABLAS
Tabla Página
1 Funciones de la sal en la industria alimenticia…………………………………... 27
2 Características fisicoquímicas en muestra de salmuera……………………….. 58
3 Resultados turbidez residual en tratamiento de salmuera con quitosano
como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 5,10………………
60
4 Resultados de turbidez residual en tratamiento de salmuera con quitosano
como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 7,30………………
62
5 Resultados remoción de turbidez residual en tratamiento de salmuera con
quitosano como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 9,5…… 64
6 Significancia de los efectos simples del pH, temperatura y dosis de
quitosano calculadas con la prueba de Kruskall-Wallis para el parámetro
turbidez……………………………………………………………………………….
67
7 Significancia de los efectos simples del pH, temperatura y dosis de
quitosano sobre la turbidez calculadas mediante la prueba de Kruskall-
Wallis…………………………………………………………………………………
67
8 Resultados de color residual promedio en tratamiento de salmuera con
quitosano como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 5,1…… 71
9 Resultados de color residual en tratamiento de salmuera con quitosano
como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 7,30……………… 73
10 Resultados de color residual en tratamiento de salmuera con quitosano
como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 9,50……………… 74
11 Significancia de los efectos simples del pH, temperatura y dosis de
quitosano calculadas con la prueba de Kruskall-Wallis para el parámetro
turbidez………………………………………………………………………………
76
12 Significancia de los efectos simples del pH (A), temperatura (B) y dosis de
Quitosano (C) sobre el color calculadas mediante la prueba de Kruskall-
Wallis………………………………………………………………………………
77
13
13 Resultados variación de dureza total en tratamiento de salmuera con
quitosano como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 5,1…… 80
14 Resultados variación de dureza total en tratamiento de salmuera con
quitosano como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 7,30….. 81
15 Resultados variación de dureza total en tratamiento de salmuera con
quitosano como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 9,5…… 83
16 Significancia de los efectos simples del pH, temperatura y dosis de
quitosano calculadas con la prueba de Kruskall-Wallis para el parámetro
dureza total…………………………………………………………………………..
84
17 Significancia de los efectos simples del pH (A), temperatura (B) y dosis de
Quitosano (C) sobre la dureza calculadas mediante la prueba de Kruskall-
Wallis………………………………………………………………………………….
84
18 Resultados variación de carbonatos en tratamiento de salmuera con
quitosano como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 5,1…… 87
19 Resultados variación de sulfatos en tratamiento de salmuera con quitosano
como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 5,1………………..
88
20 Resultados variación de carbonatos en tratamiento de salmuera con
quitosano como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 7,3……
90
21 Resultados variación de sulfatos en tratamiento de salmuera con quitosano
como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 7,3………………..
91
22 Resultados variación de carbonatos en tratamiento de salmuera con
quitosano como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 9,5…… 92
23 Resultados variación de sulfatos en tratamiento de salmuera con quitosano
como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 9,5……………….. 93
24 Significancia de los efectos simples del pH, temperatura y dosis de
quitosano calculadas con la prueba de Kruskall-Wallis para el parámetro
carbonatos……………………………………………………………………………95
14
25 Significancia de los efectos simples del pH (A), temperatura (B) y dosis de
Quitosano(C) sobre los carbonatos calculadas mediante la prueba de
Kruskall-Wallis……………………………………………………………………….
95
26 Significancia de los efectos simples del pH, temperatura y dosis de
quitosano calculadas con la prueba de Kruskall-Wallis para el parámetro
sulfatos………………………………………………………………………………..
98 27 Significancia de los efectos simples del pH (A), temperatura (B) y dosis de
Quitosano (C) sobre los sulfatos calculadas mediante la prueba de Kruskall-
Wallis………………………………………………………………………………….
99 28 Resultados en tratamiento de salmuera con poliacrilamida anionica como
coagulante a temperatura 27ºC y pH 10,5………………………………………. 102
29 Comparación del mejor tratamiento utilizando quitosano comercial con la
poliacrilamida anionica en el tratamiento de salmuera utilizando la prueba t
de Student……………………………………………………………………………
104
15
LISTA DE FIGURAS
Figura Página 1 Formación del compuesto iónico cloruro de sodio…………………………..
24
2 Diagrama de procesos de producción de sal por recristalización al vacio….. 30
3 Fuerzas de repulsión y atracción……………………………………………....
34
4 Reestabilización de partículas coloidales……………………………………..
35
5 Estructura molecular de la quitina……………………………………………….
42
6 Estructura molecular del quitosano………………………………………………
42
7 Extracción y obtención de quitosano……………………………………………
43
8 Equipo de jarra para determinar dosis optima de quitosano…………………. 53
9 Remoción de turbidez a temperaturas 27ºC, 38 ºC y 42 ºC a pH 5,10……… 60
10 Remoción de turbidez a temperaturas 27ºC, 38 ºC y 42 ºC a pH 7,30……… 63
11 Remoción de turbidez a temperaturas 27ºC, 38 ºC y 42 ºC a pH 9,5……….. 65
12 Efectos del pH (A), la temperatura (B) y la dosis de quitosano (C) sobre la
turbidez, mostrando el valor medio (mediana) de cada tratamiento y su
dispersión……………………………………………………………………………
69
13 Exploración gráfica de las posibles interacciones dobles (A, B, C) e
interacción triple de los factores estudiados sobre la turbidez……………….
70
14 Comportamiento remoción de color a temperaturas 27ºC, 38 ºC y 42 ºC a
pH 5,10………………………………………………………………………………
72
15 Remoción de color a temperaturas 27ºC, 38 ºC y 42 ºC a pH 7,30…………. 74
16 Remoción de Color a temperaturas 27ºC, 38 ºC y 42 ºC a pH 9,5………….. 75
17 Efectos del pH (A), la temperatura (B) y la dosis de quitosano (C) sobre el
color, mostrando el valor medio (mediana) de cada tratamiento y su
dispersión (diferencia entre las réplicas de cada tratamiento)………………..
78
16 18 Exploración gráfica de las posibles interacciones dobles (A, B, C) e
interacción triple (D) de los factores estudiados sobre el color……………….
79
19 Comportamiento remoción de dureza total a temperaturas 27ºC, 38 ºC y 42
ºC a pH 5,10………………………………………………………………………...
80
20 Remoción de dureza total a temperatura 27ºC, 38 ºC y 42 ºC a pH 7,30…… 82
21 Remoción de dureza total a temperatura 27ºC, 38 ºC y 42 ºC a pH 9,50…… 83
22 Efectos del pH (A), la temperatura (B) y la dosis de quitosano (C) sobre la
dureza, mostrando el valor medio (mediana) de cada tratamiento…………..
85
23 Exploración gráfica de las posibles interacciones dobles (A, B, C) e
interacción triple de los factores estudiados sobre la dureza…………………
86
24 Remoción de Carbonatos a temperatura 27ºC, 38 ºC y 42 ºC a pH 5,10…… 88
25 Remoción de Sulfatos a temperatura 27ºC, 38 ºC y 42 ºC a pH 5,10……….. 89
26 Remoción de Carbonatos a temperatura 27ºC, 38 ºC y 42 ºC a pH 7,30…… 90
27 Remoción de Sulfatos a temperatura 27ºC, 38 ºC y 42 ºC a pH 7,30……….. 91
28 Remoción de Carbonatos a temperatura 27ºC, 38 ºC y 42 ºC a pH 9,5…….. 93
29 Remoción de Sulfatos a temperatura 27ºC, 38 ºC y 42 ºC a pH 9,5………… 94
30 Efectos del pH (A), la temperatura (B) y la dosis de quitosano (C) sobre los
carbonatos, mostrando el valor medio (mediana) de cada tratamiento y su
dispersión……………………………………………………………………………
96
31 Exploración gráfica de las posibles interacciones dobles (A, B, C) e
interacción triple de los factores estudiados sobre los carbonatos…………..
97
32 Efectos del pH (A), la temperatura (B) y la dosis de quitosano (C) sobre los
sulfatos, mostrando el valor medio (mediana) de cada tratamiento y su
dispersión……………………………………………………………………………
100
33 Exploración gráfica de las posibles interacciones dobles (A, B, C) e
interacción triple (D) de los factores estudiados sobre sulfato………………..
101
17
INTRODUCCIÓN
La producción de sal común o cloruro de sodio ha desempeñado un papel muy
importante en la historia del hombre, sus aplicaciones y usos son variados; por lo que al
observar el panorama mundial, se aprecia que los Estados Unidos y China, dominan la
producción mundial de sal, en conjunto producen el 40,4% del total anual. El primero de
estos dos países, quién es tradicionalmente el mayor productor mundial de sal, fue
superado en 2012 por China, con 73 millones de toneladas, contra 40 millones de
toneladas de sal producidas en E.E.U.U (Coordinación General de Minería, 2013).
Hoy en día, es producida en más de 100 países y sus necesidades de consumo se
orientan principalmente a la alimentación humana y la industria. Se estima que una
persona promedio, consume más de 6 gramos por día, en forma de sal común o
alimentos preparados, siendo apreciable que en el 2012, la producción a nivel mundial
fue de unos 279,8 millones de toneladas (Coordinación General de Minería, 2013).
Conviene agregar, que en estado puro, la sal es un compuesto formado solamente
por cloruro sódico, de fórmula química NaCl; ahora bien, la sal que se comercializa
contiene diversas impurezas atrapadas en el interior de los cristales salinos, desde
moléculas de agua hasta arcillas, arenas, sulfato de magnesio, entre otros. Lo anterior
hace suponer, que interesa a cualquier país, que este compuesto llegue a destino, con
una excelente calidad, libre de las impurezas; esto evidencia la necesidad de llevar a
cabo procedimientos basados en tratamientos aplicados a la salmuera, de tal manera
que se obtenga una sal de alta calidad y pureza.
Al dar una mirada a Venezuela, se encuentra que la producción anual asciende a
510.000 toneladas de sal bruta, 115.000 toneladas de sal refinada y 57 toneladas de sal
mineralizada; según el Servicio Autónomo de Actividades del Complejo Salinero de
Araya (2006), la mayoría proveniente de las salinas mecanizadas emplazadas en la
Península de Araya del Estado Sucre y el resto de la producción se obtiene de las
18 salinas y refinerías de los Olivitos en Ancón de Iturre del Estado Zulia, las Cumaraguas
en el Estado Falcón y otras pequeñas salinas; refiriendo que las salineras de estos tres
estados, son las de mayor importancia en Venezuela.
Apreciándose la importancia de este compuesto, tanto a nivel económico, dado el
aprovechamiento de su producción, como complemento de la alimentación, destaca
Sauceda (2012), que la sal es el condimento alimenticio por excelencia, comúnmente
empleado para realzar el sabor de los alimentos, en algunos casos sirve como
preservante, aglutinante y aditivos para controlar la fermentación; dar textura,
desarrollar color y como agentes deshidratador alimenticio, ablandador e inhibidor de
enzimas.
Con referencia a su valor nutricional, aporta al organismo sodio, elemento necesario
para su adecuado funcionamiento. Su fuente de suministro se encuentra en el agua de
mar y los salares de la cordillera. El agua de mar contiene en promedio 2,9% de cloruro
de sodio (por peso), lo cual representa un suministro importante. Al evaporar el agua al
sol, precipitan algunas impurezas, sustancialmente como calcio, magnesio, sulfatos y
otros elementos trazas (DeWittie y col, 1987).
Según lo expuesto, se hace necesario destacar que durante el procesamiento de sal
comestible, la presencia de las impurezas mencionadas en la salmuera, influyen en el
contenido de humedad, pureza y calidad del producto final, siendo necesario un
tratamiento previo de la salmuera antes del proceso de cristalización y secado.
Esto implica, la exigencia de un procedimiento para el tratamiento de la salmuera, de
forma tal que el producto final sea el adecuado a los intereses de la salud de quienes la
consumen; de allí, que entre los métodos utilizados para la remoción de estos
elementos en soluciones acuosas, se encuentra la técnica de coagulación/floculación.
Esta operación consiste en someter a agitación muy intensa la solución acuosa con un
componente químico (coagulante), causando la neutralización de las partículas en
suspensión, para su posterior sedimentación; así, las sustancias coagulantes pueden
19 ser inorgánicos (por ejemplo, sales de aluminio y sales de hierro), polímeros sintéticos
(por ejemplo, polietilenamina y derivados de poliacrilamida) y polímeros naturales (por
ejemplo, quitosano).
Sobre el quitosano, indica Hernández (2004) es aquel obtenido de la desacetilación
de la quitina, presente en el exoesqueleto de artrópodos y zooplancton marino. El
quitosano es descrito como un polielectrolito catiónico, efectivo para coagular partículas
suspendidas cargadas negativamente que se encuentra en las aguas naturales turbias
(Lárez, 2003).
Atendiendo a los planteamientos efectuados, el objetivo fundamental de la
investigación es evaluar la efectividad del quitosano como coagulante en el tratamiento
de salmuera destinada a la obtención de sal para consumo humano.
20
CAPÍTULO I
MARCO TEÓRICO En este apartado de la investigación, se presentan algunos estudios realizados
sobre el uso de quitosano como coagulante en varias aplicaciones, los cuales sirvieron
de referencias para la elaboración de este trabajo, además se mencionan ciertos
conceptos referentes al tratamiento de salmuera destinada a la obtención de sal
alimenticia, coagulación y floculación.
En este sentido, Mármol y col. (2011), llevaron a cabo un trabajo denominado
“Quitina y Quitosano polímeros amigables. Una revisión de sus aplicaciones”. Exponen
los autores, que la quitina es un polisacárido muy abundante en la naturaleza,
principalmente en crustáceos, insectos y hongos. Posee una estructura lineal de alto
peso molecular, constituida por unidades de N-acetil-D-glucosamina unidas por enlaces
B-D (1,4). Es altamente insoluble en agua y presenta baja reactividad. La desacetilación
parcial de quitina da lugar al quitosano, con mejores propiedades de reactividad y
solubilidad.
Esta revisión destaca trabajos recientes sobre las aplicaciones de alto valor añadido
de estos materiales en la industria alimenticia, tratamiento de agua y la agricultura. En
su estudio, hacen énfasis en la utilización de quitosano como clarificante de zumo de
jugos, debido a las propiedades coagulante que muestra este biopolímero al ayudar a
separar partículas en suspensión procedentes de bebidas, igualmente, recalcan que el
tratamiento de aguas es una de las áreas de mayor importancia, tanto la quitina como el
quitosano, debido a sus usos como coagulante primario para aguas residuales de alta
turbidez y alta alcalinidad; como floculante para remoción de partículas coloidales
sólidas y aceites, así como la captura de metales pesados y pesticidas en soluciones
acuosas.
21 Por otra parte, Fuentes y col. (2008), comprobaron la eficiencia de quitosano
obtenido de Litopenaeus schmitti como coagulante en el tratamiento de agua crudas
sintéticas para consumo humano, con turbiedades iniciales de 50, 60, 70, 80 y 90 NTU
en una planta de tratamiento del estado Zulia. En su estudio evaluaron los parámetros
turbidez, color, pH, alcalinidad antes y después de la filtración de las muestras tratadas
con quitosano (6, 12, 18, 24 y 30 ppm) y con sales de aluminio a las mismas
concentraciones. Las dosis óptimas de quitosano (6 ó 12 ppm) fueron mucho más bajas
que las de la sal de aluminio (30 ppm). Al aplicar el quitosano se obtuvieron valores de
turbidez, alcalinidad y color aceptables, oscilando los porcentajes de remoción de
turbidez entre 98,22 y 99,63%; sus resultados indicaron que el quitosano constituye una
alternativa como coagulante en la potabilización del agua.
Resultados similares, obtuvo Arancibia (2011), al evaluar la eficacia del quitosano
como agente coagulante y floculante en el tratamiento de aguas crudas para consumo
humano con dos tipos de quitosano, uno obtenido a partir de quitina (GD: 80%, Mv:
2410 Kda.) y otro por desacetilación directa de caparazones de camarón (GD: 84%, Mv:
700 Kda.). Dentro de su metodología evaluaron dos concentraciones de polímero (1 y
2% p/v en HCl 0.1M) a tres pH diferentes pH 3, pH 4 y pH 5. Sus resultados
demostraron que la capacidad del biopolímero fue mayor cuanto mayor el grado de
desacetilación y menor el peso molecular.
El rendimiento del proceso de coagulación/floculación fue determinado a partir de
los valores de turbiedad del sobrenadante (NTU) al aplicar diferentes dosis de
quitosano, siendo óptimo a concentraciones de 3-8 mg/L, a pH 3, lograron un 25% de
reducción de la turbiedad, a pH 4 un 48% de reducción y a pH 5 un 60%. Concluyendo
que el quitosano obtenido por el método indirecto como por el método directo, son
apropiados para ser utilizados como agentes coagulantes/ floculantes en el tratamiento
de aguas y que la efectividad del quitosano está altamente influenciada por el pH de la
disolución y la concentración del polímero.
22 En este orden de idea, Divakaran y pillai (2002), evaluaron la eficiencia de quitosano
como coagulante en muestras de aguas obtenidas del rio Periyar, India, con altos
contenidos de sedimentos. En su estudio, evaluaron la coagulación dentro de un rango
de pH de 4-9 y concentraciones de quitosano de 0,25; 0,5; 0,75; 1,0; 1,5 y 2,0 mg/L.
