Post on 17-Apr-2015
Processamento pós-transcricional
Capeamento
Remoção de introns
Adição da cauda de poliA
Ligação a proteínas ligantes ao RNA
Adição da cauda de poliA
Capeamento
Remoção de introns
Capeamento: ocorre no primeiro minuto Varios tipos de capeamento: extensão de reações de metilação
Todos os mRNAs eucariotos são capeadosProteção contra degradação: decapeamento ligado a degradação
Ligação de fatores que facilitarão ligação do ribossomo
Disjunção: splicing
Definidos por sequências GT (5’) e AG (3’)
Presença de códons de terminação em ordem de leitura (ORF)
Introns
Mecanismo da disjunção: complexa interação entre proteínas
Splicing alternativo
Poliadenilação
- Presente em eucariotos: enzima Poli-A polimerase
Sequência AAUAAA em mamíferos:
- Altamente conservada em mamíferos
- Presente em região 11 a 30 nt antes do sítio de adição do poliA
- cordycepin (3’deoxyadenosine): impede o transporte para o citosol
Sinal de poliadenilação e de terminação da transcrição
Em animais somente uma sequência é presente. Em plantas, várias:diferentes tamanhos para um mRNA: diferente estabilidade e tradução
Função: transporte, estabilidade, eficiência da tradução
Sinal de poliadenilação e de terminação da transcrição
Tamanho da cauda de poli-A pode variar de gene para gene
poli-A: estabilidade e/ou eficiência de tradução
Instabilidade do RNA em plantas
Experimentos com actinomicina D (inibidor da transcrição): presença desseElemnto reduz a vida do RNA
Instabilidade do RNA em plantas
Erro de leitura da RNA polimerase II. Ex: gene da fitohemaglutinina
Região responsável pelo aumento da estabilidade do RNA em resposta a presença de luz no mRNA da ferredoxinaDomínios I, II e III, ricos em (AU)n responsáveis pela instabilidade
na presença de açúcares
Instabilidade e degradação do RNA
Proteínas ligantes internamente ao RNA
Elemento IRE
Degradação do RNA em levedura
Degradação do RNA em plantas
Degradação do RNA em plantas