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Aluna: Marcela ArnaldoMestrado em Ciências (PPG CENA/USP)Área de concentração: Biologia na Agricultura e no Ambiente
Universidade de São PauloCentro de Energia Nuclear na Agricultura
CEN5749-2 Biogeoquímica do Nitrogênio em Ecossistemas tropicais
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IntroduçãoMicrorganismos do solo: mineralização da matéria orgânica.
o Influência sobre a produtividade em sistemas agrícolas: degradam os resíduos e disponibilizam nutrientes essenciais para as plantas (ex: Nitrogênio).
Resíduos de culturas: diferem quanto a decomposição (relação C/N, tipos de compostos etc.).
Processos pouco compreendidos em agro-ecossistemas tropicaiso Identificação dos microrganismos envolvidos: possibilita manejo com o
objetivo de preservar a produtividade
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IntroduçãoSIP (Stable Isotope Probing)
o Permite determinar os microrganismos envolvidos num processo
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IntroduçãoGene RNAr 16S: espécies ≠ sequências ≠DGGE (Denaturing Gradient Gel Electrophoresis)
o Separa sequências diferentes, de acordo com a composição de bases (A, T, C e G)
Aum
ento
na
conc
entr
ação
de
reag
ente
s de
snat
uran
tes
DGGE
Espécie 1 Espécie 2 Espécie 3FraçãoLeve
SEQUENCIAMENTO DAS BANDAS
Identificação das espécies microbianas
Fração Pesada
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ObjetivoIdentificar as bactérias envolvidas na degradação de
resíduos de milho e soja, os quais apresentam características bioquímicas contrastantes.
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Materiais e MétodosPreparo de materiais e obtenção de amostras
Resíduos vegetais de milho e soja Preparo: solução com 15NH4
15NO3 (99 átomos %) ou 14NH414NO3 por 75
dias – espectrômetro (NOI-6EPC) marcados: 90 átomos %
SoloTipo de solo: Vertissolo 0-20 cm de área experimental
(estado de Aragua, Venezuela).Características: 15,2 g kg−1 de Corgânico, 1.4 gN kg−1, pH (H2O) 6.7
e textura argilosa (7% areia, 35% silte e 58% argila).
Resíduo Ntotal C:Ntotal Lignina : Ntotal Celulose
Milho 1,21% 32 2,2 24,9%
Soja 2,71% 15 1,1 15,5%
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Materiais e MétodosMontagem do experimento de incubação
Tratamentos (em triplicata)100g de solo + 1 g de resíduo de soja marcado (15N)100g de solo + 1 g de resíduo de soja não-marcado100g de solo + 1 g de resíduo de milho marcado (15N)100g de solo + 1 g de resíduo de milho não-marcado100 g de solo sem adição de resíduo
Incubação15 dias a 25°CUmidade controlada (40% C. C.)
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Materiais e MétodosSIP
Extração de DNA0,3g de solo “FastDNA Spin Kit” (MP Biomedicals)
UltracentrifugaçãoDNA em tubos com solução de CsCl 140.000 g por 69 horas
Separação das fraçõesParte do gradiente contendo DNA 6 frações Para cada fração: concentração de DNA e enriquecimento
em 15N (analisador elementar Euro EA 3000 acoplado a espectrômetro de massas de razão isotópica DeltaPlus XP)
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Materiais e MétodosDGGE
Amplificação do gene RNAr 16SReação de PCR, utilizando DNA de cada fração
GelPoliacrilamida (6%) com gradiente variando entre 40 e 70%Bandas que apresentaram padrões diferentes entre os
tratamentos sequenciamentoComparação das sequências com as de bancos de dados
identificação da espécie
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ResultadosSIP
Separação do DNA de acordo com a densidade
Fig 1. Gradientes de densidade em CsCl do DNA do solo não marcado e marcado com 15N quinze dias após a aplicação dos resíduos (A - milho; B - soja), mostrando as concentrações de DNA (ng µL-1) como medida das três replicatas para todas as frações analisadas (#1 ‘pesada’ a #6 ‘leve’) assim como o enriquecimento em 15N (atom%) nas frações.
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Fig 1. Gradientes de densidade em CsCl do DNA do solo não marcado e marcado com 15N quinze dias após a aplicação dos resíduos (A - milho; B - soja), mostrando as concentrações de DNA (ng µL-1) como medida das três replicatas para todas as frações analisadas (#1 ‘pesada’ a #6 ‘leve’) assim como o enriquecimento em 15N (atom%) nas frações.
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ResultadosDGGE
Fig 2. Padrões de DGGE do gene RNAr 16S obtido das frações de DNA ao longo do gradiente de densidade em CsCl (#1 ‘pesada’ a #6 ‘leve’) dos controles não marcados e dos tratamentos com resíduos marcados com 15N de milho (A) e soja (B). C- controle sem nenhuma aplicação de resíduo; M- solo tratado com resíduo de milho sem passar pela centrifugação; S- solo tratado com resíduo de soja sem passar pela centrifugação. Flechas indicam bandas selecionadas para o sequenciamento.
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ResultadosSequenciamento de bandas
Tabela 1. Atribuição filogenética das sequências do gene RNAr 16S obtidas de quatro bandas de DGGE selecionadas (M1-M4; S1-S4) na fração ‘pesada’ #1, do experimento com resíduo enriquecido em 15N
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DiscussãoConclusões
Metodologia permitiu detectar as espécies bacterianas envolvidas na decomposição dos resíduos orgânicos
Características bioquímicas dos resíduos induzem resposta de membros específicos da comunidade microbiana
DificuldadesDeterminar quantidade de resíduo a ser adicionadaTempo de incubaçãoNecessidade de material altamente enriquecido
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Análise do artigoPontos positivos
Metodologia adequada (uso de 15N)Reconhecimento das limitaçõesDiscussão cuidadosa
Pontos negativosFalta de alguns detalhes da montagem do experimentoTeste de uma única condição de incubaçãoNão discute sobre as possíveis aplicações do
conhecimento gerado
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