Lograron determinar que la eficacia del quitosano en la floculación dependía del pH del
medio y de su concentración. Concluyendo que era más eficaz en el rango de pH de 7,0
a 7,5, disminuyendo rápidamente a pH más alto. Una concentración de 0,5 mg/L de
quitosano redujo efectivamente la turbidez por debajo de 5 NTU sin filtración. Los
flóculos producidos fueron consistentes y formados rápidamente. El tiempo total
requerido para la floculación y la sedimentación fue de menos de 1 hora.
Ahmad y col. (2006) evaluaron la coagulación de sólidos en suspensión en efluentes
de aguas aceitosas de la extracción de aceite palma de orujo por quitosano, sulfato de
aluminio y policloruro de aluminio (PAC). La muestra contenía cerca de 10000 mg/L de
sólidos en suspensión y 2000 mg/L de aceite de orujo. El rendimiento del quitosano se
comparó con el alumbre y el PAC. Los resultados obtenidos demostraron que el
quitosano fue comparativamente más económico y eficiente que alumbre y el PAC. Al
definir las mejores condiciones experimentales (dosis: 0,5 g/L, 15 minutos de mezcla a
100 rpm, tiempo de sedimentación: 20 min y pH 4) encontraron para el quitosano más
del 95% de eliminación de sólidos suspendidos. Para el alumbre y el PAC las dosis
óptimas fueron de 8,0 y 6,0 g/L, respectivamente, a 30 minutos de tiempo de mezcla a
100 rpm, 50 y 60 minutos de sedimentación, respectivamente, y el pH de 4,5 para
obtener el mismo porcentaje de remoción encontrada por quitosano.
Por otra parte, Zemmouri y col. (2012), evaluaron las propiedades coagulantes del
sulfato de aluminio y quitosano comercial en muestras de agua cruda del rio Keddara,
Argeria, aplicando un test de coagulación/floculación. El quitosano se añadió a unas
dosis de 0,1; 0,2; 0,3 hasta 10 mg/L, respectivamente. Se llevaron a cabo otras pruebas
con sulfato de aluminio a 10, 20, 30, 40, 40, 50, y 60 mg/L. Los resultados mostraron
que el quitosano no fue tan eficiente como el alumbre, en la remoción de impurezas,
cuando lo utilizaron como coagulante primario. Cuando el quitosano se aplicó como
agente auxiliar de coagulación con sulfato de aluminio, se logró la remoción de turbidez
23 más alta (97%) utilizando una concentración de 0,2 mg/L de quitosano. Concluyeron
que la eficiencia del quitosano es altamente dependiente de la turbidez inicial y la dosis
utilizada.
Estas investigaciones sirvieron de bases para establecer las condiciones
operacionales, procedimientos y demás variables en las pruebas de coagulación
floculación, así como referencia a los resultados obtenidos.
A continuación se presentan definiciones que hacen parte del marco conceptual que
representa este capítulo, relacionados principalmente con el tratamiento de salmuera y
el uso de quitosano como coagulante.
2.1 Características y propiedades químicas del cloruro de sodio
El Cloruro de sodio es uno de los compuestos químicos más utilizado en el mundo
entero, es conocido como sal de mesa, y juega un papel muy importante en la
alimentación humana. Gilbert y Heiser. (2005), establecen que su molécula está
compuesta en masa de 40% de sodio y 60% de cloruro. En este mismo orden de idea,
Burriel y col. (2001) citado por Estrada (2007), define al sodio (Na) metálico como un
elemento de color blanco argentino, con visos de color rosa, mientras que para el cloro
(Cl), establece que es un gas diatómico, (Cl2), color amarillo verde, muy irritante para el
sistema respiratorio.
Brown y col. (2004) citados por Estrada (2007), establecen que cuando el sodio
elemental reacciona con cloro elemental, un electrón se transfiere de un átomo neutro
de sodio a uno neutro de cloro, formando un ión Na+ y un ión Cl- y con esto las
partículas con cargas opuestas se atraen, uniéndose para generar el compuesto cloruro
de sodio (NaCl), según lo ilustrado en la Figura 1.
24
Figura 1. Formación del compuesto iónico cloruro de sodio (Fuente: Burriel y col, 2001)
2.1.1 Usos de sal en la industria alimenticia
La sal es altamente utilizada en la industria de alimentos. En el mundo, el consumo
promedio de sal en general supera los 6 g/d; en muchas poblaciones, constituyendo el
promedio en la mayor parte de los países en el rango de 9 a 12 g/d. En las zonas muy
desarrolladas, cerca del 75% de la sal proviene de los alimentos procesados; en las
zonas menos desarrolladas, hasta el 70% de la sal puede provenir de la sal agregada
discrecionalmente durante la cocción de los alimentos o en la mesa (Campbell y col.
2012). Hutton (2002), señala que las principales funciones de la sal en la fabricación de
productos alimenticios y de bebidas, se pueden dividir en tres amplias categorías, estas
son:
• Propiedades sensoriales (intensificador de sabor)
• Preservación de alimentos
• Funciones tecnológicas de procesamiento
2.1.1.1 Uso de sal como agente preservante La mayoría de los alimentos son preservados mediante procesamiento térmico,
congelación, secado, fermentación o refrigeración. Destaca Desrosier (1998), citado por
Estrada (2007), que algunas veces se utilizan también los preservantes químicos,
cuando al producto no pueda dársele un tratamiento térmico adecuado, o como
25 complemento a otro método de preservación para reducir la intensidad del tratamiento,
mejorando la textura y calidad organoléptica u otra propiedad.
De la misma manera, Desrosier (1998) y Hutton (2002), señalan que la sal puede
actuar de varias formas para inhibir el crecimiento microbiano y preservar el alimento, la
más conocida es reduciendo la cantidad de agua disponible a los microorganismos para
los procesos de crecimiento; en este efecto, la naturaleza fisicoquímica de la sal es
importante, porque otros compuestos que pueden aumentar la presión osmótica al
mismo nivel de la sal, no son tan eficaces en la reducción de la actividad de agua.
De acuerdo a lo indicado por Guinee (2004), la sal junto con el pH deseado, la
actividad de agua y el potencial redox, contribuye en la preservación en quesos,
previniendo el crecimiento de microorganismos patógenos, lo cual reduce las pérdidas
de productos. Por otra parte, Dalgaard y Jorgensen (2000) señalan que la sal tiene un
efecto complementario en la conservación de alimentos con tratamiento de atmósfera
modificada, los mismos autores agregan que además de utilizar temperaturas inferiores
a 5ºC, la aplicación de sal en forma de salmuera influye en la duración de camarones,
prolongando ostensiblemente su vida útil por un periodo mayor a 7 meses, en
comparación a los 4 a 5 días de duración de este producto marino.
2.1.1.2 Uso de sal como intensificador del sabor En cuanto al uso de la sal como intensificador del sabor, destaca Fennema (2000)
citado por Estrada (2007), que el cloruro de sodio proporciona la característica del
sabor salado típico a los alimentos, donde el catión sodio Na+ produce un sabor salino,
en cambio los aniones presentes en los alimentos inhiben los sabores salados y
además tienen su propio sabor. Entre los aniones que se encuentran en los alimentos el
ión cloruro Cl- es el menor inhibidor del sabor salino y además no contribuye al sabor.
En este mismo orden de idea, Desrosier (1998), señala que la principal función de la
sal es una intensificación del sabor, pero que la sal no debe dominar el sabor en un
producto alimenticio, sino utilizarse a tal grado que mejore el sabor natural del producto.
26 Según Hutton (2002), citado por Matthews y Strong (2005), señalan que la sal confiere
su propio sabor específico a un producto alimenticio, como también tiene efectos
importantes en realzar y modificar el sabor de otros ingredientes, un ejemplo de esto es
la reducción de la sensación de la amargura. Adicionalmente, señala que éste efecto se
relaciona probablemente en que la sal reduce la actividad de agua, como consecuencia
de esto último la sal tiene la propiedad de aumentar la concentración de otros
compuestos en la solución, realzando su volatilidad y por lo tanto su capacidad
sensorial, sin considerar que se ha encontrado que el efecto de la sal en el sabor es
específico para un mismo tipo de producto alimenticio.
Hutton (2002) citado por Estrada (2007), señala que la cantidad de sal agregada a
un alimento para los propósitos del sabor, es determinada por las preferencias del
consumidor, citando como ejemplo estudios realizados en quesos, en el que muchos de
los casos los niveles de sal han sido modificados con el desarrollo de producto a través
de muchos años, donde cada formulación es única y por lo tanto, la reacción del
consumidor a un cambio del contenido de sal probablemente va a variar de un producto
a otro.
2.1.1.3 Función tecnológica de la sal en los alimentos Algunos ejemplos tecnológicos más comunes del uso de la sal en la industria de
alimentos se muestran en la Tabla 1, sin embargo, destaca Estrada (2007), que existen
numerosos estudios específicos para productos alimenticios, donde la sal es
tecnológicamente importante dentro de su elaboración.
27
Tabla 1. Funciones de la sal en la industria alimenticia
Productos Propiedades relacionadas al uso de sal
Fabricación del pan
La sal contribuye a que el gluten del trigo
sea más estable y menos extensible,
haciéndolo menos pegajoso. La sal
también afecta el índice de la
fermentación, reduciendo el índice de
producción del gas (CO2).
Carne y productos cárnicos
La sal es agregada a productos cárnicos
por diversos motivos.
La sal intensifica la capacidad de
retención de agua en productos cárnicos
después de ser cocinados, y tiene un
efecto de ablandamiento sobre la carne
cruda. También aumenta la estabilidad
de la emulsión en productos
reestructurados.
Queso
El salado regula la actividad de los
microorganismos en la maduración de
los quesos, influye en la actividad
enzimática y tiene un efecto directo en el
contenido en agua del queso durante la
maduración.
28
Tabla 1.Funciones de la sal en la industria alimenticia (Continuación)
Productos Propiedades relacionadas al uso de la sal
Vegetales fermentados
La sal ayuda a controlar la flora
microbiológica en el sauerkraut (repollo
fermentado), pickles y productos similares,
ayudando a proporcionar las condiciones
para el tipo y el índice de la fermentación
requeridos. También afecta a los cambios
de la textura en estos productos, y tiene
efectos químicos específicos en las
cebollas conservadas en vinagre.
Productos pesqueros
La sal se utiliza en la limpieza de
pescados antes de los procesos de
conservas y reduce la cantidad de
“exudado” (el líquido que se pierde durante
la cocción) en el producto.
Fuentes: Estrada (2007)
2.2 Descripción del proceso de obtención de sal recristalizada al vacio
2.2.1 Recepción y almacenamiento de materia prima
La materia prima utilizada para la obtención de sal recristalizada es la sal bruta
provenientes de las salinas autorizadas, esta se presenta bajo la forma de sal bruta
lavada y/o sin lavar, siendo transportada a granel hasta la planta. Luego, se almacena
en un galpón al aire libre, sin riesgo de contaminación.
29 2.2.2 Preparación de salmuera
Esta zona está constituida por unos tanques de concreto donde será preparada la
salmuera y luego será bombeada a la zona de evaporación. Estos tanques tienen
divisiones internas con la finalidad de darle retención al producto y de alguna manera
extraerle a la misma todas las impurezas que contenga. El inicio del proceso se realiza
cuando a través de un cargador frontal se descarga la salmuera hasta el tanque
principal, donde la sal se disuelve con presión de agua provocada por las turbinas
respectivas, y así convertir la sal en salmuera.
En un primer paso se extrae las impurezas de mayor tamaño (piedras, arenas, otros),
en un segundo paso se procede a la dosificación de productos químicos aceleradores
de decantación e incrementador de pH, los cuales al formar flóculos atrapan o
secuestran los sedimentos menores y en trayecto del recorrido van sedimentándose.
Una vez que la salmuera está en el último compartimiento de los tanques, deberá estar
a una concentración de 21 grados Baume mínimo y su estado físico tiene que ser
cristalino, para ser bombeado a la zona de evaporación (Indusalca, 2006).
2.2.3 Zona de evaporación
En esta zona se hace la conversión física de la sal transformándola del estado
líquido a un estado sólido, para ello existen dos líneas de evaporación de triple efecto,
cada línea se interconecta entre sí para dar paso al cambio de la salmuera del estado
liquido a estado sólido. Un sistema de evaporación de triple efecto está compuesto por
tres cuerpos de evaporación, tres cuerpos de calentamiento o intercambiadores de
calor y un condensador barométrico.
El proceso se inicia una vez que el tanque desaireador distribuya la salmuera a
través de cada línea, siendo succionada por la bomba de recirculación enviándola al
intercambiador, donde es calentada y enviada al evaporador en cuyo punto realmente
ocurre la evaporación (Figura 2).
30 Este sistema de evaporación trabaja al vacio producido por un condensador
barométrico, el cual tiene como finalidad crear un vacio para así poder evaporar el
producto a temperaturas por debajo de los 100 ºC, de manera que tal que a medida que
aumente el vacio la temperatura para evaporarse la salmuera disminuya en cada
efecto.
La función del conjunto de evaporación es formar los cristales de sal de manera tal
que en la separación de fases se tenga agua de condensado por un lado y sal por el
otro. El condensado formado desde el primer y segundo efecto es enviado a los
tanques de salmuera y al tanque de agua de las calderas, y el del tercer efecto es
desechado en el canal de retorno de agua de enfriamiento (Indusalca, 2006).
Figura 2. Diagrama de procesos de producción de sal por recristalización al vacio
Fuente: Indusalca (2006)
31 2.2.4 Zona de secado
El producto evaporado proveniente de los tres efectos es recolectado en un tanque,
denominado tanque de papilla, desde donde es bombeado o transferido hacia el tanque
espesador, punto en el cual realmente se asientan los cristales de sal, a la salida de
este tanque son añadidos los productos químicos, así mismo por gravedad se alimenta
a una centrifuga, en el cual se separa el 3% de humedad y alimenta al secador de lecho
fluido. El agua es recolectada en la centrifuga y enviada nuevamente al tanque de
salmuera para aprovechamiento de la misma. En el secador el producto es calentado
con aire caliente hasta una temperatura de 170 ºC máximo, obteniendo una sal refinada
al 0,2 % máximo de humedad.
2.2.5 Ensilado y ensacado
Al salir del secador, la sal a través de un tornillo sin fin y un elevador de cangilones
es transportada a los silos de empaques.
2.3 Descripción de tratamiento primario: Coagulación – Floculación
Durante el proceso de clarificación de salmuera, se encuentran presentes ciertas
impurezas suspendidas imposibles de sedimentar por gravedad. Generalmente las
partículas suspendidas que en conjunto contribuyen a la turbiedad y al color de las
aguas naturales, poseen cargas eléctricas que normalmente son negativas. Las cargas
eléctricas de las partículas generan fuerzas de repulsión entre ellas, por lo cual se
mantienen suspendidas y separadas. Es por esto que dichas partículas no sedimentan
(Huang y col. 2008).
La estabilidad de los coloides depende de su tamaño y propiedades eléctricas, y
está afectada por la naturaleza química del medio de dispersión. Para remover los
coloides es necesario que sean desestabilizados de algún modo. Con este fin son
ideados los procesos de coagulación, que básicamente consiste en una serie de
reacciones físicas y químicas entre los coagulantes, la superficie de las partículas, la
32 alcalinidad del agua y el fluido mismo.
Arboleda (2000), define el proceso de coagulación-floculación, como aquel por el
cual las partículas se aglutinan en pequeñas masas con peso especifico superior al del
agua llamadas flóculos. Weber (1975), considera a la coagulación como el efecto
producido por la adición de un producto químico a una dispersión coloidal, que se
traduce en la desestabilización de las partículas por una reducción de aquellas fuerzas
que tienden a mantenerlas juntas. Tan pronto como se agregan coagulantes a una
suspensión coloidal, se inician una serie de reacciones hidrolíticas que adhieren iones a
la superficie de las partículas presentes en la suspensión, las cuales se unen por
sucesivas colisiones hasta formar flóculos que crecen con el tiempo.
Dicho proceso se usa para:
• Remoción de turbiedad orgánica o inorgánica que no puede sedimentar
rápidamente.
• Remoción de color verdadero y aparente.
• Eliminación de bacterias, virus y organismos patógenos susceptibles de ser
separadas por coagulación.
• Destrucción de algas y plancton en general.
• Eliminación de substancias productoras de sabor y olor en algunos casos y de
precipitados químicos suspendidos o compuestos orgánicos en otros.
Mientras que para la floculación el mismo autor considera, que al revés de la
coagulación, donde la fuerza primaria es de tipo electrostático o interionico, la
floculación se debe a un mecanismo de formación de puentes químicos o enlaces
físicos. Desde el punto de vista operativo, la floculación se consigue recurriendo a una
mezcla moderada y prolongada, que transforma las partículas coaguladas del tamaño
submicroscópico en otras suspendidas, discretas y visibles.
Los objetivos básicos de la floculación son formar partículas con peso específico
superior al del agua y compactar el flóculo disminuyendo su grado de hidratación para
33 producir baja concentración volumétrica, lo cual produce una alta eficiencia en los
procesos posteriores como sedimentación y filtración (Brostow, 2007; Pallier y col.
