BIOTÉCNICAS DA REPRODUÇÃO EM ANIMAIS SILVESTRES ADRIANA PIRES NEVES.
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BIOTÉCNICAS DA REPRODUÇÃO EM
ANIMAIS SILVESTRES
ADRIANA PIRES NEVES
ANIMAIS SILVESTRES• Extinção – exploração do meio-ambiente• Manejo de populações – garantia mínima de diversidade genética• Zoológicos – espaço limitado
Criopreservação de gametasÉ possível manter 95% da variabilidade
genética durante cerca de 400 anos, ou 50 gerações, quando se tem um manejo adequado do material genético (WILSON, 1997).
Reprodução assistidaConservação do habitat natural
Métodos mais utilizados
Zoológicos e criatórios em cativeirodas 274 espécies raras de mamíferos
mantidas em zoológicos, somente 10% possuem populações auto-sustentáveis e que conseguem manter sua variabilidade genética de tamanho suficiente a evitar a depressão endogâmica
Conservação animal ex situ
Indisponibilidade de espaço físico – impossibilita a manutenção de uma grande quantidade de indivíduos de uma mesma espécie, o que leva à depressão endogâmica.
Inapropriados para animais que necessitam de uma grande quantidade de espaço para sobreviver
Zoológicos
Viabilidade por tempo indefinido Coleta de sêmen – eletroejaculação, massagem
da ampola e VA Recuperação de espermatozóides do epidídimo
de animais mortos – em humanos, bovinos, equinos, gazelas, macacos, cervos, javalis, felinos selvagens, etc.
Criopreservação de sêmen
Os espermatozóides podem ser isolados de duas formas: 1) fluxo gerado pela injeção de meio de congelação no canal deferente em direção ao epidídimo; 2) cortes na região do corpo do epidídimo ou dissecação, seguida de cortes e pressão manual na região da cauda do epidídimo
Criopreservação de sêmen
Mais utilizada em animais domésticos Processo de vitrificação com mais sucesso em
animais selvagens A vitrificação - transição direta da fase líquida
para a sólida, sem a formação dos cristais de gelo que danificam a célula.
Criopreservação de oócitos e embriões
Não permitem aumento da variabilidade genética
É importante pois pode causar a extinção de espécies
Criopreservação de células somáticas para TN (clonagem)
Fêmeas ovulam uma x ao anoCio dura apenas 24-72hMachos com estacionalidade
reprodutiva
Panda gigante
Inseminação artificial, em cativeiro (http://www.panda.org.cn/english/)
Detecção de cio através de hormônios na urina das fêmeas
Apenas 1000 a 2000 na natureza
Panda gigante
Medidas extremas: Mostrar videos de outros pandas acasalando(http://edition.cnn.com/2006/WORLD/asiapcf/01/25/
panda.passion/index.html) Viagra
(http://news.bbc.co.uk/2/hi/asia-pacific/2246588.stm) Taxa atual: 1 cria a cada 2 anos “Diplomacia do Panda”
Panda gigante
Cópula: de 30s a 5 minDuração da gestação: 95-160 dias2009- primeiro filhote nascido de IA com sêmen
congelado
Panda gigante
Equideos
• Cavalo de Przewalskii• Habitat: Mongolia• Descoberta por Nikolai Przewalski em 1881• Extinto na natureza em 1966
Cavalo de Przewalskii
• 66 cromossomos (cavalo doméstico tem 64)• Pode produzir híbridos• Final dos anos 50 – apenas 50 Przewalski
existiam• 1977- Fundação para proteção do cavalo
Przewalski (Rotterdam, Holanda) (http://www.treemail.nl/takh/index.htm)
Cavalo de Przewalskii
• Visando troca de diferentes genéticas entre zoológicos no mundo
• Criação em cativeiro (reproduz-se normalmente, mas IA acelera o processo)
• Necessita anestesia geral e eletroejaculação (Collins et al., 2006)
• Parâmetros seminais = vol 19,9 ± 7,1• Conc: 2,0 ± 0,6• Motilidade: 52,7 ± 3,4
Cavalo de Przewalskii• A partir de 1992, começam a ser liberados
exemplares no seu habitat natural• Criada a Reserva Khustain Nuruu National Park• 50.600ha• Cavalos reintroduzidos reproduziram com sucesso
Cavalo de Przewalskii• A partir de 1992, começam a ser liberados
exemplares no seu habitat natural• Criada a Reserva Khustain Nuruu National Park• 50.600ha• Cavalos reintroduzidos reproduziram com sucesso
Zebras• Reprodução em cativeiro é
possivel (https://www.princeton.edu/~dir/pdf_dir/2011_Nunez_Zebra%20Repro_book%20Chpt.pdf)
• As zebras fêmeas mais jovens podem ser sujeitas a aborto em cativeiro
• Ciclo estral – trabalhos feitos em fêmeas abatidas
Zebras• Barros et al. (2014) – análise de dinâmica folicular
em criatório no Maranhão• Intervalo interovulatório: 37,0±1,7 dias• Ausência de ondas foliculares • Diâmetro fol. Pré-ovulatório: 36,2 ± 0,3mm• Induzido com hCG, 31,6mm
Camelídeos• Contém 2 subfamílias: Camelinae (Camelideos do
Velho Mundo) and Laminae (Camelideos do Novo Mundo).
• Selvagens, mas domésticos...• Utilidades: leite, transporte...e corrida...
Camelídeos• Baixa eficiência reprodutiva• Folículos de 15 a 40mm• Gestação 13 meses• 8 meses de lactação
Camelídeos• Ovulação induzida pela cópula (ou manipulação
cervical)• Provavelmente algum fator no plasma seminal
Camelídeos• Coleta de sêmen por eletroejaculação (necessitam
anestesia)• Melhor com VA (desenvolvida por Bravo et al. 2000)• Necessita para IA induzir a ovulação
Brasil- Projeto Mata Ciliar• Trabalho de Educação Ambiental• Há 26 anos – visa proteger margens de rios,
nascentes, etc.• Centro Brasileiro para Conservação de Felinos
Neotropicais (1997)
Brasil- Projeto Mata Ciliar• Abriga 70 animais de espécies ameaçadas de extinção• Onça, onça parda, jaguatirica, gato do mato, etc• Jaguatirica fruto de TE (desde 2007)• Fertilização in vitro – centro cirúrgico e laboratório anexos• www.mataciliar.org.br