2010).
2.3.1 Mecanismos de coagulación
Hay que distinguir dos aspectos fundamentales en la coagulación- floculación;
La desestabilización de las partículas suspendidas, o sea la remoción de las
fuerzas que las mantienen separadas y el transporte de ellas dentro del líquido para
que hagan contacto y formen una malla tridimensional de coágulos porosos (Arboleda,
2000).
Tres mecanismos pueden actuar en el primer fenómeno: el de adsorción-
desestabilización basado en las fuerzas electrostáticas de atracción y repulsión, el del
puente químico que establece una relación de dependencia entre las fuerzas químicas
y la superficie de los coloides, y el de sobresaturación de la concentración de
coagulantes en el agua.
En el segundo aspecto debe distinguirse entre: floculación ortocinética y pericinética,
o con escala de turbulencia por encima o por debajo de la microescala de Kolmogoroff.
Las cuales se describen a continuación;
Floculación Pericinética: Contactos por el movimiento de las moléculas del líquido
(movimiento browniano) que sólo influye en partículas de tamaños menores a un
micrón. Se produce al inicio del proceso, en los primeros 6 a 10 s y es independiente
del tamaño de la partícula (Labarces, 2007).
Floculación Ortocinética: Contactos por turbulencia del líquido, esta turbulencia causa el
movimiento de las partículas a diferentes velocidades y direcciones, lo cual aumenta
notablemente la probabilidad de colisión. Efectivo sólo con partículas mayores a un
micrón. Actúa durante el resto del proceso, de 20 a 30 min (Labarces, 2007).
34 La desestabilización se puede obtener por los mecanismos fisicoquímicos siguientes
(Cárdenas, 2000):
• Compresión de la doble capa: Cuando se aproximan dos partículas semejantes, sus
capas difusas interactúan y generan una fuerza de repulsión, cuyo potencial de
repulsión está en función de la distancia que los separa y disminuye rápidamente con el
incremento de iones de carga opuesta al de las partículas, esto se consigue sólo con
los iones del coagulante. Si la distancia que separa a las partículas es superior a “L”,
entonces las partículas, no se atraen (Figura 3). “E” es la energía que los mantiene
separados.
Figura 3. Fuerzas de repulsión y atracción (Fuente: Cárdenas. (2000))
El conjunto de partículas constituye un sistema coloidal, formando una doble capa
de iones, el cual es sometido a un potencial en la superficie inferior de la doble capa,
denominado potencial Z. Este potencial tiene un valor crítico, por encima del cual los
coloides son estables, y por debajo de él, la repulsión en las partículas se reduce a un
grado tal que chocando con cierta velocidad pueden unirse y flocular.
- Adsorción y neutralización de la carga: Las partículas coloidales poseen carga
negativa en su superficie, estas cargas llamadas primarias atraen los iones positivos
que se encuentran en solución dentro del agua y forman la primera capa adherida al
coloide.
35 Cuando se adiciona un exceso de coagulante al agua a tratar, se produce la
reestabilización de la carga de la partícula; esto se puede explicar debido a que el
exceso de coagulante es adsorbido en la superficie de la partícula, produciendo una
carga invertida a la carga original (Figura 4).
Figura 4. Reestabilización de partículas coloidales (Fuente: Cárdenas. (2000))
- Atrapamiento de partículas en un precipitado: Las partículas coloidales
desestabilizadas, se pueden atrapar dentro de un flóculo, cuando se adiciona una
cantidad suficiente de coagulantes, habitualmente se hace uso de sales de metales
trivalente como el sulfato de aluminio Al2(SO4)3, o Cloruro Férrico FeCl3, y el flóculo
resultante está formado de moléculas de Al(OH)3 o de Fe(OH)3.
-Adsorción y puente: Cuando la molécula de un polímero puede adsorber una partícula
coloidal en una de sus extremidades, mientras que los otros sitios se encuentran libres
para adsorber otras partículas; se dice que las moléculas de los polímeros forman el
“puente” entre las partículas coloidales. Sin embargo, cuando hay una excesiva carga
de polímeros, los flóculos pueden re-suspenderse enturbiando el agua que está siendo
coagulada.
36 2.3.2 Factores que influyen en el proceso de coagulación El tratamiento de coagulación óptimo tiene por objeto lograr un equilibrio muy
complejo en el que están implicadas muchas variables. Así existirá un óptimo
interrelacionado de condiciones, tales como pH, turbiedad, composición química del
agua, tipo de coagulante y factores físicos del tipo de la temperatura y las condiciones
de mezclas. Estas interrelaciones son tan complejas que, en la actualidad, sobre una
base puramente teórica, es imposible predecir la dosis óptima de coagulante para un
agua dada. En consecuencia, la dosis y condiciones típicas adecuadas para lograr la
coagulación hay que determinarlas empíricamente para cada tipo de agua.
Según Aguilar y col. (2002), existen muchos factores que influyen en el proceso de
coagulación de agua, debiéndose mencionar los siguientes;
2.3.2.1 Tipo de coagulante
Normalmente no todos los coagulantes producen el mismo efecto ni llevan a cabo la
desestabilización bajo el mismo mecanismo. Hay muchos factores que influyen en el
proceso de coagulación y que varía dependiendo del tipo de coagulante, como por
ejemplo el margen de pH óptimo y la solubilidad. En cualquier caso es necesario
recurrir a una comparación experimental, teniendo en cuenta el tipo de agua a tratar y el
objetivo del tratamiento, antes de decidir por uno u otro producto.
La selección del coagulante aplicable a un agua determinada debería basarse en una
comparación experimental de su comportamiento, sin olvidar la influencia de los
factores económicos.
2.3.2.2 Contenido de material suspendido
Este factor está estrechamente relacionado con la cantidad de coagulante para
llevar el agua al óptimo de coagulación. Aunque exista cierta relación entre la cantidad
de agua bruta y la dosis de coagulante apropiada, la cantidad exacta solo puede
37 determinarse mediante ensayos (jart test, electroforesis). Aun así la cantidad puede
variar con otros factores, como tiempo de mezcla y la temperatura del agua.
El tamaño de las partículas también influyen en la cantidad de coagulante necesaria
para realizar la coagulación. Se puede notar, por ejemplo, que las materias
suspendidas muy finas son más difíciles de coagular que las partículas más grandes, y
por ello, necesitan mayor cantidad de coagulante.
2.3.2.3 pH
El pH es uno de los factores más importantes ya que va a determinar para cada
coagulante la naturaleza de las especies presentes en el agua y su solubilidad. Los
primeros investigadores del proceso de coagulación en el tratamiento de las aguas
observaron que el pH era la variable independiente más importante a considerar. Estos
investigadores establecieron sin lugar a dudas que existe para cada coagulante una
zona de pH, donde se produce una buena floculación en plazo corto y con una dosis
dada de coagulante. La coagulación debe efectuarse dentro de esta zona óptima
siempre que sea posible. La amplitud de la escala del pH está influenciada por el tipo
de coagulante, su concentración y la composición química del agua.
Cuando se deja de operar en la zona óptima para cualquier agua, se produce un
desperdicio de producto químico y descenso del rendimiento de la operación.
2.3.2.4 Salinidad
Las aguas que contienen sales en disolución afectan al proceso de coagulación
modificando los siguientes factores:
• Margen del pH óptimo
• Tiempo necesario para la floculación
• Dosis óptima de coagulante
• Coagulante residual en el efluente
38 Cuando un agua no tiene iones SO4
2- la zona óptima de pH es muy estrecha,
ampliándose con el contenido de iones sulfato. Por otra parte, el efecto de los iones
PO43- es totalmente distinto, el rango de pH óptimo se estrecha al aumentar el
contenido de dichos iones. Su actuación es desplazar la zona de coagulación óptima a
valores de pH menores.
Los iones divalentes comprimen las capas difusivas que rodean las partículas
coloidales negativas y por lo tanto reducen las fuerzas repulsivas entre ellas.
2.3.2.5 Temperatura
La temperatura es un factor limitante para el proceso de coagulación- floculación.
Por debajo de cierto valor, los rendimientos de clarificación son mediocres. Otra
influencia de la temperatura en la coagulación es su efecto sobre el tiempo requerido
para una buena formación de flóculos. Generalmente, cuanto más fría este el agua más
largo será el tiempo necesario para producir buenos flóculos con una cantidad
determinada de coagulante.
Es importante en zonas de climas muy marcados, principalmente cuando se
alcanzan temperaturas de congelación. También el rango de pH óptimo varía con la
temperatura, y decrece al disminuir esta.
2.3.2.6 Tiempo de mezcla y floculación
Al conjunto se le suele denominar periodo de coagulación y se define como el
tiempo transcurrido entre la adición de coagulante y el final de la agitación a una
velocidad que impida la decantación de materias floculadas.
El periodo de coagulación es un factor a controlar en cada proceso pues en algunas
ocasiones periodos largos favorecerán el proceso mientras que en otras pueden
provocar la ruptura de los flóculos formados. Es un factor que está muy relacionado con
La fuerza de agitación que se aplique durante dicho periodo, por lo que será necesario
39 combinar ambos factores de forma que se obtengan los mejores rendimientos a un
coste aceptable.
2.3.2.7 Fuerza de agitación
Generalmente lo que se hace es someter a las aguas a una mezcla rápida, seguida
de otra lenta. La primera tiene por misión dispersar el coagulante, y fomentar las
colisiones entre las partículas. Posteriormente lo que se hace es aumentar el tamaño de
floculo mediante una agitación lenta, durante un tiempo adecuado, que mantiene los
flóculos en suspensión y movimiento evitando su ruptura por efecto de las fuerzas de
cizalla.
2.3.2.8 Color
Es un factor a tener en cuenta a la hora de eliminar compuestos en el agua. A veces
es debido a las sales de hierro y manganeso, aunque normalmente se debe a los
compuestos orgánicos resultantes de la descomposición de la materia orgánica.
2.3.2.9 Presencia de núcleo
Las partículas sólidas en suspensión actúan como núcleos para la formación inicial
de flóculos. Es un hecho bien conocido que el agua que contiene poca turbidez coloidal
es, frecuentemente, de floculación más difícil. La presencia de partículas en suspensión
pueden influir en la velocidad de floculación y contribuye al aumento de la densidad del
floculo, dando lugar a velocidades de sedimentación superiores.
2.3.2.10 Presencia de iones
La presencia de distintos iones en el agua residual tiene especial significación,
aunque en el caso de las sales de hierro y aluminio la influencia de los aniones es
mayor que la de los cationes.
40 2.3.2.10.1 Presencia de cationes
En general los cationes divalentes ensanchan el rango de pH efectivo para la
eliminación y disminuyen la dosis de coagulante requerida para la eliminación de la
materia orgánica. Esto se debe presumiblemente a lo complejo de algunos grupos
orgánicos funcionales.
En el tratamiento de aguas residuales en medio alcalino hay que tener en cuenta la
presencia e influencia de los iones Ca2+ y Mg2+. Según los niveles de Ca2+, Mg2+ y
HCO3-, pueden estar presentes cantidades considerables de Ca2+, CaCO3 y Mg (OH)2,
que pueden influir sobre el proceso de coagulación- floculación de forma importante.
2.3.2.10.2 Presencia de aniones
Si el anión se puede coordinar fuertemente con el ion metálico y no es desplazado
fácilmente por iones OH, el pH óptimo para la desestabilización disminuye rápidamente
con el aumento de la concentración del anión. Si el anión es fácilmente desplazado por
el ion OH, el pH óptimo aumenta con un anión de tipo muy básico y disminuye con uno
débilmente básico. Cuando el anión se coordina débilmente con el ion metálico, ejerce
solo ligeros efectos de disminución de los valores de pH óptimo.
2.4 Tipos de coagulantes existentes El avance tecnológico en química de polímeros ha permitido el desarrollo de la
tecnología de la floculación proveyendo de polímeros orgánicos y polielectrólitos con
alta eficiencia.
Existen dos clases de materiales usados en el proceso de coagulación-floculación:
-Coagulantes inorgánicos y orgánicos que incluyen aditivos minerales como sales de
calcio; sales metálicas como cloruro férrico o sulfato de aluminio; metales pre-
hidrolizados como policloruro de aluminio y polielectrólitos.
41
-Floculantes orgánicos que incluyen polielectrólitos catiónicos y aniónicos, polímeros
no iónicos, polímeros anfotéricos e hidrofóbicamente modificados y floculantes
naturales como almidón, goma guar, taninos, alginatos entre otros.
Los biopolímeros constituyen uno de los sustitutos potenciales a los floculantes
inorgánicos especialmente aquellos que se comportan como polielectrólitos catiónicos
capaces de coagular partículas cargadas negativamente no solo a través de puentes o
fuerzas electrostáticas, sino también a través de interacciones hidrofóbicas (Parazak y
col, 1988), el quitosano, polielectrólito catiónico, es un promisorio agente para
purificación de agua como se ha reportado en recientes patentes (Renault. 2009).
2.5 Quitosano
Sastoque y col. (2007), establecen que la quitina es la sustancia orgánica más
abundante en la naturaleza después de la celulosa, es un biopolímero lineal (Figura 5),
altamente insoluble en agua, propiedad esta que limita sus aplicaciones; se disuelve
rápidamente en ácidos concentrados, en algunos fluoroalcoholes y soluciones al 5% de
cloruro de litio, lo que la hace poco práctica para su aplicación y presenta baja
reactividad (Investigación y Desarrollo. 2010).
Por otra parte, su fácil obtención (subproductos de las industrias pesqueras), fuente
naturalmente renovable, no tóxica y no alergénica; además, antimicrobiana y
biodegradable (Gildberg y Stenberg. 2001), lo convierten en un biopolímero de alta
demanda mundial.
42
Figura 5. Estructura molecular de la quitina (Fuente: Lárez, 2003)
El quitosano es la forma N-desacetilada de la quitina (Figura 6), es una modificación
de la quitina y posee mejores propiedades de reactividad y solubilidad. Se obtiene al
sustituir los grupos acetamido de esta por grupos amino, al tratar la quitina con álcalis
fuertes (Mármol. 2004). Se ha descrito como un polímero catiónico lineal,
biodegradable, de alto peso molecular, de fácil aplicación y ambientalmente amigable
(Lárez, 2006) (Niquette y col. 2004).
.
Figura 6. Estructura molecular del quitosano (Fuente: Lárez, 2003)
Otra de sus propiedades es su fácil disolución en soluciones diluidas de la mayoría
de los ácidos orgánicos tales como: ácido fórmico, acético, cítrico y tartárico, y también
en ácidos minerales diluidos a excepción del ácido sulfúrico (Gauna y Núñez. 2004). Su
grado de desacetilación (DD) varía desde un 60% hasta un 90% y los pesos
moleculares (MW), se reportan de 50 hasta 2000 KDa, atribuyéndose esta
heterogeneidad a la falta de control durante el procesamiento (Ramírez y col, 2002).
P
conch
de co
ácidos
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clorur
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L
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44 Lo expuesto tiene su basamento, en los señalamientos de Gacén y Gacén (1996), al
describir que la presencia de los grupos amino en la estructura del quitosano confieren
la capacidad para coagular sustancias coloidales, además su uso permite aumentar la
acción de coagulantes inorgánicos convencionales, también como floculante para
remoción de partículas coloidales sólidas y aceites, y para la captura de metales
pesados y pesticidas en soluciones acuosas (Larez, 2006). Se agrega, que se ha
demostrado su efectividad como coagulante en una variedad de aguas residuales
industriales, tales como las avícolas, lácteas, industrias de alimentos, cárnicas (No y
Meyers. 2000), y además en la clarificación de pulpas de frutas (Castro y col. 2012), sin
embargo, su uso en salmueras no se ha demostrado.
Siguiendo en este mismo orden de idea, expone, el quitosano tiene una gran
capacidad para fijar moléculas tales como pesticidas, colorantes y proteínas. El grupo
amino del quitosano le confiere una mayor afinidad para formar complejos con metales
de transición que otros polisacáridos naturales, tales como celulosa. Con el fin de
proporcionar una mayor selectividad en la fijación de metales pesados, se ha
sintetizado una gran variedad de derivados de quitosano (Rodríguez, 2011; Mesquita
2005).
Según Lárez (2003), citado por Rodríguez (2011), se puede aplicar como agente
floculante y coagulante, en el tratamientos de flotación para la remoción de aceite de
pescado en agua, agentes filtrantes para piscinas y spas, remoción de metales,
remoción de surfactantes, entre otros. Señala Renault y col (2009), que el quitosano se
ha empleado en el tratamiento por coagulación-floculación de aguas crudas para
potabilización y aguas residuales industriales (fábrica de papel y pulpa, fabricación de
aceite de oliva, cervecerías y procesamiento de leche, entre otros).
Explican Bratskaya y col. (2004), que el quitosano y sus derivados han sido efectivos
en el tratamiento de agua con altos contenidos de ácidos húmicos y en la remoción de
turbidez de suspensiones de partículas coloidales como látex y caolinita, para remover
aceite de pescada, metales y surfactantes.
45 En Venezuela, el empleo del quitosano como coagulante-floculante podría permitir
un mejor uso de la gran cantidad de desechos generados por la actividad pesquera en
la Costa Oriental del Lago de Maracaibo, ya que de los camarones recolectados en esta
zona se aprovecha aproximadamente el 47% del peso bruto, correspondiendo el 53%
restante a cabezas y conchas, las cuales suelen desecharse.
46
CAPÍTULO II
MARCO METODOLÓGICO
En este capítulo se describe el procedimiento experimental utilizado para la
caracterización fisicoquímicas de los parámetros: cloruro de sodio, calcio, sulfatos, pH,
carbonatos, turbidez, dureza total, material insoluble y color en salmuera.
Seguidamente, el procedimiento establecido y las condiciones operacionales (dosis de
quitosano, pH y temperatura), para el desarrollo de las pruebas de coagulación y
floculación en el tratamiento de salmuera.
3 Procedimiento experimental
3.1 Preparación de muestras de coagulantes La muestra de quitosano (BIOFLOC BPQ-12) comercial, extraída del exoesqueleto
de las conchas de camarón con grado de desacetilación de 85%, presentó una
concentración inicial de 25000 ppm, la cual se disolvió hasta obtener una concentración
de 1000 ppm. Ficha técnica (Anexo 1).
Para la preparación de poliacrilamida aniónica comercial (Macnafloc LT27), de
apariencia en polvo, se disolvieron 0,1 gramos de muestras en 100 mL de agua
destilada, la cual se agitó por dos horas en un agitador magnético para homogenizar la
solución. Ficha técnica (Anexo 2).
3.2 Preparación de salmuera Se recolectaron 60 Kg de muestras de sal bruta del tipo A (no lavada), en los
depósitos de almacenamiento de materia prima provenientes de la salina y refinería los
Olivitos. Se pesaron 300 g de muestra de sal bruta por cada 1000 mL de agua
47 previamente seleccionada. Midiendo peso de muestra y volumen de agua, se agitó
vigorosamente hasta obtener la concentración deseada.
Para la determinación de la concentración salina en grados Baume (º Be), se realizó
la medición en un pesa sal, para lo cual, se tomaron 1000 mL de Salmuera ya tratada,
una vez estabilizado el equipo del pesa sal, se tomó la lectura del mismo (Román,
2011).
3.3 Determinación de los parámetros fisicoquímicos de muestra de salmuera
concentrada
Para la caracterización de salmuera se determinará su contenido de cloruro de
sodio, contenido de calcio, dureza total, sulfatos, pH, carbonatos, turbidez, material
insoluble y color, siguiendo la metodología sugerida en la norma Covenin 179:1995
para sal comestible y el método estándar para análisis de Agua ( APHA-AWWA-WEF -
2000)
3.3.1 Determinación del contenido de cloruro de sodio
Para la determinación del contenido de cloruro de sodio, se utilizó la metodología
establecida en la norma Covenin 179:1995. Para ello, se tomó una alícuota de 10 mL
de solución de salmuera previamente disuelta en 250mL de agua destilada. Se adicionó
3 o 4 gotas de solución indicadora de cromato de potasio al 5%. Luego, se tituló con
solución de nitrato de plata 0,1N hasta cambiar de color al rojo ladrillo.
Para la preparación de un blanco usando 5 mL de agua destilada. Se agregó 3 ó 4
gotas de solución indicadora de cromato de potasio al 5 %. Luego, se tituló con solución
de nitrato de plata 0,1 N hasta cambiar de color al rojo ladrillo.
48 Expresión de los resultados:
El contenido de cloruro de sodio para salmuera se calculó mediante la ecuación 01:
( / ) = 0,05845 ∗ ∗ ( 1 − 2) ∗ 1000
Donde: NaCl = contenido de cloruro de sodio en porcentaje.
N = normalidad de la solución de nitrato de plata.
V1 = volumen de la solución de nitrato de plata gastado en la titulación de la
muestra en mL
V2 = volumen de la solución de nitrato de plata gastado en la titulación del
blanco, en mL
M = masa de la muestra en mL
3.3.2 Determinación del contenido de calcio
Para la determinación del contenido de calcio, se tomó una alícuota de 25mL de
salmuera previamente diluida (10mL en 250 mL de agua). Se adicionó una pizca de
murexida y 2mL de hidróxido de sodio 2N. Luego, se tituló con una solución de EDTA
0,01N hasta obtener un ligero color violeta. Los resultados se calcularon según la
ecuación 02.
( / ) = ∗ ∗ 0,40
Donde:
mL EDTA = Mililitros de solución de EDTA gastado.
Factor EDTA= Se determina titulando una solución desconocida de EDTA
…..Ec (01)
…Ec (02)
49 Para la solución conocida de calcio, su procedimiento fue el siguiente:
Se pesó 4 g de EDTA y se aforó en 1000 mL en un balón volumétrico. Previamente
se preparó una solución valorada de carbonato de calcio pesando 1 g de CaCO3 en
polvo para análisis, secado a 105 ºC por día, se pasó este a un matraz volumétrico de
500 mL y se añadió ácido clorhídrico 1:1 hasta la disolución del CaCO3. Se adicionó
200 mL de agua destilada y se dejó hervir hasta expulsar el CO2. Luego, de enfriar la
solución, se agregó unas gotas de rojo de metilo para ajustar el color a anaranjado
agregando amoniaco 3N o HCL 1:1 según sea necesario. Se transfirió esta solución a
un matraz aforado de 1 L y sé aforo a 1000 mL.
Esta solución es equivalente a 1000 mg de CaCO3 por 1 mL y se tituló con la
solución desconocida del EDTA. El factor EDTA, se determinó según la siguiente
expresión;
= 10 3
3.3.3 Determinación del contenido de dureza total
Para la determinación del contenido de dureza total, se tomó una alícuota de 10mL
de solución de salmuera previamente disuelta (10 mL en 250mL de agua destilada). Se
adicionó una pizca de eriocromo T y 1 mL de solución amortiguadora buffer. Se agitó,
para luego titular con una solución EDTA 0,01 N hasta cambio de color celeste.
Expresión de los resultados:
( / ) = ∗ ∗ ,
…..Ec (03)
…Ec (04)
50
3.3.4 Determinación del contenido de carbonatos Para la determinación del contenido de carbonatos, se tomó una alícuota de 10mL
de solución de salmuera previamente disuelta en 250mL de agua destilada. Se adicionó
2 gotas de solución indicadora de anaranjado de metilo. Luego, se tituló con solución de
ácido sulfúrico 0,02 N hasta cambio de color rojo.
Expresión de los resultados:
Donde:
mL H2SO4= Mililitros de acido sulfúrico gastados
N (H2SO4)= Normalidad de acido sulfúrico utilizado
3.3.5 Determinación de pH El pH se determinó a través del método potenciométrico, usando un pH-metro (Orion
Research 611), con electrodo de vidrio, calibrado con soluciones buffers de pH 4 y 7.
Se tomaron 50 mL de muestra en un matraz de 250 mL, se introdujó el electrodo del
pH-metro hasta obtener la lectura constante.
3.3.6 Determinación de turbidez Para medir la turbidez se tomaron 10 mL de la muestra previa agitación y se llevaron
al Hatch DR-2000, seleccionando el método correspondiente, a una longitud de onda de
450 nm, calibrado con el blanco (agua destilada), arrojando la medida de la turbidez.
1000 *030.0,*)(* 4242
mL salmueraSOHNSOmL H=CO3 (mg/L) …Ec (05)
51 3.3.7 Determinación de material insoluble
El contenido de la materia insoluble se expresa en porcentaje y se calculó con la
siguiente expresión:
Donde:
= peso del filtro vacío.
= peso del filtro + insoluble.
3.3.8 Determinación de color Para determinar color se tomaron 10 mL de la muestra previa agitación y se llevó al
equipo Hatch DR-2000, seleccionando el método correspondiente, a una longitud de
onda de 455 nm, calibrado con el blanco (agua destilada), arrojando la medida de color.
3.3.9 Determinación de contenido de sulfatos
Se determinó por el método turbidimétrico. Para ello, se tomo 10 mL de salmuera
disuelta en 100 mL de agua destilada, se agrego una pizca de cloruro de bario y 2 mL
de solución buffer. Luego, se determinó la turbidez según el punto 3.3.6, y mediante la
curva de calibración se obtuvo su valor.
3.4 Proceso de coagulación y floculación en tratamiento de salmuera utilizando como
coagulante quitosano comercial
3.4.1 Condiciones para el desarrollo de la prueba de jarras Los valores de las variables y demás condicionantes que intervienen en la prueba de
jarras, se establecieron con base a la revisión bibliográfica y ensayos previos
100*)(
lub% 12
aPesomuestrPP
lesinso−
=
1P
2P
….Ec (06)
52 relacionados con la presente investigación.
3.4.2 Velocidad y tiempo de mezcla rápida
La mezcla rápida dura pocos segundos, durante este lapso el coagulante debe ser
agregado sobre la solución, la misma debe tener una velocidad alta de agitación, que
permita dispersar el coagulante. La velocidad se estableció en 100 rpm (revoluciones
por minuto) y un tiempo de 2 minutos (Norma ASTM No. D2035-80, 2003).
3.4.3 pH
Previamente a la prueba de jarras, el potencial de hidrógeno de la muestra se ajustó
a 3 valores distintos, con adición de ácido clorhídrico (0,1 N) y soda caústica (10%):
- pH: 5,10
- pH: 7,30
- pH: 9,5
3.4.4 Temperatura
Previamente a la prueba de jarras, la temperatura de la muestra se ajustó a 3
valores distintos:
- T1 (ºC): 27ºC±1
- T2 (ºC): 38ºC±1
- T3 (ºC): 42ºC±1
53 3.4.5 Velocidad y tiempo de mezcla lenta
Se estableció una velocidad baja de 30 rpm (revoluciones por minuto) por un tiempo
de 15 min. Posteriormente se dejó sedimentar por un periodo de 60 min (Norma ASTM
No. D2035-80, 2003).
3.4.6 Dosificación de quitosano
Previamente a los análisis de la presente investigación, se evaluaron
concentraciones de quitosano en el rango de 0 ppm hasta 38 ppm, disminuyendo el
rango de estudio a 0 ppm, 16 ppm y 22 ppm, con dos repeticiones.
3.4.7 Procedimiento para el proceso de coagulación/ floculación con quitosano como
coagulante
La evaluación de la coagulación se llevó a cabo utilizando un aparato de prueba de
jarra modelo PB-700 (Figura 8); se agregó 1 L de muestra de salmuera, a cada uno de
los seis vasos de precipitado de 1000 mL, tomando un vaso de cada bloque como
control. El procedimiento detallado es el siguiente:
Figura 8. Equipo de jarra para determinar dosis óptima de quitosano. Fuente: Propia
54
• Se colocó el agitador a una velocidad de 100 rpm (Mezcla rápida).
• Se agregó las concentraciones de quitosano 0 ppm, 16 ppm y 22 ppm.
• Después de agregar el coagulante, se mantuvo la agitación de 100 rpm durante
2 minutos (Mezcla rápida).
• Luego de transcurrido el minuto de mezcla rápida, se pasó a una agitación de 30
rpm y se agitó con esta velocidad durante unos 15 minutos (Mezcla lenta).
• Al finalizar la agitación lenta, se suspendió la agitación y se sacaron las paletas
del equipo, de los vasos, se dejó reposar las muestras coagulantes durante 60
minutos.
• Pasado este periodo de tiempo se tomaron muestra del sobrenadante para sus
posteriores análisis. Para determinar las condiciones óptimas operacionales se consideró la menor
concentración de quitosano que remueva la mayor proporción de los parámetros de
turbidez, carbonatos, dureza total y disminución de color.
3.4.8 Procedimiento del proceso de coagulación- floculación utilizando poliacrilamida
aniónica
Para el polímero sintético poliacrilamida (MAGNAFLOC LT27AG), se estableció las
condiciones operacionales existentes en el tratamiento de salmuera, a un pH de 10,5 y
dosis de poliacrilamida de 0 ppm, 2 ppm y 4 ppm. El procedimiento de test de jarra fue
el mismo al utilizado con quitosano como coagulante. Una vez transcurrido el tiempo de
sedimentación se determinaron los mismos parámetros al realizar las pruebas con
quitosano comercial.
55 3.5 Procesamiento estadístico de los datos obtenidos Para evaluar la significancia de los efectos simples (pH, temperatura y concentración
de quitosano) se utilizó la prueba de Kruskall-Wallis (Siegel y Castellan, 2001). Esta
prueba se empleó como alternativa al Análisis de Varianza (ANOVA) Factorial, que
calcula las significancias en un diseño de tres factores con tres niveles (33) y sus
interacciones, pero que no se pudo aplicar en este trabajo porque no se cumplieron los
supuestos requeridos de independencia, aleatoriedad y normalidad. La prueba de
Kruskall-Wallis permite obtener la significancia estadística de los efectos simples (pH,
temperatura y concentración de quitosano), pero no permite evaluar la significancia de
las interacciones entre estos factores, la cual sólo fue explorada de forma gráfica
cualitativa en búsqueda de tendencias.
La prueba de Kruskall-Wallis produce una significancia estadística que se presenta
como una probabilidad (p): cuando ésta es alta (>0,05); se mantiene la hipótesis nula de
que todos los tratamientos a comparar tienen un nivel medio (mediana) similar y por lo
tanto, el factor estudiado no tiene efecto. Por el contrario, cuando la probabilidad es
menor o igual a 0,05; el factor tiene un efecto significativo sobre la variable que se está
evaluando.
Luego de aplicar la prueba, es necesaria una comparación a posteriori para
determinar cuál o cuáles tratamientos difieren entre sí. Esta comparación, así como la
prueba de Kruskall-Wallis fueron realizadas con el programa Statistica para Windows
(StatSoft 2007), con el cual también se visualizaron los valores medios de los
tratamientos utilizando gráficos de “Caja y bigotes” o “Cajas gráficas” (Box Plots). Estos
gráficos representan con un punto el nivel medio de cada tratamiento, con una caja que
se extiende verticalmente la variabilidad de cada tratamiento, y con proyecciones
(“bigotes”) verticales, los valores mínimo y máximo de cada tratamiento.
Para comparar la condición en la que se obtuvieron los mejores resultados en el
tratamiento de la salmuera con un tratamiento en el que se utilizó poliacrilamida como
coagulante, se empleó la prueba t de Student (Daniel, 2002) que compara las medias
56 de ambos tratamientos. Previo a la prueba es necesario conocer si ambos grupos a
comparar tienen varianzas similares, es decir, si hay homocedasticidad, para decidir si
se emplea la prueba aplicada a situación de homocedasticidad o heterocedasticidad
(Daniel, 2002). Estos análisis también fueron realizados con el programa Statistica para
Windows.
57
CAPÍTULO IV
ANÁLISIS Y DISCUSIÓN DE RESULTADOS
A continuación se presentan los resultados obtenidos durante la parte experimental
de esta investigación, su análisis y discusión. En este se encuentran las características
fisicoquímicas en salmuera con fines alimenticios, condiciones operacionales (dosis de
quitosano, pH y temperatura), y su efecto sobre los parámetros turbidez, color,
carbonatos, dureza total y sulfatos. Finalmente se presenta los resultados obtenidos
utilizando una poliacrilamida sintética.
4.1 Características fisicoquímicas en salmuera destinada a la obtención de sal para
consumo humano
La sal bruta provenientes de las salinas presentan una serie de impurezas desde
piedras, elementos contaminantes como material insoluble, sólidos disueltos y en
suspensión, cloruro de magnesio, carbonato de calcio, sulfato de calcio, sulfato de
magnesio, entre otros; causantes de su baja pureza (alrededor del 97%), lo cual infiere
en la calidad del producto final (Sal de mesa) (Indusalca, 2006). Igualmente su
composición, altera la humedad del producto, generando rechazos en las empresas de
alimentos, donde la sal constituye un aditivo esencial. La norma venezolana Covenin
179: 1995, establece como porcentaje mínimo de cloruro de sodio para sal fina refinada
de 98,5%.
En la Tabla 2, se muestran los resultados obtenidos en la caracterización
fisicoquímica de salmuera preparada con una concentración salina inicial de 23º Be,
concentración necesaria para llevar a cabo la evaporación y recristalización de sal con
fines alimenticios. Al comparar estos valores con los manejados en la planta de
tratamiento de salmuera, se observa que la turbidez se encuentran muy por encima del
parámetro establecido (menor de 10 NTU), esto indica la necesidad de mejorar su
58 procesamiento, a fin de garantizar una salmuera que cumpla con los más altos
estándares.
Tabla 2. Características fisicoquímicas en muestra de salmuera
Parámetro Salmuera x ± s
Valor referencia
(Tratamiento de salmuera)
Cloruro de sodio (mg/L) 287360 ±0,61 NR
Turbidez (NTU) 160±0,25 <10*
Color (UC) 981±1,73 NR
pH 7,34±0,06 NR
Carbonatos (mg/L) 3630±0,17 1000*
Sulfatos (mg/L) 920±0,019 NR
Materia insoluble (%) 0,033±0,005 NR
Dureza total (mg CaCO3/L)
9051±0,041 1000*
Calcio (mg/L) 4500±1,52 NR
*Valores de referencia tomados del Manual de Gestión de calidad. INDUSALCA (2006). x: promedio. s: desviación estándar. NP; No reportado
La determinación de color no está contemplada como un parámetro representativo
en el tratamiento de salmuera. No obstante, Rodríguez (2011), considera que su
medida es importante, pues constituye una de las características organolépticas
determinante, que puede indicar la remoción de otros parámetros de interés. Asimismo,
su análisis en el proceso de coagulación-floculación puede dar una idea de la eficacia
de los coagulantes de estudio. Al igual que el parámetro de turbidez, su valor es
considerablemente alto.
La dureza constituye uno de mayores problemas en las plantas de tratamiento de
salmuera, al ocasionar taponamientos de las líneas de alimentación y presencia de
incrustaciones en el producto final (INDUSALCA, 2006). Su presencia debe ser
reducida al mínimo, al igual que los contenidos de iones carbonatos, sulfatos y materia
insolubles. Son pocas las investigaciones desarrolladas en el tratamiento de salmuera,
sin embargo, se puede observar en la Tabla 2 que los valores en estudio se encuentran
por encima de los valores tomados como referencias en las plantas procesadoras de
59 salmuera. Román (2011), al caracterizar amargos de salmueras destinada a su
utilización como coagulantes para el tratamiento de aguas residuales, reportó una
concentración alta de magnesio, sulfato y calcio, mostrando una alcalinidad superior a
los 6000 mg/L y dureza total de 7601 mg/L, en salmuera concentrada previamente
filtrada.
4.2 Análisis de los parámetros en el tratamiento de salmuera utilizando como
coagulante quitosano comercial A continuación se presentan los resultados de los tratamientos efectuados utilizando
como agente coagulante quitosano comercial, variando las condiciones operacionales
(dosis, pH y temperatura). Posteriormente, se presenta la significancia estadística de
cada una de las variables estudiadas.
4.2.1 Evaluación en remoción del parámetro turbidez utilizando como coagulante
quitosano comercial
4.2.1.1 Evaluación en remoción de turbidez a condiciones de temperaturas de 27ºC,
38ºC y 42ºC en medio ácido (pH 5,10)
En la Tabla 3 se muestran los valores promedios obtenidos en la turbidez residual al
adicionar las respectivas dosis de quitosano a la muestra inicial de salmuera a
temperaturas de 27ºC, 38ºC y 42ºC y pH 5,10, adicionalmente se muestra la variación
porcentual con respecto a la muestra inicial (Figura 9).
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61
Por otra parte, la mayor remoción se obtuvo al tratar la muestra con 16 mg/L de
quitosano (88,74%), mientras que la variación porcentual a 22 mg/L fue de 79,06%
(Figura 9). Resultados similares obtuvo Arancibia (2011), al evaluar la coagulación con
dos tipos de quitosano, a tres pH diferentes pH 3, pH 4 y pH 5. En su estudio indicó que
la efectividad del quitosano como agente floculante estuvo altamente influenciada por el
pH de la disolución y la concentración del polímero, reportando una mayor remoción a
pH 5 y una dosis de 3-8 mg/L.
Renault y col. (2009), establecen que las actuaciones de quitosano dependen de las
variables de proceso tales como la dosis de quitosano, la velocidad de la mezcla y el
pH. Recalcan, que la dosis óptima de quitosano es menor en soluciones ácidas.
Adicionalmente, el pH es uno de los factores de mayor importancia y efecto sobre el
proceso de coagulación; su rango óptimo para la remoción de coloides depende de la
naturaleza del agua y puede variar entre 5,0 y 8,0 unidades (Romero 2005). Sin
embargo, Selmer y col. (1996), concluyeron que el quitosano funciona efectivamente
como coagulante a rangos de pH superiores a 5,25 unidades.
Posterior al tratamiento de salmuera a temperatura de 27ºC, se procedió a
aumentar la temperatura con el fin de evaluar su efecto sobre las propiedades
coagulantes del quitosano. Durante el tratamiento a temperatura de 38ºC y 42ºC a pH
5,1, no se observó variación significativa en la turbidez de las muestras entre ambas
temperaturas, esto se evidencia en la Tabla 3. A temperatura (38 ºC), se reportó una
turbidez residual promedio para la muestra control de 37,38 NTU, traduciéndose en un
porcentaje de remoción de 76,92%, mientras que para las muestras tratadas con 16
mg/L de quitosano, la turbidez de las muestras se encontró en 54,68 NTU, mostrando
un porcentaje de remoción de 66,24 %, seguidamente, para la dosis de 22 mg/L su
valor promedio se encontró en 50,58 NTU, con un porcentaje de remoción de 68,77%
(Figura 9). Se ha indicado en trabajos previos, que factores como la temperatura,
soluciones empleadas, grado de desacetilación, tiempo de reacción, agitación, tamaño
de partícula, entre otros, influyen en las propiedades del quitosano (Mármol y col .2004;
Contreras y Perozo. 2007; Hernández, 2004).
62 Por otra parte, para el tratamiento a temperatura 42 ºC, para la muestra control se
obtuvo un valor promedio de turbidez residual similar al reportado a 38 ºC, de 32,85
NTU, representando un 79,72% de remoción con respecto a la turbidez inicial.
Seguidamente, para una concentración de 16 mg/L de quitosano comercial, se obtuvo
un valor promedio de turbidez de 41,03 NTU (porcentaje de remoción 74,67%), y a una
concentración de 22 mg/L, un valor promedio 43,88 NTU (porcentaje de remoción 72,91
%) (Figura 9). La temperatura influye sobre ciertas propiedades físicas como
viscosidad, solubilidad, pH y la cinética de algunas reacciones que intervienen en el
proceso de coagulación. Generalmente, un aumento de la temperatura aumenta la
probabilidad de colisiones (Aguilar y col. 2002).
4.2.1.2 Evaluación de remoción de turbidez a condiciones de temperaturas (27ºC, 38ºC
y 42ºC) y pH 7,30
En la Tabla 4, se puede apreciar los resultados obtenidos en la turbidez de las
muestras tratadas con quitosano a pH 7,30 a las temperaturas establecidas, los valores
de turbidez para las muestras tratadas con quitosano se encuentran por encima a los
reportados en el tratamiento en medio ácido (pH 5,1), lo que indica que a un pH
cercano a la neutralidad, el quitosano no fue efectivo en la neutralización de cargas de
coloides en suspensión. Esta baja remoción podría asociarse a los mecanismos de
acción del coagulante y al no encontrarse en el rango de su pH óptimo. Se ha
demostrado que la eficiencia del quitosano en la remoción de turbidez es afectada por
el pH, disminuyendo a valores de pH entre 7,0 y 7,65 (Rizzo y col. 2008).
Tabla 4. Resultados de turbidez residual en tratamiento de salmuera con quitosano
como coagulante a temperaturas de 27ºC, 38ºC y 42ºC y pH 7,30
Turbidez (NTU) Temperatura
(ºC)±1 Dosis de Quitosano (mg/L)
0 16 22 27 75,23±0,35 43,38±0,50 34,50±0,50 38 65,37±0,52 93,55±0,39 103,13±0,55 42 74,22±0,17 81,78±0,82 94,20±0,98
Fuente: Propia
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64 Seguidamente, las muestras control para el caso de 38 ºC, mostraron valores de
turbidez residual con poca variación, encontrándose el promedio en 65,37 NTU,
representando un porcentaje de remoción de 59,64 %, inferior al obtenido en medio
ácido (76,92%). Igualmente para una dosis de 16 mg/L de quitosano, se reportó valores
de turbidez oscilando entre 93,5 NTU y 94 NTU, representando una variación
porcentual de 42,24 % (Figura 10). Para una dosis de 22 mg/L, los valores de turbidez
se encontraron entre 102,4 y 103,8 NTU, presentándose una mayor desestabilización
de los coloides, con un porcentaje de remoción de 36,32%.
Posteriormente, al aumentar la temperatura a 42 ºC, los valores obtenidos para la
turbidez, mostraron un comportamiento similar, para la muestra control, los valores de
turbidez oscilaron entre 74 y 74,5 NTU. Obteniendo un porcentaje de remoción de 54,05
%. Seguidamente para una dosis de 16 mg/L de quitosano los valores oscilaron entre
80,9 y 83 NTU, con un porcentaje de remoción de 49,09 % y para una dosis de 22 mg/L
de 40,42 %, con valores de turbidez entre 93 y 95,5 NTU (Figura 10).
4.2.1.3 Evaluación en remoción de turbidez a condiciones de temperaturas (27ºC, 38ºC
y 42ºC) en medio alcalino (pH 9,5)
Una vez evaluado el comportamiento en la remoción de turbidez al utilizar quitosano
como coagulante en el tratamiento de salmuera en medio ácido y cercano a la
neutralidad, se procedió a determinar la remoción de turbidez en medio alcalino. Los
resultados se muestran en la Tabla 5:
Tabla 5. Resultados remoción de turbidez residual en tratamiento de salmuera con
quitosano como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 9,5
Turbidez (NTU) Temperatura
(ºC)±1 Dosis de Quitosano (mg/L)
0 16 22 27 2,69±0,51 6,13±0,11 4,22±0,23 38 2,85±0,45 5,17±0,50 1,91±0,28 42 9,6±0,37 12,4±0,61 15,2±0,54
Fuente: Propia
Pa
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TU, para
66 la muestra control (porcentaje de remoción con respecto a la muestra inicial 98,24%),
5,2 NTU para una dosis de 16 mg/L de quitosano (porcentaje de remoción 96,81%), y
1,9 NTU para la dosis de 22 mg/L de quitosano (porcentaje de remoción 98,82%)
(Figura 11). La combinación de pH alcalino (9,5), temperatura (38ºC) y concentración de
quitosano (22 mg/L), constituyó la mejor condición para la remoción de turbidez en
muestras de salmuera concentrada a 23 ºBe.
Al aumentar la temperatura a 42 ºC, se generó un efecto desestabilizante de las
partículas coloidales, aumentando los valores promedio de turbidez residual de las
muestras tratadas, 9,6 NTU, para la muestra control, 12,4 NTU para las muestras
tratadas con una dosis de 16 mg/L y 15,2 NTU para 22 mg/L de quitosano. Los
porcentajes de remoción para este caso, se encontraron en 94,05% para la muestra sin
adición de quitosano, 92,33 % para las muestra tratadas con 16 mg/L de quitosano y
90.59%, a las que se les adicionó 22 mg/L de quitosano comercial (Figura 11).
4.2.1.4 Significancia estadística para el parámetro de turbidez a las distintas
condiciones evaluadas
Los efectos de las tres variables sobre la turbidez se muestran a continuación. En la
Tabla 6, se presenta la significancia de los efectos simples del pH, temperatura y dosis
de quitosano, la cual indica que la variación de pH fue significativa, como se puede
observar en la Figura 12A, lo que quiere decir que al menos alguno de los tratamientos
difiere de otro. La temperatura y la dosis de quitosano no tuvieron un efecto significativo
sobre esta variable.
67 Tabla 6. Significancia de los efectos simples del pH, temperatura y dosis de quitosano
calculadas con la prueba de Kruskall-Wallis para el parámetro turbidez
Parámetro pH Temperatura Dosis de Quitosano
Turbidez (NTU) 0,0000 0,1470 0,9758
Los valores con p<0,05 marcan diferencias significativas. Fuente: Propia
En la Figura 12 A, los tres valores de turbidez están a niveles distintos, lo que
muestra que para cada pH hay niveles medios de turbidez diferentes, siendo mayor el
de pH 7,3, intermedio a pH 5,1 y menor a pH 9,5. La Tabla 7 A, contiene las
probabilidades que resultan de la comparación a posteriori entre todos los tratamientos
a distintos pH: al ser todas pequeñas (<0,05) todos los tratamientos difieren
significativamente y se confirma la tendencia del gráfico. Esto indica que el pH debe
manejarse a niveles básicos para obtener los mejores resultados en la remoción de
turbidez en el tratamiento de salmuera. Con respecto a la temperatura aunque desde el
punto de vista estadístico no se presentaron diferencias significativas, los valores de
turbidez obtenidos sugieren que a nivel de procesos, la temperatura no debe superar
los 38ºC, para cumplir con el parámetro de referencia establecido, indicando este que la
turbidez residual debe manejarse por debajo de 10 NTU. Las dosis empleadas de
quitosano no representaron cambios significativos en las muestras tratadas.
En la Figura 12 B, se muestra el nivel de turbidez bajo distintas condiciones de
temperatura. La Tabla 6 señala para esta variable una probabilidad de p=0,1470, lo que
implica que no hay efectos significativos. Esto se visualiza en la Figura 12 B con cajas
muy alargadas en sentido vertical, que implican mayor dispersión entre las réplicas de
un mismo tratamiento donde es más difícil encontrar diferencias con otro. Las
probabilidades en la Tabla 7 B confirman que todos los tratamientos son iguales porque
las probabilidades son mayores a 0,05. Igual resultado se reporta para la dosis de
quitosano (Figura 12 C, Tabla 7 C).
68 Tabla 7. Significancia de los efectos simples del pH, temperatura y dosis de quitosano
sobre la turbidez calculadas mediante la prueba de Kruskall-Wallis
A pH 5,1 7,3 9,5 5,1 0,0165 0,0014 7,3 0,0165 0,0000 9,5 0,0014 0,0000 B Temperatura (ºC) 27 38 42 27 0,4057 0,1958 38 0,4057 1,0000 42 0,1958 1,0000 C Dosis de quitosano (mg/L) 0 16 22 0 1,0000 1,0000 16 1,0000 1,0000 22 1,0000 1,0000
Los valores con p<0,05 marcan diferencias significativas. Fuente: Propia
En la Figura 13 se visualizan las posibles interacciones entre los factores
estudiados. Estas interacciones pueden ser dobles (dos factores al mismo tiempo) o
triples (los tres factores simultáneamente) pero su significancia estadística no se pudo
cuantificar por ausencia de cumplimiento en los supuestos para aplicar un ANOVA
Factorial. Sin embargo, a nivel gráfico se hacen algunas exploraciones. En primer lugar,
es posible que no haya interacción entre el pH y la temperatura (Figura 13 A) así como
tampoco entre el pH y la dosis de quitosano (Figura 13 B), porque las tres curvas
muestran comportamiento similar, pero a distinta “altura”; de hecho el cambio de altura
es consecuencia del efecto del pH que ya se mencionó (Figura 12 A). Por el contrario,
es posible que sí exista una interacción entre la temperatura y la dosis de quitosano
(Figura 13 C), pues al trabajar a mayores temperaturas (38 y 42 °C) la tendencia es al
aumento de la turbidez con la dosis de quitosano, mientras que a 27°C la turbidez
disminuye cuando se aumenta la dosis de quitosano. Con respecto a la existencia de
una interacción de los tres factores simultáneos (Figura 13 D), es posible que ésta
exista, ya que en las mayores dosis de quitosano, tiende a haber mayor turbidez
cuando los pH son 5,1 y 7,3 que cuando se trabaja a pH 9,5; pero esto tampoco se
puede probar estadísticamente.
69
Figura 12. Efectos del pH (A), la temperatura (B) y la dosis de quitosano (C) sobre la turbidez,
mostrando el valor medio (mediana) de cada tratamiento y su dispersión.
Median 25%-75% Min-Max 5,1 7,3 9,5
pH
-20
0
20
40
60
80
100
120
Turb
idez
Median 25%-75% Min-Max 0 16 22
Dosis Quitosano (ppm)
-20
0
20
40
60
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120
Turb
idez
Median 25%-75% Min-Max 27 38 42
Temperatura (°C)
-20
0
20
40
60
80
100
120
Turb
idez
A
B
C
70
4.2.2 Evaluación en la remoción del parámetro color utilizando como coagulante
quitosano comercial
4.2.2.1 Evaluación en la remoción de color a condiciones de temperaturas (27ºC, 38ºC
y 42ºC) en medio ácido (pH 5,10)
En la Tabla 8 se muestra el comportamiento en la remoción de color a pH 5,10
después del tratamiento de coagulación para las distintas concentraciones evaluadas a
las temperaturas establecidas. Para una temperatura de 27ºC, los valores oscilaron
para las muestras tratadas con 16 mg/L de quitosano entre 110 y 114 UC, mientras que
para 22 mg/L de quitosano se encontraron entre 168 UC a 181UC.
pH*Temperatura
pH 5,1 pH 7,3 pH 9,5
27 38 42
Temperatura
-10
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
Turb
idez
pH*Dosis Quitosano
pH 5,1 pH 7,3 pH 9,5
0 16 22
Dosis Quitosano
-10
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
Turb
idez
Temperatura*Dosis Quitosano
Temp 27 Temp 38 Temp 42
0 16 22
Dosis Quitosano
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
Turb
idez
pH*Temperatura*Dosis Quitosano
pH 5,1 pH 7,3 pH 9,5
Dosis Quitosano: 0
Temp:27
3842
-20
0
20
40
60
80
100
120
Turb
idez
Dosis Quitosano: 16
Temp:27
3842
Dosis Quitosano: 22
Temp:27
3842
A B
C D
Figura 13. Exploración gráfica de las posibles interacciones dobles (A, B, C) e interacción triple de los factores estudiados sobre la turbidez
71 Tabla 8. Resultados de color residual promedio en tratamiento de salmuera con
quitosano como coagulante a temperatura de 27ºC, 38ºC y 42ºC y pH 5,1
Color (UC) Temperatura
(ºC)±1 Dosis de Quitosano (mg/L)
0 16 22 27 304±0,84 113±1,64 176±4,63 38 238±1,38 343±1,55 313±2,00 42 159±0,75 255±0,89 302±1,17
Fuente: Propia
La remoción de color se mostró en el rango de 68,58 a 88,35 % con respecto a la
muestra inicial de salmuera, encontrándose a la concentración de 16 mg/L, el mayor
porcentaje de remoción (Figura 14). De esta manera, el color mostró un
comportamiento similar a la turbidez; los menores valores se obtuvieron para la
concentración de 16 mg/L. Resultados similares reporto Herkenhoff (2008), al evaluar el
uso de coagulantes naturales en un rango de pH de 3 a 9, en el proceso de obtención
de agua potable en Maringa, Brasil, obteniendo remociones de color superiores al 75%,
al utilizar quitosano a pH de 5,5, a una dosis de 6 mg/L.
Para la temperatura de 38 ºC, se obtuvo al igual que a temperatura de 27ºC, poca
variación entre los valores de color residual, oscilando entre 236 UC y 239 UC para la
muestra control, mientras que para las muestras tratadas con 16 mg/L y 22 mg/L de
quitosano, se encontraron entre 340 a 344 UC y 310 a 315 UC respectivamente.
Mostrando porcentajes de remoción en el rango de 64,49% y 68,81%. Al elevar la
temperatura a 42 ºC, se obtuvo una remoción mayor a la obtenida a 38ºC, reportando
valores para la muestra control entre 158 y 160 UC, mostrando un porcentaje de
remoción de 83,52 %. Para dosis de 16 mg/L, los valores oscilaron entre 254 y 256 UC,
con un porcentaje de remoción de 73,60 %, finalmente para una dosis de 22 mg/L, se
encontraron entre 300 y 303 UC, con un porcentaje de remoción de 68,75%, con
respecto a la muestra inicial (Figura 14).
Figur
So
los pr
zonas
ºC. En
del ag
remoc
eficien
tasa d
4.2.2.
42ºC)
Lo
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RemocioRemocioRemocio
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0 7 ºC 688ºC 752ºC 83
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5,10
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s, una entre
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la tempera
En el ran
mentar la te
.
olor a cond
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ra, a las d
ra a continu
ppm8,585,413,52
temperatu
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e 0 y 10 ºC
canismos do
atura del ag
ngo de 10
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as muestra
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16 ppm88,3564,4973,60
ras 27ºC, 3
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C y la segu
ominantes
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0-40 ºC en
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38 ºC y 42 º
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uras (27ºC,
con quitos
s establec
22 ppm81,7568,8168,75
72
ºC a pH
atura en
de dos
10 y 40
cosidad
0 ºC, la
que la
ntaba la
38ºC y
sano al
idas se
73 Tabla 8. Resultados de color residual en tratamiento de salmuera con quitosano como
coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 7,30
Color (UC) Temperatura
(ºC)±1 Dosis de Quitosano (mg/L)
0 16 22 27 450±0,89 302±1,97 225±0,82 38 441±1,21 703±3,72 757±1,21 42 465±1,37 643±1,52 731±1,17
Fuente: Propia
La remoción de color para la temperatura de 27ºC, presentó el mismo
comportamiento a los obtenidos en la turbidez a las mismas condiciones,
encontrandose para las muestras tratadas con una dosis de 16 mg/L de quitosano
comercial, valores en el rango de 301 UC y 305 UC, mientras, para dosis de 22 mg/L
mostro menores valores entre 224 UC y 226 UC. Como se puede observar en la Figura
15, los porcentajes de remoción al igual que en el comportamiento de turbidez, tienden
a aumentar al subir la dosis del coagulante, lo que sugiere que a este pH, para obtener
mejores resultados, es necesario un aumento de las dosis del biopolimero. Contrario a
esta investigacion Valdes y col. (2014), reportaron disminución de color de 32,1 UPC a
7,93UPC, representando un 75% de variacion porcentual al tratar agua cruda usando
quitosano como coagulante orgánico con turbidez inicial de 400NTU y pH 7,49. Esto
indica que el tratamiento de coagulación esta constituido por una gran cantidad de
variables y está altamente influenciado por la naturaleza del medio a tratar.
Por otra parte, para las variaciones porcentuales de color tanto a temperatura de 38
ºC y 42º C, se presentaron los menores porcentajes de remoción de todos los análisis
evaluados, lo que sugiere que las propiedades coagulantes del quitosano a pH 7,30, al
igual que en el caso de pH 5,10 disminuyen con el aumento de temperatura.
Mostrándose un mayor porcentaje a la dosis de 16 mg/L de quitosano (28,98%) para la
temperatura de 38ºC (Figura 15), mientras que para la temperatura de 42ºC, el mayor
porcentaje se encontró en 33,49 %, a la misma dosis.
4.2.2
42ºC)
Po
tempe
su co
mues
Tablacoagu
Te
Figura 15.
2.3 Evaluac
) en medio
osterior al t
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omportamie
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ulante a tem
emperatura
(ºC)±1 27 38 42
RemocionRemocionRemocion
. Remoción
ción en rem
alcalino (pH
tratamiento
ºC, 38ºC y
ento a pH a
Tabla 9.
ados de co
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a
n Color(%) 27 ºn Color (%) 38ºn Color (%) 42º
n de color a
moción de c
H 9,5)
o de salmue
42ºC), en
alcalino a l
lor residua
27ºC, 38ºC
0 17±1,21 15±1,21 68±6,35
F
0 ppC 53,C 57,C 51,
temperatu
color a cond
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C y 42ºC) y
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Fuente: Prop
pm426290
ras 27ºC, 3
diciones de
itosano a c
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raturas esta
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pH 9,50
Color (UCde Quitosa
16 52±1,2233±1,47102±7,84
pia
16 ppm68,7028,9833,49
38 ºC y 42 º
e temperatu
condiciones
no a la neut
ablecidas.
almuera co
C) no (mg/L)
2 7 4
ºC a pH 7,3
uras (27ºC,
s operacion
tralidad, se
Los resulta
on quitosan
22 41±1,512±1,2118±4,2
22 ppm76,6721,7324,31
74
30
38ºC y
nales de
e evaluó
ados se
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51 21 26
Pa
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mues
remoc
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magn
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la turbidez
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(Figura 1
ituyendo u
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o ácido, ce
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lar, 2002), o
Figura 16
Remocio ColoRemocion CoRemocion Co
periencia s
a pH 9,5 y
C, lo que re
6), 52 UC
un 94,67 %
as con 22
or. Reportá
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. Remoción
or (%) 27ºColor (%) 38ºColor(%) 42ºC
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0 ppm98,2198,3893,01
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75
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muestras
muestra
itosano,
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9 % de
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7º C) en
a este
reduce
amente,
dróxidos
orgánica
5
76 Para el caso de la determinación de color, a temperatura de 38 ºC, los valores
promedio residuales oscilaron en 15 UC para la muestra control, 33 UC para las
muestras tratadas con 16 mg/L de quitosano y 12 UC para una dosis de 22 mg/L.
Contrario a estos valores, a la temperatura de 42 ºC, para la muestra control se
encontraron en 93 UC, 89 UC para las muestras tratadas con quitosano a una
concentración de 16 mg/L y 87 UC para 22 mg/L. Los porcentajes de remoción se
muestran en la Figura 16.
4.2.2.4 Significancia estadística para el parámetro Color a las distintas condiciones
evaluadas
La Tabla 10, muestra al igual que el parámetro turbidez, el pH tuvo efecto
significativo sobre el color. Este efecto se puede observar en la Figura 17 A, donde se
muestra mayor magnitud del color en el tratamiento a pH 7,3, magnitud intermedia a pH
5,1 y menor magnitud a pH 9,5. A cada valor de pH, hay un color significativamente
distinto de los otros, como lo muestran las probabilidades de la Tabla 11 A. Al igual que
para la turbidez, el color no fue afectado al modificar la temperatura (Figura 17 B y
Tabla 11 B) y tampoco al modificar la dosis de quitosano (Figura 17 C y Tabla 11 C).
Bajo estos resultados es indispensable que el tratamiento de salmuera se lleve a cabo
en un medio básico y desde el punto de vista operacional la temperatura del medio no
debe exceder los 38ºC. No existe un criterio con respecto al color en el tratamiento de
salmuera pero al analizar los tratamientos a los tres pH establecidos, la remoción con
respecto al medio alcalino es considerablemente menor a pH 5,10 y pH 7,30.
Tabla 10. Significancia de los efectos simples del pH, temperatura y dosis de quitosano
calculadas con la prueba de Kruskall-Wallis para el parámetro color
Parámetro pH Temperatura Dosis de
Quitosano
Color
(UC) 0,0000 0,1866 0,9576
Los valores con p<0,05 marcan diferencias significativas. Fuente: Propia
77 La Figura 18 explora las posibles interacciones entre los factores, y se observan
resultados similares los encontrados para la turbidez. El pH no parece interactuar con la
temperatura (Figura 18 A) ni con la dosis de quitosano (Figura 18 B), pero la
temperatura sí pareciera tener una interacción con la dosis de quitosano, porque a 27
°C se observa un nivel de color más bajo para dosis de quitosano de 16 y 22 ppm,
mientras que a mayor temperatura, el color presenta mayor magnitud a estas
concentraciones de quitosano (Figura 18 C). Con respecto a los tres factores
simultáneos (Figura 18 D), es posible que exista alguna interacción, ya que en las
mayores dosis de quitosano, tiende a haber mayor nivel de color cuando los pH son 5,1
y 7,3 que cuando se trabaja a pH 9,5; pero esto tampoco se puede probar
estadísticamente.
Tabla 11. Significancia de los efectos simples del pH (A), temperatura (B) y dosis de
Quitosano (C) sobre el color calculadas mediante la prueba de Kruskall-Wallis
A pH 5,1 7,3 9,5 5,1 0,0165 0,0011 7,3 0,0165 0,0000 9,5 0,0011 0,0000
B Temperatura(ºC) 27 38 42 27 0,5563 0,2359 38 0,5563 1,0000 42 0,2359 1,0000
C Dosis de quitosano(mg/L) 0 16 22 0 1,0000 1,0000 16 1,0000 1,0000 22 1,0000 1,0000
Los valores con p<0,05 marcan diferencias significativas. Fuente: Propia
78
Figura 17. Efectos del pH (A), la temperatura (B) y la dosis de quitosano (C) sobre el color,
mostrando el valor medio (mediana) de cada tratamiento y su dispersión (diferencia entre las réplicas de cada tratamiento).
Median 25%-75% Min-Max 5,1 7,3 9,5
pH
-100
0
100
200
300
400
500
600
700
800
Col
or
Median 25%-75% Min-Max 27 38 42
Temperatura (°C)
-100
0
100
200
300
400
500
600
700
800
Col
or
Median 25%-75% Min-Max 0 16 22
Dosis Quitosano (ppm)
-100
0
100
200
300
400
500
600
700
800
Col
or
A
B
C
79
4.2.3. Evaluación en la remoción del parámetro dureza total utilizando como coagulante
quitosano comercial
4.2.3.1 Evaluación en remoción de dureza total a condiciones de temperaturas (27ºC,
38ºC y 42ºC) en medio ácido (pH 5,10)
Para la remoción de dureza total, los valores obtenidos a temperatura de 27ºC, para
las muestras tratadas con 16 mg/L de quitosano, mostraron un promedio de 6960 mg/L,
mientras que para dosis de 22 mg/L de quitosano el valor promedio se encontró en
7215 mg/L (Tabla 12). Encontrándose, la mayor variación porcentual en 22,24% a la
respectiva dosis de 16 mg/L (Figura 19). Seguidamente al aumentar la temperatura a
pH*Temperaruta
pH 5,1 pH 7,3 pH 9,5
27 38 42
Temperatura
-100
0
100
200
300
400
500
600
700
Col
or
pH*Dosis Quitosano
pH 5,1 pH 7,3 pH 9,5
0 16 22
Dosis Quitosano
-100
0
100
200
300
400
500
600
700
Col
or
Temperatura*Dosis Quitosano
Temp 27 Temp 38 Temp 42
0 16 22
Dosis Quitosano
50
100
150
200
250
300
350
400
450
Col
or
pH*Temperatura
pH 5,1 pH 7,3 pH 9,5
Dosis Quitosano: 0
Temp:27
3842
-100
0
100
200
300
400
500
600
700
800
900
Col
or
Dosis Quitosano: 16
Temp:27
3842
Dosis Quitosano: 22
Temp:27
3842
A B
C D
Figura 18. Exploración gráfica de las posibles interacciones dobles (A, B, C) e interacción triple (D) de los factores estudiados sobre el color
38ºC
un va
19), m
Por o
no su
quitos
este p
Tablaquitos
Te
Figu
mantenien
lor promed
mientras pa
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sano (polím
parámetro a
a 12. Resu
sano como
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(ºC)±1 27 38 42
ura 19. Com
Remocion Remocion Remocion
do el pH, s
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0 8000±44,207645±45,437433±41,44
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ura a 42ºC,
a 19). Esto
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muladas.
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atura (27ºC
DurezaDosis d
0 3 4 Fuente: Prop
n de durezaºC a pH 5,1
0 ppm10,6211,2913,74
estra tratad
a variación
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, 38ºC y 42
a total (mg de Quitosa
16 6960±44,77983±44,77817±49,1
pia
a total a tem10
16 pp22,27,369,28
da con 16 m
porcentual
ación porce
ones porce
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2ºC) y pH 5
CaCO3/L) no (mg/L)
71 77 15
mperaturas
pm4
68
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de 7,36 %
entual de 1
entuales ob
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en la remo
de salmue
,1
22 7215±496933±488249±45
s 27ºC, 38 º
22 ppm19,3919,554,28
80
uitosano
(Figura
19,55%.
btenidas
mica del
oción de
era con
9,90 8,10 5,89
ºC y 42
81 4.2.3.2 Evaluación en remoción de dureza total a condiciones de temperaturas (27ºC,
38ºC y 42ºC) y pH 7,30
Al evaluar el comportamiento en la variación de dureza total de las muestras tratadas
con quitosano a temperatura 27ºC y pH 7,30, los resultados indican que al igual que el
medio ácido (pH 5,10), las muestras tratadas con 16 mg/L y 22 mg/L de quitosano
comercial, no presentaron una variación relevante con respecto a la muestras control (0
mg/L). Esto se puede apreciar en la Tabla 13 .Las variaciones porcentuales oscilaron
entre 9,06%, para la muestra control, 11,12% para una dosis de 16 mg/L, y 16,84%,
cuando se trato con una dosis de 22 mg/L de quitosano (Figura 20).
Tabla 13. Resultados variación de dureza total en tratamiento de salmuera con
quitosano como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 7,30
Dureza (mg CaCO3/L) Temperatura
(ºC)±1 Dosis de Quitosano (mg/L)
0 16 22 27 8140±60,34 7920±51,30 7443±90,98 38 7735±49,73 7757±42,42 7817±47,14 42 8031±14,51 8336±19,32 8494±41,42
Fuente: Propia Como se aprecia en la Tabla 13, el comportamiento de quitosano en la remoción de
la dureza total a temperatura de 38º C y 42º C, a pH 7,30, al igual que a la temperatura
de 27ºC no mostró variación significativa con respecto a la muestra control. Los
porcentajes de remoción en las muestras tratadas con quitosano a una dosis de 16
mg/L y 22 mg/L, no superaron el 10%, como se puede apreciar en la Figura 20.
Fig
4.2.3.
38ºC
Lo
Tabla
con re
Po
mostr
mg/L
prome
(porce
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RRR
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Remocion DurRemocion DurRemocion Dur
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hidróxidos
uilar y col.
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eza tota(%) 27eza total (%) 3eza total(%) 42
e dureza tot
oción de d
alino (pH 9,
os para el p
e apreciar
ones simula
ción porcen
edio de 238
entaje de r
y para la
e 64,44%).
s de magne
2002), y
0 7ºC 9
8ºC 12ºC 6
tal a tempe
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parámetro d
una variac
adas a pH 5
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89 mg/L. C
remoción d
dosis de
Esta remo
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a una pos
ppm9,060,24
6,81
eratura 27ºC
a condicio
dureza tota
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5,10 y pH 7
rían de 72,2
Consecutiva
de 55,18%
22 mg/L, u
oción es po
cionar soda
sible acció
16 ppm11,529,993,26
C, 38 ºC y 4
ones de tem
al a pH 9,5,
able de los
,30.
28% para l
amente, pa
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un promed
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42 ºC a pH
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82
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s (27ºC,
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inizante
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remoc
remoc
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83,06
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Te
Fig
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ción 78,03%
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r remoción
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a muestra
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a 14. Resu
sano como
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(ºC)±1 27 38 42
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Remocion DurRemocion DurRemocion Dur
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%), 2967 m
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2
2
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eza(%) 27ºCeza(%) 38ºCeza(%) 42ºC
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de quitosan
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(42ºC), el m
/L de quitos
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e a tempera
0 2389±15,221967±23,572373±15,20
F
e dureza tot
0 ppm73,3178,0373,49
8ºC se obtuv
967 ppm p
tratadas co
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no en la dis
a la muestr
en cada u
mayor porc
sano, enco
dureza to
atura (27ºC
DurezaDosis d
2 7 0
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otal en tra
, 38ºC y 42
a total (mg de Quitosa
16 3862±31,22967±24,72511±23,4
pia
eratura 27ºC
16 ppm56,8566,8671,95
ación mayo
uestra contr
L de quitosa
e presentó
e salmuera
Figura 21).
condicione
enido se pr
el porcenta
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2ºC) y pH 9
CaCO3/L) no (mg/L)
25 71 48
C, 38 ºC y 4
22 p65,783,056,6
or con resp
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ano (porcen
al adicion
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Constituye
es evaluada
resentó cua
aje de remo
de salmue
,5
22 3064±281517±213879±12
42 ºC a pH
pm770667
83
peto a la
ntaje de
ntaje de
nar una
tando el
endo la
as. Con
ando se
oción en
era con
8,22 ,21 ,61
9,50
84 4.2.3.4 Significancia estadística para el parámetro dureza total para todas las
condiciones evaluadas
El pH también tuvo efecto significativo sobre la dureza total (Tabla 15). En la Figura
22 A se muestra que el tratamiento a pH 5,1 fue similar al de pH 7,3, y estos dos tienen
mayor nivel de dureza que el tratamiento a pH 9,5 (Tabla 16A). La dureza no fue
afectada por la temperatura (Figura 22 B y Tabla 16 B) ni por la dosis de quitosano
(Figura 22 C y Tabla 16 C.
Tabla 15. Significancia de los efectos simples del pH, temperatura y dosis de quitosano
calculadas con la prueba de Kruskall-Wallis para el parámetro dureza total
Parámetro pH Temperatura Dosis de
Quitosano
Dureza(mgCaCO3/L) 0,0000 0,3311 0,9435
Los valores con p<0,05 marcan diferencias significativas. Fuente: Propia
Tabla 16. Significancia de los efectos simples del pH (A), temperatura (B) y dosis de
Quitosano (C) sobre la dureza calculadas mediante la prueba de Kruskall-Wallis.
A pH 5,1 7,3 9,5 5,1 0,6109 0,0000 7,3 0,6109 0,0000 9,5 0,0000 0,0000 B Temperatura(ºC) 27 38 42 27 1,0000 0,8975 38 1,0000 0,4489 42 0,8975 0,4489 C Dosis de quitosano(mg/L) 0 16 22 0 1,0000 1,0000 16 1,0000 1,0000 22 1,0000 1,0000
Los valores con p<0,05 marcan diferencias significativas. Fuente: Propia
Figu
No
pH y
intera
hay m
intera
ura 22. Efect
parece hab
la dosis d
acción entre
mayor dure
acción triple
tos del pH (A
mostrando
ber una inte
de quitosan
e la temper
za cuando
e (Figura 23
A), la tempe
o el valor me
eracción en
no (Figura
ratura y la
se trabaja
3 D) tampoc
ratura (B) y
edio (median
ntre el pH y
23 B), pe
dosis de q
a a 42 °C,
co queda cl
la dosis de q
na) de cada
y la tempera
ero por el
uitosano (F
lo que no
laramente d
quitosano (C
tratamiento
atura (Figur
contrario,
Figura 23 C
ocurre a 3
definida.
C) sobre la d
o
ra 23 A) ni
podría hab
C), pues a 2
38° y a 27
85
dureza,
entre el
ber una
22 ppm
° C. La
4.2.4
coagu
4.2.4.
(27ºC
Lo
oscila
Fi
Evaluación
ulante quito
1 Evaluació
C, 38ºC y 42
os valores r
aron para co
gura 23. Ex
n en la rem
osano come
ón en remo
2ºC) en med
reportados
oncentracio
xploración gr
triple
moción del
ercial
oción de ca
dio acido (p
en la varia
ones de 16
ráfica de las
e de los facto
parámetro
rbonatos y
pH 5,10)
ación de car
mg/L de qu
posibles int
ores estudia
carbonato
sulfatos a
rbonatos a
uitosano, e
teracciones
ados sobre la
os y sulfato
condicione
temperatur
entre 2200 m
dobles (A, B
a dureza
os utilizando
es de tempe
ra 27ºC y p
mg/L y 330
B, C) e intera
86
o como
eraturas
pH 5,10,
0 mg/L,
acción
87 mientras que para dosis de 22 mg/L de quitosano se encontraron entre 2630 mg/L y
3370 mg/L. Los valores promedios se muestran en la Tabla 17.
Tabla 17. Resultados variación de carbonatos en tratamiento de salmuera con
quitosano como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 5,1
Carbonatos (mg/L) Temperatura
(ºC)±1 Dosis de Quitosano (mg/L)
0 16 22 27 3290±436,12 2680±165,22 3020±205,18 38 3100±282,81 3133±90,35 3068±47,12 42 2700±141,43 3200±101,25 3300±141,43
Fuente: Propia
La mayor variación porcentual obtenida fue de 21,32%, para la concentración de 16
mg/L a temperatura de 27ºC, mientras que a 22 mg/L estuvo en 11,13% (Figura 24).
Fuentes y col. (2008), en su estudio sobre el uso del quitosano obtenido de Litopenaeus
schmitti en el tratamiento de agua para consumo humano, reporto valores de alcalinidad
aceptables de las aguas crudas sintéticas tratadas, oscilando en el rango de 18,67-
33,33 mg CaCO3/L en un rango de pH de 6,41-6,91, sin embargo, la turbidez, así como
los demás parámetros de las muestras iniciales, eran menor a la del presente estudio.
Con respecto a las remociones presentadas a temperaturas de 38 ºC y 42º C, la
dosis de quitosano y pH ácido, no representaron mayor efectividad para la remoción de
este parámetro, presentándose la mayor remoción (9,80%) en la muestra tratada con
22 ppm de quitosano (Figura 24).
Fig
Se
mues
para d
prome
(Figur
const
salmu
Tablacomo
Te
gura 24. Re
eguidament
tras tratada
dosis de 22
edios se re
ra 25), lo
ituye un fa
ueras.
a 18. Resul
coagulante
emperatura
(ºC)±1 27 38 42
RemociRemociRemoci
emoción de
te, los valor
as con 16 m
2 mg/L de q
eflejan en la
que sugie
actor influye
ltados varia
e a tempera
a
on Carbonatoson Carbonatoson Carbonatos
e carbonato
res obtenid
mg/L de qu
quitosano s
a Tabla 18
ere que la
ente para e
ación de su
atura (27ºC
0 900±13,43786±6,36 855±3,06
F
s(%)27ºCs(%)38ºCs(%) 42ºC
os a tempe
os para la
itosano, en
e situaron e
. Encontrá
a naturalez
el caso de
ulfatos en t
C, 38ºC y 42
SDosis d
3
Fuente: Prop
0 ppm3,198,822,38
ratura 27ºC
variación d
ntre 760 mg
entre 850 m
ndose el m
za del quit
la remoció
tratamiento
2ºC) y pH 5
Sulfatos (mde Quitosa
16 812±48,5795±7,54
845±17,9pia
16 ppm21,327,840,68
C, 38 ºC y 4
de sulfatos,
g/L y 862 m
mg/L y 920
mayor porce
tosano en
ón de sulfa
o de salmue
5,1
g/L) no (mg/L)
53 4
91
m2
48
42 ºC a pH
oscilaron p
mg/L, mient
mg/L. Los
entaje en 1
medio ác
atos presen
era con qu
22 885±38,783±4,4859±1,6
22 ppm11,139,800,34
88
5,10
para las
ras que
valores
1,32 %
cido, no
ntes en
uitosano
42 48 65
Por
encon
porce
F
4.2.4.
(27ºC
Co
pH n
signifi
la Tab
r otra parte
ntraron en
entual se en
Figura 25.
2 Evaluació
C, 38ºC y 42
n respecto
natural de
icativa con
bla 19.
RemocionRemocionRemocion
e, las remoc
el rango
ncontró en 7
Remoción
ón en remo
2ºC) y pH 7
a la remoc
salmuera
respecto a
n Sulfatos (%) 2n Sulfatos(%) 3n Sulfatos(%) 4
ciones de e
de (14-13
7,74% (Figu
de sulfatos
oción de ca
7,30
ción de car
(7,30), lo
a los report
027ºC38ºC 142ºC
este paráme
%), mientr
ura 25).
s a tempera
rbonatos y
rbonatos a
os valores
tados a pH
0 ppm1,80
14,147,11
etro al elev
ras que a
atura 27ºC,
sulfatos a
las distinta
obtenidos
5,10. Esto
16 ppm11,3213,227,74
ar la tempe
42º C, la
38 ºC y 42
condicione
as temperat
s no pres
os resultado
m
eratura a 38
a mayor va
ºC a pH 5,
es de tempe
turas evalu
entaron va
os se mues
22 ppm3,33
14,466,23
89
8ºC, se
ariación
10
eraturas
adas, a
ariación
stran en
Tablaquitos
Te
Pa
consid
mg/L
remoc
Los p
5%. A
el 7,8
(Figur
Fig
a 19. Res
sano como
emperatura
(ºC)±1 27 38 42
ara este cas
derablemen
de quitosa
ción de car
porcentajes
Adicionalme
87%, mient
ra 26).
gura 26. Re
RemocioRemocioRemocio
ultados va
coagulante
a
333
so, las vari
nte bajas (
ano (15,29%
rbonatos pa
de remoc
ente, a temp
ras que pa
emoción de
on Carbonatos(on Carbonatos(on Carbonatos(
ariación de
e a tempera
0 3283±63,443233±188,63070±282,8
F
aciones po
Figura 26),
%). El quito
ara el trata
ión a temp
peratura de
ara una do
e carbonato
(%) 27ºC(%) 38ºC(%) 42ºC
e carbonat
atura (27ºC
CaDosis d
4 62 81 Fuente: Prop
orcentuales
, obteniénd
osano no c
miento de
peratura de
e 42ºC, par
sis de 22
os a tempe
0 ppm2,948,336,94
tos en tra
, 38ºC y 42
arbonatos (de Quitosa
16 3150±70,73317±117,3320±70,7
pia
mostradas
dose la ma
constituyo u
salmuera a
e 38 ºC, se
a una dosis
mg/L, el po
ratura 27ºC
16 pp7,354,177,87
atamiento d
2ºC) y pH 7
mg/L) no (mg/L)
71 93 71
s a tempera
yor variació
un coagula
a pH origin
e encontrar
s de 16 mg
orcentaje s
C, 38 ºC y 4
m577
de salmue
,3
22 2880±1213383±2593350±70
atura 27ºC
ón al adicio
ante efectiv
al de la sa
on por deb
/L se remov
se situó en
42 ºC a pH
22 ppm15,293,701,39
90
era con
1,22 9,31
0,71
, fueron
onar 22
vo en la
lmuera.
bajo del
vió solo
n 1,39%
7,30
Pa
antes
mues
Tablacomo
Te
F
ara el caso
descritas,
tra inicia, d
a 20. Resul
coagulante
emperatura(ºC)±1
27 38 42
Figura 27.
RemocioRemocioRemocio
o de sulfato
la remoció
ichos porce
ltados varia
e a tempera
a
Remoción
on Sulfatos(%) on Sulfatos (%) on Sulfatos(%)
os, los res
ón de este
entajes se m
ación de su
atura (27ºC
0 867±10,84793±61,75781±65,52
F
de sulfatos
027ºC38ºC42ºC
ultados ind
parámetro
muestran e
ulfatos en t
C, 38ºC y 42
SDosis d
4 5 2 Fuente: Prop
s a tempera
0 ppm5,85
13,3914,77
dican que a
no fue co
en la Figura
tratamiento
2ºC) y pH 7
Sulfatos (mde Quitosa
16 849±63,4792±29,9820±15,5
pia
atura 27ºC,
16 ppm7,23
13,4410,50
al igual qu
nsiderable
a 27.
o de salmue
7,3
g/L) no (mg/L)
40 93 56
38 ºC y 42
m
ue las cond
con respec
era con qu
22 739±4,9
798±12,862±4,0
ºC a pH 7,
22 ppm19,2812,885,88
91
diciones
cto a la
uitosano
95 96 01
30
92 4.2.4.3 Evaluación en remoción de carbonatos y sulfatos a condiciones de temperaturas
(27ºC, 38ºC y 42ºC) en medio alcalino (pH 9,5)
Los resultados obtenidos al aumentar el pH del medio (9,5), en los parámetros
carbonatos y sulfatos, se presentan a continuación:
En la Tabla 21 se presentan los valores promedios obtenidos con respecto a los
carbonatos presentes en las muestras tratadas. En esta se puede apreciar que a
temperatura de 27ºC para la muestra control, se obtuvo un valor promedio de 1016
mg/L, representando una variación porcentual de 70,35%, con respecto a la muestra
inicial (Figura 28), mientras que al tratar las muestras con 16 mg/L y 22 mg/L, se
cuantifico un 44,12% y 63,74% respectivamente. Al aumentar la temperatura los valores
fueron superiores, lográndose la mayor remoción a 38ºC y 22 mg/L de quitosano
(Porcentaje de remoción 45,09%).Esta variación con respecto a las condiciones
evaluadas a pH 5,1 y pH 7,30, se presume es debido a la precipitación de carbonato de
calcio a valores de pH mayores a 9,5 (Liao y Randtke, 1986)
Tabla 21. Resultados variación de carbonatos en tratamiento de salmuera con
quitosano como coagulante a temperatura (27ºC, 38ºC y 42ºC) y pH 9,5
Temperatura Carbonatos (mg/L) (ºC)±1 Dosis de Quitosano (mg/L)
0 16 22 27 1016±23,62 1950±141,42 1233±94,31 38 2367±47,13 2933±94,31 1867±94,30 42 2650±212,11 2900±179,1 2860±447,81
Fuente: Propia
Fi
Los
mayo
(Figur
Obten
quitos
846m
Tablacomo
Te
igura 28. R
s resultado
r porcentaj
ra 29), cua
niéndose v
sano, repo
g/L (16 ppm
a 22. Resul
coagulante
emperatura(ºC)±1
27 38 42
Remocion CRemocion CRemocion C
Remoción d
os obtenido
je obtenido
ando se tra
valores pr
rtándose p
m de quitos
ltados varia
e a tempera
a
Carbonatos(%)Carbonatos(%)Carbonatos(%)
de carbonat
os para el p
o en las m
ato la diso
romedios
para la mu
sano) y 737
ación de su
atura (27ºC
0 858±3,54
817±21,21654±19,09
F
) 27ºC) 38ºC) 42ºC
tos a tempe
parámetro
uestras tra
olución de
con variac
uestra cont
7 mg/ L (22
ulfatos en t
C, 38ºC y 42
SDosis d
1 9 Fuente: Prop
0 ppm70,3530,3822,06
eratura 27ºC
sulfato se
atadas a 27
salmuera
ciones sig
rol un valo
ppm de qu
tratamiento
2ºC) y pH 9
Sulfatos (mde Quitosa
16 846±25,6816±9,90
696±52,0pia
16 ppm44,1212,8214,71
C, 38 ºC y 4
muestran
7ºC, corres
con 22 m
gnificativas
or promedi
uitosano).
o de salmue
9,5
g/L) no (mg/L)
69 0
09
m221
42 ºC a pH
en la tabla
spondió a
g/L de qui
al adicio
io de 858
era con qu
22 737±1,6
802±29,684±9,4
22 ppm63,7445,0915,88
93
9,5
a 22. El
19.54%
itosano.
onar el
mg/ L,
uitosano
65 46 43
Pa
mayo
quitos
29), s
Prese
4.2.4.
condic
El p
mues
tuvier
Los c
por la
parám
en u
ara el caso
r porcentaj
sano come
se encontra
entándose u
Figura 29.
4 Significa
ciones eva
pH también
tra en la Fi
ron mayor
carbonatos
a dosis de
metros ante
n medio
RemocioRemocioRemocio
del conten
e de remoc
rcial. A la
ron en 23,9
una remoci
Remoción
ancia estad
luadas
n tuvo efect
igura 30 A,
nivel de ca
no fueron
quitosano
eriormente e
alcalino, p
on Sulfatos(%) on Sulfatos(%) on Sulfatos(%)
nido de sul
ción se enc
temperatur
99% y 25,3
ón superior
de sulfatos
dística para
to significat
el tratamie
arbonatos q
afectados
(Figura 30
evaluados q
para este
027ºC38ºC 142ºC 2
lfatos, a te
ontró en 12
ra de 42ºC
35% para la
r a esta últi
s a tempera
a el paráme
tivo sobre lo
ento a pH 5
que el trata
por la tem
0 C y Tabl
que la may
caso igua
0 ppm6,36
10,7528,57
mperatura
2.38 %, par
C, los porce
as muestras
ma temper
atura 27ºC,
etro carbon
os carbona
5,1 fue sim
amiento so
peratura (F
a 24 C). E
yor remoció
almente la
16 ppm7,616,10
23,99
(38ºC) en
ra la condic
entajes de
s tratadas c
ratura.
38 ºC y 42
natos para
atos (Tabla
ilar al de p
metido a p
Figura 30 B
Esto sugiere
ón de este p
a temperat
medio alca
ción de 22 m
remoción
con el biopo
2 ºC a pH 9
cada una
23), y tal c
H 7,3, y es
pH 9,5 (Tab
B y Tabla 2
e al igual
parámetro s
tura no p
22 ppm19,5412,3825,35
94
alino, el
mg/L de
(Figura
olímero.
9,5
de las
como se
stos dos
bla 24).
24 B) ni
que los
se logra
resento
95 significancia estadística, pero para cumplir con los parámetros establecidos, elevar la
temperatura por encima de 38ºC, no representa una estrategia adecuada, ya que los
valores aumentaron con respecto a esta ultima temperatura.
Tabla 23. Significancia de los efectos simples del pH, temperatura y dosis de quitosano
calculadas con la prueba de Kruskall-Wallis para el parámetro carbonatos
Parámetro pH Temperatura Dosis de
Quitosano
Carbonatos(mg/L) 0,0000 0,1381 0,7586
Los valores con p<0,05 marcan diferencias significativas. Fuente: Propia
Tabla 24. Significancia de los efectos simples del pH (A), temperatura (B) y dosis de
Quitosano (C) sobre los carbonatos calculadas mediante la prueba de Kruskall-Wallis.
A pH 5,1 7,3 9,5 5,1 0,2920 0,0010 7,3 0,2920 0,0000 9,5 0,0010 0,0000
B Temperatura(ºC) 27 38 42 27 0,6166 0,1500 38 0,6166 1,0000 42 0,1500 1,0000
C
Dosis de quitosano (mg/L)
0 16 22 0 1,0000 1,0000 16 1,0000 1,0000 22 1,0000 1,0000
Fc
Figura 30. Efcarbonatos,
fectos del pHmostrando
H (A), la temel valor med
mperatura (Bdio (mediana
B) y la dosis da) de cada tr
de quitosanoratamiento y
o (C) sobre
y su dispersi
96
los ón
Es
pH 5,
donde
tempe
en un
de ca
mg/L
estad
Figutriple
s posible qu
1 y 7,3 se
e parece s
eratura a la
na interacció
arbonato se
de quitosa
ísticamente
ura 31. Expl
e de los fact
ue haya inte
observa u
ser más b
a que se re
ón entre el
e mantiene
no, y un m
e y sólo pue
oración gráf
ores estudia
eracciones
n nivel bas
ajo a 27°C
ealizo el en
pH y la do
n, a pH 9,
ayor valor
ede ser ma
fica de las p
ados sobre lo
entre el pH
stante simil
C y luego
sayo. En la
sis de quito
5 la tenden
a 16 mg/L.
anejado com
posibles inte
os carbonato
H y la temp
lar en los c
aumenta
a Figura 32
osano, ya q
ncia es a t
. Esto, sin e
mo una tend
eracciones d
os
eratura (Fig
carbonatos
de forma
2 B podría
que a pH 5,
tener bajos
embargo, n
dencia.
dobles (A, B
gura 31 A),
, no así a
proporcion
pensarse t
,1 y 7,3 los
s valores a
no puede p
, C) e intera
97
pues a
pH 9,5;
nal a la
también
niveles
0 y 22
robarse
acción
98 4.2.4.5 Significancia estadística para el parámetro sulfatos para cada una de las
condiciones evaluadas
El pH también tuvo efecto significativo sobre los niveles de sulfatos (Tabla 25), efecto
que se aprecia en la Figura 32 A, donde se muestra mayor magnitud de sulfatos en el
tratamiento a pH 5,1, magnitud intermedia a pH 7,3 y menor magnitud a pH 9,5. De
acuerdo con la tabla 26 A, los niveles de sulfatos sólo difieren significativamente entre
pH 5,1 y pH 9,5; pero son similares entre pH 5,1 y 7,3 y también son similares entre pH
7,3 y 9,5. Para el caso de los sulfatos, esta fue la única variable afectada por un cambio
en la temperatura (Tabla 26 B).
Tabla 25. Significancia de los efectos simples del pH, temperatura y dosis de quitosano
calculadas con la prueba de Kruskall-Wallis para el parámetro sulfatos
Parámetro pH Temperatura Dosis de
Quitosano
Sulfatos (ppm) 0,0361 0,0469 0,4814
Los valores con p<0,05 marcan diferencias significativas. Fuente: Propia
Al observar cuáles tratamientos difieren (Tabla 26) ninguna de las probabilidades
fueron estrictamente menores a 0,05, pero la que relaciona el tratamiento a 27 °C con el
tratamiento a 38°C, alcanzó un valor de p=0,0619. Si bien no es significativamente
distinta con un nivel del 5% (el usado por defecto para las pruebas estadísticas), lo es
con significancia del 10%, otro valor frecuentemente utilizado en comparaciones
estadísticas (Azzimonti, 2003). Los niveles de sulfatos tampoco fueron afectados al
modificar la dosis de quitosano (Figura 32 C y Tabla 26 C).
99 Tabla 26. Significancia de los efectos simples del pH (A), temperatura (B) y dosis de Quitosano (C) sobre los sulfatos calculadas mediante la prueba de Kruskall-Wallis.
A pH 5,1 7,3 9,5 5,1 1,0000 0,0345 7,3 1,0000 0,2672 9,5 0,0345 0,2672
B Temperatura(ºC) 27 38 42 27 0,0619 0,1675 38 0,0619 1,0000 42 0,1675 1,0000
C Dosis de quitosano(mg/L) 0 16 22 0 1,0000 0,6815 16 1,0000 1,0000 22 0,6815 1,0000
Los valores con p<0,05 marcan diferencias significativas. Fuente: Propia
Aunque las interacciones no se pueden probar, es posible que exista algún tipo de
interacción entre el pH y la temperatura (Figura 33A), pues a 42°C y pH 9,5 el nivel de
sulfatos tiende a ser más bajo que en otros casos. Por el contrario, no parece haber una
interacción entre el pH y la dosis de quitosano (Figura 33B), mientras que al estudiar el
efecto de la temperatura y la dosis de quitosano pareciera que a 27 °C los sulfatos
disminuyen cuando aumenta la dosis de quitosano (Figura 33C), lo que no se ve a
temperaturas mayores. También podría existir interacción triple entre los factores, pues
a pH 7,3 el nivel de sulfatos es menor conforme aumenta la temperatura si no se
adiciona quitosano, pero al adicionar quitosano, los mismos parecen mantenerse a 16
ppm, y a 22 ppm estos niveles tienden a aumentar (Figura 33D).
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102 dosis de 4 ppm de floculante, los valores de turbidez se encontraron en 0,78 NTU
(porcentaje de remocion de 99,52%). Lo que permite deducir que la dosis óptima a
emplear este tipo de polímero no debe sobrepasar los 2 ppm. Por otra parte, la
presencia de cationes (Ca2+, Mg2+) en la salmuera, ayuda a la adsorción de partículas
negativas por polímeros aniónicos y reducen las fuerzas repulsivas porque hacen de
enlace con el coloide. Además ayudan a los enlaces de puente entre partículas y a la
neutralización de la carga (Marin, 2012).
Tabla 27. Resultados en tratamiento de salmuera con poliacrilamida aniónica como
coagulante a temperatura 27ºC y pH 10,5
Parámetros 0 mg/L Remoción(%)
2 mg/L Remoción (%)
4 mg/L Remoción (%)
Turbidez (NTU)
2,12±0,190 98,70 0,50±0,040 99,65 0,78±0,070 99,50
Color (UC)
18±1,050 98,09 3±0,630 99,70 5±0,410 99,50
Dureza total(mg/L)
977±0,003 89,14 155±0,001 98,47 304±0,001 96,76
Carbonatos (mg/L)
1965±0,005 42,21 529±0,001 84,44 621±0,001 81,74
Sulfatos (mg/L ppm)
720±0,001 21,37 553±0,003 40,30 682±0,010 25,56
Fuente: Propia
Los porcentajes para la remoción de color, presentaron la misma tendencia a la
presentada para la turbidez, obteniendose remociones del 99,65 % para una dosis de 2
ppm de poliacrilamida aniónica, mientras para la dosis de 4 ppm correspondió un
porcentaje de 99,50% (Tabla 27). Encontrandose, los valores promedios residuales
para la muestra control en 18 UC, mientras que para las muestras tratadas con 2 ppm
de poliacrilamida aniónica, se situó en 3 UC y 5 UC para 22 ppm de quitosano. La
variación de sulfatos, mostró una variacion significativa, comparada a los tratamientos
utilizando quitosano comercial, encontrandose el mayor porcentaje de remoción en 40,3
% al utlizar una dosis de 2 ppm de floculante aniónico.
La remoción de carbonatos, mostró un porcentaje de variación significativo para las
muestras tratadas con una dosis de 2 ppm de poliacrilamida anionica de 83,56 %,
encontrandose en un rango entre 501 mg/L y 534 mg/L, para las muestras tratadas con
103 2 ppm de floculante, mientras que para 4 ppm de poliacrilamida, los valores de
carbonatos se encontraron entre 612 mg/L y 625 mg/L.
Por otra parte, para la remoción de dureza total, la poliacrilamida aniónica resultó ser
altamente efectiva, al mostrar un porcentaje de 98,47 % para una dosis de 2 ppm,
encontrandose los valores de dureza entre 100 mg/L y 200 mg/L, mientras que para una
dosis de 4 ppm, los valores se situaron en 304 mg/ L de dureza total, representando un
porcentaje de remoción de 96,76 % con respecto a la muestra inicial.
5.1. Comparación estadística de los resultados obtenidos del mejor tratamiento de
quitosano con poliacrilamida
La Tabla 28 presenta la comparación entre el tratamiento donde se obtuvieron las
mejores condiciones con quitosano y el tratamiento con poliacrilamida. Esta
comparación indicó que todas las variables tuvieron una diferencia significativa
(p>0,05), es decir, hubo resultados distintos cuando el proceso de coagulación se
realizó con salmuera (en las mejores condiciones con quitosano) o con poliacrilamida.
Para la turbidez y la dureza, no se cumplió el supuesto de homocedasticidad, por lo que
se aplicó la prueba t de Student para esta situación (Daniel, 2002). En todos los casos,
la media del mejor tratamiento fue superior a la media de la poliacrilamida, lo que hace
pensar que la poliacrilamida es mejor coagulante, debido a que reduce en mayor
medida la turbidez, el color, los sulfatos, carbonatos y dureza en la salmuera tratada.
104 Tabla 28 .Comparación del mejor tratamiento utilizando quitosano comercial con la
poliacrilamida en el tratamiento de salmuera utilizando la prueba t de Student
Variable Media tratamiento
Quitosano
Media Poliacrilamida
Prueba de homocedasticidad
t Student Decisión estadística
Turbidez (NTU) 1,91 0,50 0,000 0,000 Distintas
Color(UC) 12,33 3,00 0,139 0,000 Distintas
Sulfatos (mg/L) 0,08 0,05 0,867 0,000 Distintas
Carbonatos (mg/L)
0,19 0,13 1,000 0,000 Distintas
Dureza (mg CaCO3/L)
0,02 0,00 0,013 0,000 Distintas
Fuente: Propia
105
CONCLUSIONES
La variación del pH tuvo un efecto significativo en todas las variables sobre las que
se evaluó el efecto del quitosano como coagulante (turbidez, color, sulfatos, carbonatos
y dureza total).
Los valores de turbidez a pH 5,10 y pH 7,30, en todas las temperaturas y dosis
evaluadas, se encontraron por encima del valor referencia tomado en el tratamiento de
salmuera con fines de producción de sal alimenticia (<10 NTU).
Los mayores porcentajes de remoción en color y turbidez se encontraron en 98,72% y
98,82% respectivamente a pH 9,5, temperatura de 38ºC y una dosis de 22 mg/L de
quitosano.
Para el parámetro dureza total, a pesar de obtenerse un porcentaje de remoción de
83,06% a pH 9,5, dosis de 22 mg/L y temperatura 38ºC, su valor promedio se encontró
por encima del valor referencia en el tratamiento de salmuera (1000 mg/L CaCO3),
igualmente los carbonatos se encontraron por encima de este criterio.
En la remoción de sulfatos el quitosano no constituyó un coagulante efectivo,
encontrándose el mayor porcentaje en 25,35 %, en muestra de salmuera tratada con 22
mg/L de quitosano a 42ºC y pH 9,5.
La temperatura no representó una variable estadísticamente significativa, pero a
nivel de proceso no debe elevarse por encima de 38ºC, para cumplir con los valores
referenciales de turbidez en el tratamiento de salmuera. Siendo representativa sólo para
el nivel de sulfatos, mientras que la dosis de quitosano no mostró niveles de
significancia.
106 La alta alcalinidad y dureza presente en la salmuera, constituyó un factor importante
en la remoción de turbidez, color, dureza total y carbonatos a condiciones básicas (pH
9,5), debido a la precipitación de compuestos presentes en esta.
Aunque no pudo probarse estadísticamente el efecto de interacciones dobles o triples
entre los factores estudiados, pudieron visualizarse algunas tendencias que podrían
ponerse a prueba en estudios posteriores.
La poliacrilamida demostró una mayor reducción en los parámetros de turbidez, color,
sulfatos, carbonatos y dureza en la salmuera tratada en comparación con las muestras
tratadas con quitosano comercial.
107
RECOMENDACIONES
Para la industria de tratamiento de salmuera y futuras investigaciones se recomienda;
A partir de las mejores condiciones operacionales obtenidas se recomienda un
estudio donde de evalúen distintos tipos de sal bruta (lavadas y no lavadas), y evaluar si
rangos de turbidez menores a las evaluadas en este estudio representa un factor
relevante en la remoción de los parámetros establecidos.
Es necesario realizar una optimización del tratamiento físico existente, entre ellos, la
colocación de filtros en el tratamiento de salmuera con el fin de mejorar la calidad del
producto final y ser más efectivo el tratamiento químico.
Se recomienda realizar un tratamiento previo de la sal bruta a procesar (lavado), de
tal manera de disminuir los contaminantes y aumentar la efectividad del tratamiento
químico.
Para futuras investigaciones siguiendo la normativa existente, se recomienda el
estudio de un rango más amplio de pH y demás variables en los procesos de
coagulación y floculación.
108
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115
ANEXOS
116
Ficha Técnica
Nombre del Producto:
BIOFLOC
Elaborado por: INNOVAQUITO,C.A. Ingrediente
activo: N-acetil-D-Glucosamina 85%
Concentración: 50.000ppm Quitosano85% Estado Físico: Líquido
Aspecto: Leve opalescencia Toxicidad: Inocuo
Modo de Acción: Actúa como floculante/coagulante, su funcionalidad se debe a las características en la cadena polimérica, la cual posee
cargas positivas y negativas, que permite atrapar los flóculos que se formaron previamente, sin importar las cargas que
estén dominando en el medio, acelerando de esta manera la separación entre el sobrenadante y las partículas.
AguasAplicables: Cualquier tratamiento de agua en el que se necesite flocular/coagular: industria petrolera, alimenticia, papeleras,
tenerías, tratamientos en aguas crudas (Hidrológicas), aguas residuales, industriales, piscinas, entre otras.
Forma de Aplicación:
Se debe añadir directamente al líquido el cual se desea tratar agregando el BIOFLOC con una leve agitación hasta la
formación de los coágulos. Dosis
Recomendadas: Varía dependiendo del tipo de agua y proveniencia de la
misma. Beneficios: Aumenta notoriamente la capacidad de agua a tratar en los
sistemas, por la rapidez con que actúa. No es toxico, biodegradable, no contiene metales pesados, amigable con el ambiente, puede estar en contacto directo
con la piel (no es necesario usar protección corporal para su aplicación).
Compatibilidad: Agua, lodos, sedimentos, soluciones con metales pesados, pigmentos, aceites y grasas, materia orgánica, entre otros.
Importante: BIOFLOC se adapta totalmente al decreto Venezolano Nº 883 “NORMAS PARA LA CLASIFICACION Y EL
CONTROL DE LA CALIDAD DE LOS CUERPOSDE AGUA Y VERTIDOS O EFLUENTES LÍQUIDOS”, porque no aumenta los parámetros químicos que posee el efluente al momento
de su consumo o su descarga.
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Ficha técnica Nombre del producto: Floculante MAGNAFLOC LT27 Elaborado por : CIBA SPECIALTY CHEMICALS Ingrediente active: Poliacrilamida aniónica
Descripcion: MAGNAFLOC LT27 es una poliacrilamida
aniónica de alto peso molecular, usado para el tratamiento de agua para consumo humano. MAGNAFLOC LT27, se encuentra certificado internacionalmente por la American Standard ANSI/NSF 60
PROPIEDADES TIPICAS Apariencia: Solido granulado color blanco
Densidad: Aprox .0,7 g/cm3
pH al 1% de solucion: Aprox. 7,3
Acrilamida libre: Menor de 0,020%
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Tratamiento de salmuera usando quitosano como coagulante a condiciones de 27ºC y
pH 5,10
Tratamiento de salmuera usando quitosano como coagulante a condiciones de 27ºC y
pH 9,50
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Tratamiento de salmuera usando quitosano como coagulante a condiciones de 38ºC y
pH 7,30
Tratamiento de salmuera usando quitosano como coagulante a condiciones de 42ºC y pH 9,50